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Ce protocole décrit l’utilisation de la transformation médiée par Agrobacterium tumefaciens (AMT) pour intégrer le(s) gène(s) d’intérêt dans le génome nucléaire de la microalgue verte Chlorella vulgaris, conduisant à la production de transformants stables.
La transformation médiée par Agrobacterium tumefaciens (AMT) est un outil largement utilisé pour manipuler les génomes des plantes. Cependant, A. tumefaciens présente la capacité de transférer des gènes à un large éventail d’espèces. De nombreuses espèces de microalgues ne disposent pas de méthodes bien établies pour intégrer de manière fiable les gènes d’intérêt dans leur génome nucléaire. Pour exploiter les avantages potentiels de la biotechnologie des microalgues, des outils de manipulation du génome simples et efficaces sont essentiels. Dans ce document, un protocole AMT optimisé est présenté pour l’espèce de microalgue industrielle Chlorella vulgaris, en utilisant la protéine fluorescente verte rapporteuse (mGFP5) et le marqueur de résistance aux antibiotiques pour l’hygromycine B. Les mutants sont sélectionnés par placage sur un milieu de tris-acétate-phosphate (TAP) contenant de l’hygromycine B et du céfotaxime. L’expression de mGFP5 est quantifiée par fluorescence après plus de dix générations de sous-culture, ce qui indique la transformation stable de la cassette d’ADN-T. Ce protocole permet de générer de manière fiable plusieurs colonies transgéniques de C. vulgaris en moins de deux semaines, en utilisant le vecteur d’expression végétale pCAMBIA1302 disponible dans le commerce.
Agrobacterium tumefaciens, une bactérie à Gram négatif transmise par le sol, possède une capacité unique de transfert de gènes entre règnes, ce qui lui a valu le titre d'« ingénieur génétique naturel »1. Cette bactérie peut transférer l’ADN (ADN-T) d’un plasmide inducteur de tumeur (Ti-Plasmide) dans les cellules hôtes par le biais d’un système de sécrétion de type IV, ce qui entraîne l’intégration et l’expression de l’ADN-T dans le génome de l’hôte 1,2,3,4. Dans le cadre naturel, ce processus conduit à la fo....
Tous les milieux et solutions doivent être autoclavés avant utilisation, sauf indication contraire. Tous les tubes à centrifuger, les pointes de pipette, etc., doivent être stériles ou autoclavés avant utilisation. Pour faciliter la consultation, les recettes de médias utilisées dans ce protocole sont répertoriées dans le tableau 1.
1. Préparation des cellules électrocompétentes d’A. tumefaciens
Pour montrer la réussite de la transformation à l’aide de la méthode ci-dessus, C. vulgaris a été cocultivé avec AGL-1 contenant le plasmide pCAMBIA1302 ou sans le plasmide (de type sauvage et plaqué sur gélose TAP complétée par de l’hygromycine B et du céfotaxime (Figure 1A). La plaque la plus à gauche montre les colonies transformées capables de se développer sur les plaques d’hygromycine B/céfotaxime, et la plaque du milieu montre que l’AGL-1 de type sauvag.......
L’efficacité de la transformation est associée à plusieurs paramètres différents. Le choix des souches d’A. tumefaciens utilisées pour l’AMT est crucial. L’AGL-1 est l’une des souches les plus invasives découvertes et, pour cette raison, a été couramment utilisée dans l’AMT des plantes. La supplémentation du milieu d’induction avec du glucose (15-20 mM) est également importante pour l’efficacité de l’AMT. Étant donné que C. vulgaris peut se développer dans des condition.......
Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.
Les auteurs remercient le professeur Paul Hooykaas d’avoir aimablement fourni le vecteur pCAMBIA1302 et Agrobacterium tumefaciens AGL1 de l’Institut de biologie de Leiden, Université de Leiden, Pays-Bas. Les auteurs tiennent également à remercier Eva Colic pour son aide dans la culture des transformants fluorescents. Ces travaux ont été financés par le Conseil de recherches en sciences naturelles et en génie du Canada et le programme Mitacs Accélération.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 Kb Plus DNA ladder | FroggaBio | DM015 | |
Acetosyringone | Fisher Scientific | D26665G | |
Agrobacterium tumefaciens | Gold Biotechnologies | Strain: AGL-1; Gift from Prof. Paul Hooykaas | Genotype: C58 RecA (RifR/CarbR) pTiBo542DT-DNA |
Biotin | Enzo Life Sciences | 89151-400 | |
CaCl2·2H2O | VWR | BDH9224-1KG | |
Cefotaxime | AK Scientific | J90010 | |
Chlorella vulgaris | University of Texas at Austin Culture Collection of Algae | Strain: UTEX 395 | Wildtype strain |
CoCl2·6H2O | Sigma Aldrich | C8661-25G | |
CuSO4·5H2O | EMD Millipore | CX2185-1 | |
FeCl3·6H2O | VWR | BDH9234-500G | |
Gene Pulser Xcell Electroporator | Bio-Rad | 1652662 | Main unit equipped with PC module. |
GeneJET Plant Genome Purification Kit | Thermo Scientific | K0791 | |
Glacial acetic acid | VWR | CABDH3093-2.2P | |
Glycerol | BioBasic | GB0232 | |
HEPES Buffer | Sigma Aldrich | H-3375 | |
Hygromycin B | Fisher Scientific | AAJ6068103 | |
K2HPO4 | VWR | BDH9266-500G | |
Kanamycin | Gold Biotechnologies | K-250-25 | |
KH2PO4 | VWR | BDH9268-500G | |
MgSO4·7H2O | VWR | 97062-134 | |
MnCl2·4H2O | JT Baker | BAKR2540-01 | |
Na2CO3 | VWR | BDH7971-1 | |
Na2EDTA·2H2O | JT Baker | 8993-01 | |
Na2MoO4·2H2O | JT Baker | BAKR3764-01 | |
NaCl | VWR | BDH7257-7 | |
NaH2PO4 H2O | Millipore Sigma | CA80058-650 | |
NaNO3 | VWR | BDH4574-500G | |
NEBExpress Ni Resin | NewEngland BioLabs | NEB #S1427 | |
NH4Cl | VWR | BDH9208-500G | |
pCAMBIA1302 | Leiden University | Gift from Prof. Paul Hooykaas | pBR322, KanR, pVS1, T-DNA(CaMV 35S/HygR/CaMV polyA, CaMV 35S promoter/mgpf5-6xhis/NOS terminator) |
Polypropylene Columns (5 mL) | QIAGEN | 34964 | |
Precision Plus Protein Unstained Protein Standards, Strep-tagged recombinant, 1 mL | Bio-Rad | 1610363 | |
Rifampicin | Millipore Sigma | R3501-1G | |
SunBlaster LED Strip Light 48 Inch | SunBlaster | 210000000906 | |
Synergy 4 Microplate UV/Vis spectrometer | BioTEK | S4MLFPTA | |
Tetracycline | Thermo Scientific Chemicals | CAAAJ61714-14 | |
TGX Stain-Free FastCast Acrylamide Kit, 12% | Bio-Rad | 1610185 | |
Thiamine | TCI America | T0181-100G | |
Tris Base | Fisher Scientific | BP152-500 | |
Tryptone | BioBasic | TG217(G211) | |
Vitamin B12 (cyanocobalamin) | Enzo Life Sciences | 89151-436 | |
Yeast Extract | BioBasic | G0961 | |
ZnSO4·7H2O | JT Baker | 4382-01 |
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