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Ce protocole décrit une méthode robuste pour développer un biofilm pelliculaire. La méthode est adaptable à différents volumes de culture, ce qui permet une adoption facile pour divers objectifs expérimentaux. La conception de la méthode permet d’évaluer qualitativement ou quantitativement le potentiel de formation de biofilms de plusieurs espèces mycobactériennes.
De nombreuses bactéries prospèrent dans des communautés naturelles complexes, présentant des attributs clés de la multicellularité tels que la communication, la coopération et la compétition. La manifestation la plus répandue du comportement multicellulaire bactérien est la formation de biofilms, souvent liés à la pathogénicité. Les biofilms offrent un refuge contre les agents antimicrobiens, favorisant l’émergence de la résistance aux antimicrobiens. La pratique conventionnelle de cultiver des bactéries dans des cultures liquides en flacons agités ne parvient pas à représenter leur croissance physiologique appropriée dans la nature, ce qui limite par conséquent notre compréhension de leur dynamique complexe. Notamment, les profils métaboliques et transcriptionnels des bactéries résidant dans les biofilms ressemblent beaucoup à ceux des cellules en croissance naturelle. Ce parallélisme souligne l’importance des biofilms en tant que modèle idéal pour la recherche fondamentale et translationnelle. Cet article se concentre sur l’utilisation de Mycobacterium smegmatis comme organisme modèle pour illustrer une technique de culture de biofilms de pellicules. L’approche est adaptable à différents volumes de culture, facilitant sa mise en œuvre pour divers objectifs expérimentaux tels que les études antimicrobiennes. De plus, la conception de la méthode permet d’évaluer qualitativement ou quantitativement les capacités de formation de biofilms de différentes espèces mycobactériennes avec des ajustements mineurs.
Les bactéries sont capables de survivre en tant qu’entités unicellulaires ; Cependant, dans la plupart des conditions physiologiquement pertinentes, ils s’organisent en mimétiques communautaires. Le biofilm est une organisation communautaire largement reconnue de bactéries formées de cellules agrégées enfermées dans une matrice autoproduite1. Un tel assemblage possède des signatures de multicellularité précoce et offre une plus grande résistance au stress aux systèmes bactériens. Les biofilms sont souvent tolérants aux antimicrobiens et on estime qu’ils sont responsables de près de 80 % ....
Les détails de tous les réactifs et équipements utilisés pour l’étude sont répertoriés dans la table des matériaux.
1. La préparation médiatique de Sauton
Les pellicules du biofilm deviennent visibles à l’œil nu à partir du troisième jour. Bien que le biofilm se développe sur le milieu de Sauton sans 2% de glucose, une amélioration a été observée dans la réticulation lorsqu’il a été ajouté. Nous avons obtenu 10,48 mg ± 3,13 mg (n = 4) de poids sec de biofilm à partir de chaque puits d’une plaque de 24 puits avec 1,5 mL de milieu de Sauton (complété par 2% de glucose) cultivé pendant quatre jours. Sur
Le mode de vie multicellulaire des microbes a été décrit il y a près d’un siècle. Cependant, les études cliniques restent rares, principalement en raison du manque de méthodes robustes14. Les méthodes décrites dans les travaux sur la biologie du biofilm sont souvent difficiles à adapter. Ici, la méthodologie détaillée, aidée par des démonstrations d’étapes critiques, devrait améliorer la reproductibilité des protocoles.
Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.
Ce travail a été soutenu par la bourse DBT-Ramalingaswami attribuée à Amitesh Anand.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.2 µM PVDF syringe filter | Axiva | SFNY04 R | |
1 mL tips | Genetix | GXM-611000 C | |
10 µL tips | Genetix | GXM-6110 C | |
200 µL tips | Genetix | GXM-61200C | |
6-well polypropylene plates | Tarsons | 980010 | |
Amber tubes | Tarsons | 546051 | |
Autoclave | Hospharma | ||
Biosafety Cabinet A II | MSET | ||
Blotting paper | Any suitable vendor | ||
Centrifuge | Eppendorf | ||
Citric acid | Sigma | 251275 | |
Cuvettes | Bio-Rad | 2239955 | |
Ferric ammonium citrate | Sigma | F5879 | |
Gel documentation system | Bio-Rad | ||
Glass Beads | Sigma | G8772 | |
Glucose | Sigma | 49139 | |
Glycerol | Sigma | G5516 | |
Inoculation loops | Genaxy | HS81121C | |
L-Aspargine | Sigma | A0884 | |
LB-agar | Himedia | M1151 | |
LB-media | Himedia | M575 | |
M. smegmatis mc2155 cryo-stock | ATCC | 700084 | |
Magnesium sulfate | Sigma | M2643 | |
Micropipettes | Gilson | ||
Parafilm | Tarsons | ||
Petri Dish | Tarsons | 460020 | |
pH meter | Labman Scientific Instruments | ||
Plate Reader | Tecan | ||
Polypropylene test tubes | Genaxy | GEN-14100-PS | |
Potassium phosphate monobasic | Sigma | P5379 | |
Rifampicin | MedchemExpress | HY-B0272 | |
Serological pipette | SPL Life Sciences | 95210 | |
Shaker Incubator | Eppendorf | ||
Spatula | |||
Spectrophotometer | Thermo Scientific | ||
Static Incubator | CARON | ||
Sterile 10 mL syringe | Becton Dickinson | 309642 | |
Sterile 50 mL syringe | Becton Dickinson | 309653 | |
Tween-80 | Sigma | P1754 | |
Weighing balance | Sartorius | ||
Zinc sulfate | Sigma | Z0251 |
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