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EUCAST a développé un protocole de test direct de sensibilité aux antimicrobiens (AST) pour les hémocultures automatisées. Cependant, sa dépendance à l’identification microbienne basée sur la spectrométrie de masse peut être évitée en utilisant un protocole de préparation directe de l’inoculum dans un système automatisé d’identification microbienne. Cette approche permet de fournir des rapports AST dans les 24 heures suivant le prélèvement de l’échantillon.
Le sepsis à Gram négatif (GN) est une urgence médicale où la prise en charge dans des contextes à ressources limitées repose sur des techniques de culture microbiologique conventionnelles qui donnent des résultats en 3 à 4 jours. Reconnaissant ce délai d’exécution (TAT), EUCAST et CLSI ont développé des protocoles pour déterminer les résultats de l’AST directement à partir de flacons d’hémoculture automatisés (+aBC) signalés positivement. Le protocole EUCAST rapid AST (RAST) a été introduit pour la première fois en 2018, où les points de rupture du diamètre de zone pour quatre agents étiologiques courants du septicémie GN, à savoir Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa et le complexe Acinetobacter baumannii peuvent être rapportés. Cependant, les laboratoires cliniques qui ont mis en œuvre cette méthode dans leur flux de travail de routine s’appuient sur l’identification microbienne basée sur la spectrométrie de masse, qui n’est pas facilement disponible, ce qui empêche sa mise en œuvre dans des contextes aux ressources limitées. Pour contourner ce problème, nous avons évalué un protocole d’inoculum direct (DIP) à l’aide d’un système commercial automatisé d’identification microbienne et de test de sensibilité aux antimicrobiens (aMIAST) pour permettre une identification microbienne précoce dans les 8 heures suivant le signalement positif d’aBC. Nous avons évalué ce protocole de janvier à octobre 2023 afin d’identifier les quatre GN À DÉCLARATION RAST (RR-GN) dans l’aBC signalé positivement. Les résultats de l’identification microbienne dans le DIP ont été comparés au protocole standard de préparation de l’inoculum (SIP) dans l’aMIAST. Sur 204 +aBC avec GN monomorphe (+naBC), l’un des 4 RR-GN a été identifié dans 105 +naBC par SIP (E. coli : 50, K. pneumoniae : 20, P. aeruginosa : 9 et complexe A. baumannii : 26). De ce nombre, 94 % (98/105) ont été correctement identifiés par le DIP, tandis que les taux d’erreurs majeures et d’erreurs très importantes étaient de 6 % (7/105) et de 1,7 % (4/240), respectivement. Lorsque la DIP pour l’identification microbienne est effectuée à l’aide de la méthode EUCAST RAST, des rapports cliniques provisoires peuvent être fournis dans les 24 heures suivant la réception de l’échantillon. Cette approche a le potentiel de réduire considérablement le TAT, ce qui permettra l’instauration précoce d’un traitement antimicrobien approprié.
La septicémie, un problème de santé mondial important, est définie comme un dysfonctionnement d’organe potentiellement mortel dû à une réponse déréglée de l’hôte à l’infection. L’étude sur la charge mondiale des maladies a estimé qu’il y avait 48,9 millions de cas de septicémie et 11 millions de décès liés à la septicémie dans le monde en 2017, ce qui représentait près de 20 % de tous les décès dans le monde1. Environ 2/3 des infections du sang (BSI) causant la mortalité sont dues à des agents pathogènes bactériens à Gram négatif2. Les principales causes de mortalité chez les Gram négatifs (GN) sont Escher....
L’étude, financée par la subvention de recherche intra-muros accordée au Dr Ayush Gupta par l’AIIMS Bhopal, a été approuvée par le Comité d’éthique humaine institutionnelle (IHEC) sous la lettre n° : IHEC- LOP/2022/IL072.
REMARQUE : Un volume d’échantillon de 5 ml a été utilisé d’après les études réalisées par Quesada et coll.25 et Munoz-Davila et coll.27.
1. Protocole d’inoculum standard (SIP) pour l’identification bactérienne à l’aide de l’aMIAST
Résultats généraux
Au cours de la période d’étude, 240 +naBC ont été identifiés par aMIAST à l’aide de DIP et SIP. De ce nombre, 15 % (36/240) des +naBC se sont révélés polymicrobiens après une nuit d’incubation sur le milieu plaqué. Sur les 204 +naBC, la proportion de RR-GN identifiés par SIP était de 51,5 % (105/204). Parmi eux, 47,6 % (50/105) étaient E . coli, 19 % (20/105) K. pneumoniae, 8,6 % (9/105) P. aeruginosa et 24,8 % (26/105) du complexe <.......
