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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ce protocole décrit une méthode robuste pour développer un biofilm pelliculaire. La méthode est adaptable à différents volumes de culture, ce qui permet une adoption facile pour divers objectifs expérimentaux. La conception de la méthode permet d’évaluer qualitativement ou quantitativement le potentiel de formation de biofilms de plusieurs espèces mycobactériennes.

Résumé

De nombreuses bactéries prospèrent dans des communautés naturelles complexes, présentant des attributs clés de la multicellularité tels que la communication, la coopération et la compétition. La manifestation la plus répandue du comportement multicellulaire bactérien est la formation de biofilms, souvent liés à la pathogénicité. Les biofilms offrent un refuge contre les agents antimicrobiens, favorisant l’émergence de la résistance aux antimicrobiens. La pratique conventionnelle de cultiver des bactéries dans des cultures liquides en flacons agités ne parvient pas à représenter leur croissance physiologique appropriée dans la nature, ce qui limite par conséquent notre compréhension de leur dynamique complexe. Notamment, les profils métaboliques et transcriptionnels des bactéries résidant dans les biofilms ressemblent beaucoup à ceux des cellules en croissance naturelle. Ce parallélisme souligne l’importance des biofilms en tant que modèle idéal pour la recherche fondamentale et translationnelle. Cet article se concentre sur l’utilisation de Mycobacterium smegmatis comme organisme modèle pour illustrer une technique de culture de biofilms de pellicules. L’approche est adaptable à différents volumes de culture, facilitant sa mise en œuvre pour divers objectifs expérimentaux tels que les études antimicrobiennes. De plus, la conception de la méthode permet d’évaluer qualitativement ou quantitativement les capacités de formation de biofilms de différentes espèces mycobactériennes avec des ajustements mineurs.

Introduction

Les bactéries sont capables de survivre en tant qu’entités unicellulaires ; Cependant, dans la plupart des conditions physiologiquement pertinentes, ils s’organisent en mimétiques communautaires. Le biofilm est une organisation communautaire largement reconnue de bactéries formées de cellules agrégées enfermées dans une matrice autoproduite1. Un tel assemblage possède des signatures de multicellularité précoce et offre une plus grande résistance au stress aux systèmes bactériens. Les biofilms sont souvent tolérants aux antimicrobiens et on estime qu’ils sont responsables de près de 80 % ....

Protocole

Les détails de tous les réactifs et équipements utilisés pour l’étude sont répertoriés dans la table des matériaux.

1. La préparation médiatique de Sauton

  1. Préparez 50 ml de solution de dihydrogénophosphate de potassium à 2,5 % en pesant soigneusement 1,25 g de dihydrogénophosphate de potassium et en le dissolvant dans 50 ml d’eau déminéralisée.
  2. Préparez 50 ml de solution de sulfate de magnésium à 2,5 % en pesant 2,56 g de sulfate de magnésium et en le dissolvant dans 50 ml d’eau déminéralisée.
  3. Préparez 10 ml de solution de citrate d’ammonium fe....

Résultats Représentatifs

Les pellicules du biofilm deviennent visibles à l’œil nu à partir du troisième jour. Bien que le biofilm se développe sur le milieu de Sauton sans 2% de glucose, une amélioration a été observée dans la réticulation lorsqu’il a été ajouté. Nous avons obtenu 10,48 mg ± 3,13 mg (n = 4) de poids sec de biofilm à partir de chaque puits d’une plaque de 24 puits avec 1,5 mL de milieu de Sauton (complété par 2% de glucose) cultivé pendant quatre jours. Sur

Discussion

Le mode de vie multicellulaire des microbes a été décrit il y a près d’un siècle. Cependant, les études cliniques restent rares, principalement en raison du manque de méthodes robustes14. Les méthodes décrites dans les travaux sur la biologie du biofilm sont souvent difficiles à adapter. Ici, la méthodologie détaillée, aidée par des démonstrations d’étapes critiques, devrait améliorer la reproductibilité des protocoles.

Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par la bourse DBT-Ramalingaswami attribuée à Amitesh Anand.

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
0.2 µM PVDF syringe filterAxivaSFNY04 R
1 mL tipsGenetixGXM-611000 C
10 µL tipsGenetixGXM-6110 C
200 µL tipsGenetixGXM-61200C
6-well polypropylene platesTarsons980010
Amber tubesTarsons546051
AutoclaveHospharma
Biosafety Cabinet A IIMSET
Blotting paperAny suitable vendor
CentrifugeEppendorf
Citric acidSigma251275
CuvettesBio-Rad2239955
Ferric ammonium citrateSigmaF5879
Gel documentation systemBio-Rad
Glass BeadsSigmaG8772
GlucoseSigma49139
GlycerolSigmaG5516
Inoculation loopsGenaxyHS81121C
L-AspargineSigmaA0884
LB-agarHimediaM1151
LB-mediaHimediaM575
M. smegmatis mc2155 cryo-stockATCC700084
Magnesium sulfateSigmaM2643
MicropipettesGilson
ParafilmTarsons
Petri DishTarsons460020
pH meterLabman Scientific Instruments
Plate ReaderTecan
Polypropylene test tubesGenaxyGEN-14100-PS
Potassium phosphate monobasicSigmaP5379
RifampicinMedchemExpressHY-B0272
Serological pipetteSPL Life Sciences95210
Shaker IncubatorEppendorf
Spatula
SpectrophotometerThermo Scientific
Static IncubatorCARON
Sterile 10 mL syringeBecton Dickinson309642
Sterile 50 mL syringeBecton Dickinson309653
Tween-80SigmaP1754
Weighing balanceSartorius
Zinc sulfateSigmaZ0251

Références

  1. Davey, M. E., O'toole, G. A. Microbial biofilms: From ecology to molecular genetics. Microbiol Mol Biol Rev. 64 (4), 847-867 (2000).
  2. Rumbaugh, K. P., Sauer, K. Biofilm dispersion. Nat Rev Microbiol. 18 (10), 571-586 (2020).
  3. ....

Réimpressions et Autorisations

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