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Le protocole fournit une approche fiable et optimisée de l’isolement des noyaux à partir d’échantillons de tumeurs solides pour le séquençage multiome à l’aide de la plate-forme 10x Genomics, y compris des recommandations pour les conditions de dissociation des tissus, la cryoconservation des suspensions unicellulaires et l’évaluation des noyaux isolés.
Le séquençage multiome, qui fournit des données de séquençage (séquençage ATAC), qui fournit des données de séquençage de l’ARN unicellulaire identique ou apparié et le test de la chromatine accessible par transposase (séquençage ATAC), représente une percée dans notre capacité à discerner l’hétérogénéité des cellules tumorales, un objectif principal de la recherche translationnelle sur le cancer à l’heure actuelle. Cependant, la qualité des données de séquençage acquises à l’aide de cette modalité avancée dépend fortement de la qualité du matériau d’entrée.
Les conditions de digestion doivent être optimisées pour maximiser le rendement cellulaire sans sacrifier la qualité. Ceci est particulièrement difficile dans le contexte des tumeurs solides avec des matrices desmoplastiques denses qui doivent être décomposées doucement pour la libération cellulaire. Les cellules fraîchement isolées du tissu tumoral solide sont plus fragiles que celles isolées des lignées cellulaires. De plus, comme les types de cellules isolées sont hétérogènes, les conditions doivent être sélectionnées pour soutenir la population cellulaire totale.
Enfin, les conditions d’isolement nucléaire doivent être optimisées en fonction de ces qualités en termes de temps de lyse et de types/ratios de réactifs. Dans cet article, nous décrivons notre expérience de l’isolement nucléaire pour la plate-forme de séquençage multiome 10x Genomics à partir d’échantillons de tumeurs solides. Nous fournissons des recommandations pour la digestion des tissus, le stockage des suspensions unicellulaires (si désiré), ainsi que l’isolement et l’évaluation nucléaires.
Au fur et à mesure que nos connaissances sur la biologie des tumeurs augmentent, l’importance de l’analyse des cellules hétérogènes dans le microenvironnement tumoral a également augmenté 1,2. La possibilité d’acquérir de l’ARN unicellulaire et le dosage de la chromatine accessible par transposase avec des données de séquençage (séquençage ATAC) à partir de la même cellule à la manière d’une cellule appariée (séquençage multiome) constitue une avancée significative vers cette fin 3,4. Cependant, ces expériences sont coûteuses et prennent beaucoup de te....
Des échantillons de cancer du pancréas humain (adénocarcinome canalaire pancréatique) ont été prélevés dans notre laboratoire selon un protocole approuvé par l’IRB. Le consentement éclairé des patients a été obtenu pour le prélèvement de tissus. Les tissus ont été transportés de la salle d’opération au laboratoire, puis traités comme suit.
1. Dissociation tissulaire (digestion)
Pour isoler des noyaux de haute qualité à partir d’échantillons de tumeurs solides de patients pour le séquençage multiome (Figure 1), le tissu tumoral a été dissocié et une suspension unicellulaire a été cryopréservée (Figure 2A-D). La suspension cellulaire a ensuite été décongelée au moment de la capture planifiée du multiome. La capture des noyaux a été effectuée à l’aide de réactifs tampons de lyse .......
Démêler les populations cellulaires hétérogènes présentes dans le microenvironnement tumoral est un domaine d’intérêt actif en biologie du cancer. De même, des tissus complexes existent dans les pathologies bénignes telles que la cicatrisation des plaies et la fibrose. Le séquençage multiome est apparu comme un outil puissant permettant l’acquisition de données de séquençage de l’ARNsc et de l’ATAC appariés de cellules identiques. Ce protocole décrit l’isolement des noyaux, ce qui exige une opt.......
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.
Nous tenons à remercier le Stanford Functional Genomics Facility (SFGF), en particulier Dhananjay Wagh et John Coller, ainsi que 10x Genomics pour leur aide dans l’optimisation de nos expériences. Nous tenons également à remercier les Drs George Poultsides, Monica Dua, Brendan Visser et Byrne Lee pour leur aide dans l’acquisition d’échantillons de patients. Nous tenons à remercier Art et Elaine Taylor, la Fondation Rantz, ainsi que Warren et Judy Kaplan pour leur généreux soutien à nos efforts de recherche. Les sources de financement comprennent les subventions des NIH 1F32CA23931201A1 (D.S.F.), 1R01GM116892 (M.T.L.), 1R01GM136659 (M.T.L), la Fondation Goldman Sachs (....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
100, 70, and 40 μm Falcon cell strainers | ThermoFisher | ||
10x Genomics Nuclei Buffer (20x) | 10x Genomics | 2000153/2000207 | |
Bambanker | Wako, Fisher Scientitic | NC9582225 | |
BSA | Miltenyi Biotec | 130-091-376 | |
Calcium Chloride | Sigma Aldrich | 499609 | |
Collagenase (Collagenase Type IV) | ThermoFisher | 17104019 | |
Digitonin | Thermo Fisher | BN2006 | |
DNase I | Worthington | LS006330 | |
DTT | Sigma Aldrich | 646563 | |
Dulbecco’s Modified Eagle Medium F-12 | Thermo Fisher | 11320082 | |
Fetal Bovine Serum | Thermo Fisher | 10438026 | |
Flowmi 40 μm Pipette Tip Cell Strainer | Sigma Aldrich | BAH136800040 | |
HEPES | Sigma Aldrich | H3375 | |
Histopaque-1119 Gradient Cell Separation solution | Sigma Aldrich | 11191 | |
Medium 199 | Sigma Aldrich | M2520 | |
MgCl2 | Sigma Aldrich | M1028 | |
Miltenyi GentleMACSTM digest kit | |||
NaCl | Sigma Aldrich | 59222C | |
Nalgene Cryo "Mr. Frosty" Freezing Container | ThermoFisher | 5100-0001 | |
Nonident P40 Substitute | Sigma Aldrich | 74385 | |
Poloxamer 188 | Sigma | P5556 | |
Rnase inhibitor | Sigma Aldrich | 3335399001 | |
Tris-HCl | Sigma Aldrich | T2194 | |
Tween-20 | Thermo Fisher | 85113 |
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