À l’aide du DIP, nous avons réussi à identifier les RR-GN avec une précision diagnostique considérable. L’ITT moyen après l’observation positive d’un cancer du sein aBC n’était que de 507 min (~ 8,5 h). Ainsi, lorsqu’elle est effectuée en conjonction avec la méthode EUCAST RAST pour la détermination de l’AST, elle peut donner l’identification de l’isolat à 8 h de temps de lecture de l’AST. Cette approche a le potentiel de mettre en œuvre la méthode EUCAST RAST, évitant ainsi la nécessit.......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
L’étude a été financée par la subvention de recherche intra-muros accordée au Dr Ayush Gupta par l’AIIMS Bhopal. Nous reconnaissons la contribution des techniciens de laboratoire et des médecins résidents qui ont effectué et lu les tests avec diligence pendant les heures de routine et d’urgence.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
ANTIMICROBIAL DISKS | |||
Amikacin disk 30 µg | Himedia, Mumbai, India | SD035-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Amoxyclav disk (20/10 µg) | Himedia, Mumbai, India | SD063-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Cefotaxime disk 5 µg | Himedia, Mumbai, India | SD295E-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Ceftazidime disk 10 µg | Himedia, Mumbai, India | SD062A-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Ciprofloxacin disk (5 µg) | Himedia, Mumbai, India | SD060-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Co-Trimoxazole disk (23.75/1.25 µg) | Himedia, Mumbai, India | SD010-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Gentamicin disk 10 µg | Himedia, Mumbai, India | SD016-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Imipenem disk 10 µg | Himedia, Mumbai, India | SD073-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Levofloxacin disk 5 µg | Himedia, Mumbai, India | SD216-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Meropenem disk 10 µg | Himedia, Mumbai, India | SD727-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Piperacillin-tazobactam disk (30/6 µg) | Himedia, Mumbai, India | SD292E-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
Tobramycin disk 10 µg | Himedia, Mumbai, India | SD044-1VL | Antimicrobial susceptibility testing |
ATCC Escherichia coli 25922 | Microbiologics, Minnesota USA | 0335A | Recommended Gram negative bacterial strain for quality control in RAST |
BacT-Alert 3D 480 | bioMerieux, Marcy d’ Etoille, France | 412CM8423 | Continuous automated blood culture system |
Biosafety cabinet II Type A2 | Dyna Filters Pvt. Limited, Pune, India | DFP-2/21-22/149 | For protection against hazardous and infectious agents and to maintain quality control |
Blood agar base no. 2 | Himedia, Mumbai, India | M834-500G | Preparation of blood agar and chocolate agar |
Clinical Centrifuge Model SP-8BL | Laby Instruments, Ambala, India | HLL/2021-22/021 | Centrifugation at low and high speed for separation of supernatant |
Dispensette S Analog-adjustable bottle-top dispenser | BrandTech, Essex CT, England | V1200 | Dispensing accurate amount of saline |
MacConkey agar | Himedia, Mumbai, India | M008-500G | Differential media for Lactose fermenters/ non-fermenters Gram negative bacilli |
Micropipette (100-1000 µL) | Axiflow Biotech Private Limited, Delhi, India | NJ478162 | Transferring supernatant after first centrifugation, discarding supernatant after second centrifugation |
Micropipette tips (200-1000 µL) | Tarsons Products Pvt. Ltd., Kolkata, India | 521020 | Transferring supernatant after first centrifugation, discarding supernatant after second centrifugation |
Mueller-Hinton agar | Himedia, Mumbai, India | M173-500G | Antimicrobial susceptibility testing by Kirby-Bauer method of disk diffusion |
Nichrome loop D-4 | Himedia, Mumbai, India | LA019 | For streaking onto culture media |
Nichrome straight wire | Himedia, Mumbai, India | LA022 | For stab inoculation |
Nulife sterile Gloves | MRK healthcare Pvt Limited, Mumbai, India | For safety precautions | |
Plain vial (Vial with red top), Advance BD vacutainer | Becton-Dickinson, Cockeysville, MD, USA | 367815 | Obtaining pellet after second centrifugation |
Sheep blood | Labline Trading Co., Hyderabad, India | 70014 | Preparation of blood agar and chocolate agar |
SST II tube, Advance BD vacutainer | Becton-Dickinson, Cockeysville, MD, USA | 367954 | Supernatant separation in first centrifugation |
Sterile cotton swab (w/Wooden stick) | Himedia, Mumbai, India | PW005-1X500NO | Lawn culture of blood culture broth for antimicrobial susceptibility testing |
Sterile single use hypodermic syringe 5ml/cc | Nihal Healthcare, Solan, India | 2213805NB2 | Preparing aliquots from +aBC |
VITEK DensiCHEK McFarland reference kit | bioMerieux, Marcy d’ Etoille, France | 422219 | Densitometer to check the turbidity of suspension |
VITEK saline solution (0.45% NaCl) | bioMerieux, Marcy d’ Etoille, France | V1204 | Adjustment of McFarland Standard turbidity |
VITEK tube stand | bioMerieux, Marcy d’ Etoille, France | 533306-4 REV | Stand for proper placement of tubes before ID card inoculation |
VITEK tubes | bioMerieux, Marcy d’ Etoille, France | Tubes for inoculum preparation | |
VITEK-2 Compact 60 | bioMerieux, Marcy d’ Etoille, France | VKC15144 | Automated identification and AST system |
VITEK-2 GN card | bioMerieux, Marcy d’ Etoille, France | 21341 | Identification of Gram negative bacilli |
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