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La génération d’anions superoxydes est essentielle pour la stimulation des plaquettes et, si elle est dérégulée, critique pour les maladies thrombotiques. Nous présentons ici trois protocoles pour la détection sélective des anions superoxyde et l’étude de la régulation plaquettaire dépendante de l’oxydoréduction.
Les espèces réactives de l’oxygène (ROS) sont des molécules contenant de l’oxygène très instables. Leur instabilité chimique les rend extrêmement réactifs et leur donne la capacité de réagir avec des molécules biologiques importantes telles que les protéines, les acides nucléiques et les lipides. Les anions superoxydes sont des ROS importants générés par la réduction de la réduction moléculaire de l’oxygène (c’est-à-dire l’acquisition d’un électron). Malgré leur implication initiale exclusivement dans le vieillissement, les processus dégénératifs et pathogènes, leur participation à d’importantes réponses physiologiques est récemment devenue apparente. Dans le système vasculaire, il a été démontré que les anions superoxydes modulent la différenciation et la fonction des cellules musculaires lisses vasculaires, la prolifération et la migration des cellules endothéliales vasculaires dans l’angiogenèse, la réponse immunitaire et l’activation des plaquettes dans l’hémostase. Le rôle des anions superoxydes est particulièrement important dans la dérégulation des plaquettes et les complications cardiovasculaires associées à une pléthore de conditions, notamment le cancer, les infections, l’inflammation, le diabète et l’obésité. Il est donc devenu extrêmement pertinent dans la recherche cardiovasculaire de pouvoir mesurer efficacement la génération d’anions superoxydes par les plaquettes humaines, de comprendre les mécanismes dépendants de l’oxydoréduction régulant l’équilibre entre l’hémostase et la thrombose et, éventuellement, d’identifier de nouveaux outils pharmacologiques pour la modulation des réponses plaquettaires conduisant à la thrombose et aux complications cardiovasculaires. Cette étude présente trois protocoles expérimentaux adoptés avec succès pour la détection des anions superoxydes dans les plaquettes et l’étude des mécanismes dépendants de l’oxydoréduction régulant l’hémostase et la thrombose : 1) détection d’anions superoxydes à base de dihydroéthidium (DHE) par cytométrie en flux ; 2) visualisation et analyse des anions superoxydes à base de DHE par imagerie plaquettaire unique ; et 3) la quantification par sonde de spin de la production d’anions superoxydes dans les plaquettes par résonance paramagnétique électronique (EPR).
L’anion superoxyde (O2•-) est le ROS le plus pertinent sur le plan fonctionnel généré dans les plaquettes1. O2•- est le produit de la réduction de l’oxygène moléculaire et le précurseur de nombreux ROS 2 différents. La dismutation de O2•- conduit à la génération de peroxyde d’hydrogène (H2O2) par des réactions spontanées en solution aqueuse ou des réactions catalysées par des superoxydes dismutases (SODs3). Bien que différentes sources enzymatiques aient été suggérées (par exem....
Le prélèvement de sang périphérique sur des volontaires consentants est approuvé par le comité d’éthique local et l’autorité nationale de recherche en santé du service national de santé (référence REC : 21/SC/0215 ; Numéro d’identification IRAS : 283854).
1. Méthode 1 : Détection des anions superoxydes à l’aide de la DHE par cytométrie en flux
Pour la détection par cytométrie en flux de la fluorescence de la DHE, nous montrons des résultats représentatifs pour les plaquettes au repos (Figure 3A) ou stimulées avec 0,1 unité/mL de thrombine (Figure 3B). La production d’O2•- a été quantifiée en tant qu’intensité moyenne de fluorescence plaquettaire (MFI), comme le montre la stimulation avec 0,1 unité/mL de thrombine (
Dans ce manuscrit, nous présentons trois techniques différentes ayant le potentiel de faire progresser la capacité d’étudier la régulation dépendante de l’oxydoréduction de la fonction plaquettaire via la détection sélective de O2•-. Les deux premières méthodes sont une amélioration par rapport aux techniques existantes en raison de la sonde redox utilisée (DHE au lieu de la DCFDA, plus courante mais moins fiable). Ces techniques sont d.......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Ce travail a été financé par la British Heart Foundation (PG/15/40/31522), Alzheimer Research UK (ARUK-PG2017A-3) et les subventions du Conseil européen de la recherche (#10102507) à G. Pula.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1-hydroxy-3-methoxycarbonyl-2,2,5,5-tetramethylpyrrolidine (CMH) | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-02.1-50mg | Reagent for EPR (spin probe) |
BD FACSAria III | BD Biosciences | NA | Flow cytometer |
Bovine Serum Albumin | Merck/Sigma | A7030 | For μ-slide coating |
Bruker E-scan M (Noxyscan) | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-E.11-BES | EPR spectrometer |
Catalase–polyethylene glycol (PEG-Cat.) | Merck/Sigma | C4963 | Hydrogen peroxide scavenger (specificity control) |
ChronoLog Model 490+4 | Labmedics/Chronolog | NA | Aggregometer |
CM radical | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-20.1-100mg | Reagent for EPR (calibration control) |
deferoxamine | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-09.1-100mg | Reagent for EPR |
diethyldithiocarbamate (DETC) | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-10.1-1g | Reagent for EPR |
Dihydroethidium | Thermo Fisher Scientifics | D11347 | Superoxide anion probe |
Dimethyl sulfoxide | Merck/Sigma | 34869 | For stock solution preparation |
EPR sealing wax plates | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-A.3-VPM | Consumable for EPR |
EPR-grade water | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-07.7.1-0.5L | Reagent for EPR |
Fibrinogen from human plasma | Merck/Sigma | F4883 | For μ-slide coating |
FITC anti-human CD41 Antibody | BioLegend | 303704 | Platelet-specific staining for flow cytometry |
Glass cuvettes | Labmedics/Chronolog | P/N 312 | Consumable for incubation in aggregometer |
Horm Collagen | Labmedics/Chronolog | P/N 385 | For platelet stimulation |
ImageJ | National Institutes of Health (NIH) | NA | ImageJ 1.53t (Wayne Rasband) |
Indomethacin | Merck/Sigma | I7378 | For platelet isolation |
Micropipettes DURAN 50µl | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-G.6.1-50µL | Consumable for EPR |
Poly-L-lysine hydrochloride | Merck/Sigma | P2658 | For μ-slide coating |
Prostaglandin E1 (PGE1) | Merck/Sigma | P5515 | For platelet isolation |
Sodium citrate (4% w/v solution) | Merck/Sigma | S5770 | For platelet isolation |
Stirring bars (Teflon-coated) | Labmedics/Chronolog | P/N 313 | Consumable for incubation in aggregometer |
Superoxide dismutase–polyethylene glycol (PEG-SOD) | Merck/Sigma | S9549 | Superoxide anion scavenger (specificity control) |
Thrombin from human plasma | Merck/Sigma | T6884 | For platelet stimulation and μ-slide coating |
VAS2870 | Enzo Life Science | BML-EI395 | NOX inhibitor |
Zeiss 510 LSM confocal microscope | Zeiss | NA | Confocal microscope |
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