JoVE Logo

Accedi

È necessario avere un abbonamento a JoVE per visualizzare questo. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

I polimerici sono vescicole polimeriche autoassemblate che si formano in forme sferiche per ridurre al minimo l'energia libera di Gibb. Nel caso della somministrazione di farmaci, le strutture più allungate sono utili. Questo protocollo stabilisce metodi per creare più polimerisomi simili a barre, con proporzioni allungate, utilizzando il sale per indurre la pressione osmotica e ridurre i volumi delle vescicole interne.

Abstract

I polimerici sono vescicole a doppio strato legate alla membrana create da copolimeri a blocchi anfifilici che possono incapsulare carichi utili sia idrofobici che idrofili per applicazioni di somministrazione di farmaci. Nonostante la loro promessa, i polimeri sono limitati nell'applicazione a causa della loro forma sferica, che non è prontamente assorbita dalle cellule, come dimostrato dagli scienziati delle nanoparticelle solide. Questo articolo descrive un metodo a base di sale per aumentare le proporzioni dei polimeromi sferici a base di poli(glicole etilenico) (PEG). Questo metodo può allungare i polimerisomi e, infine, controllare la loro forma finale aggiungendo cloruro di sodio nella dialisi post-formazione. La concentrazione di sale può essere variata, come descritto in questo metodo, in base all'idrofobicità del copolimero a blocchi utilizzato come base per il polimero e la forma bersaglio. Le nanoparticelle allungate hanno il potenziale per indirizzare meglio l'endotelio nei vasi sanguigni di diametro maggiore, come le vene, dove si osserva la marginazione. Questo protocollo può espandere le applicazioni terapeutiche delle nanoparticelle utilizzando tecniche di allungamento in tandem con i benefici a doppio carico e a lunga circolazione dei polimerisomi.

Introduzione

La modulazione della forma è un modo relativamente nuovo ed efficiente per migliorare la somministrazione di farmaci mediata da nanoparticelle. Non solo il cambiamento nella morfologia aumenta la superficie delle particelle, che a sua volta consente una maggiore capacità di carico, ma ha anche implicazioni su tutta la linea per migliorare la stabilità, il tempo di circolazione, la biodisponibilità, il targeting molecolare e il rilascio controllato1. I polimerisomi, la nanoparticella di messa a fuoco in questo metodo, tendono ad auto-assemblarsi termodinamicamente in una forma sferica, che si è dimostrata poco pratica nell'assorbimento cellulare ed è più facilmente rilevabile nel sistema immunitario come corpo estraneo. Essere in grado di allungare la struttura in un prolato o in un'asta consentirà al portatore di farmaci di eludere i macrofagi imitando le cellule native e consegnare con maggiore successo al loro target desiderato2,3,4,5,6,7. I vantaggi significativi dei polimerisomi, tra cui la protezione legata alla membrana dei carichi utili, la reattività agli stimoli della membrana e il doppio incapsulamento dei farmaci idrofili e idrofobici8,9,10,che li rendono forti candidati per la somministrazione di farmaci vengono mantenuti durante la modulazione della forma.

Esistono molti metodi diversi per modulare le forme dei polimerisomi e ognuno presenta i rispettivi vantaggi e svantaggi. Tuttavia, la maggior parte di questi metodi rientra in due categorie: variazione di pressione osmotica guidata da solvente e da sale11. Entrambi gli approcci mirano a superare l'energia di flessione presente dopo che i polimerisomi si sono formati in una forma di equilibrio sferico. Introducendo un gradiente di pressione osmotica, i polimerisomi possono essere costretti a piegarsi in strutture allungate nonostante le forti energie di flessione11,12.

Il metodo a base di solventi esplora il cambiamento di forma ispirato al lavoro di Kim e van Hest13. Hanno plastificato i polimerisomi in una miscela organica di solvente e acqua per intrappolare i solventi organici nella membrana della vescicola e guidare l'acqua fuori dal nucleo della vescicola. Alla fine, il volume interno della particella è così basso che si allunga. Mentre questo metodo ha mostrato promesse, manca di praticità. Questo metodo richiede solventi diversi per ogni singola spina dorsale polimerica coinvolta nella modulazione. Pertanto, non è ampiamente applicabile per promuovere il cambiamento di forma. Al contrario, il metodo a base di sale è uniforme e utilizza un driver universale che può introdurre pressione osmotica a molti polimerisomi a base di copolimeri a blocchi.

Questo progetto utilizza il metodo a base di sale introdotto da L'Amoreaux et al14. Questo protocollo prevede due cicli di dialisi. Uno mira a purificare e solidificare i polimeromi poli(glicole etilenico)-b-poli(acido lattico) (PEG-PLA) rimuovendo il solvente organico che potrebbe essere rimasto intrappolato nel doppio strato durante la produzione e uno che promuove il cambiamento di forma. La seconda fase di dialisi introduce una soluzione NaCl da 50 mM che crea un gradiente di pressione osmotica per guidare il cambiamento di forma. Questo metodo è supportato da Salva et al., che notano che lo stress ipertonico in una soluzione causerà la riduzione della vescicola15. Questo metodo si basa su un metodo precedentemente pubblicato14 che esamina due diversi polimerisomi a base di poliestere e vari gradienti salini da 50-200 mM NaCl. I poliesteri sono utilizzati grazie alla loro biocompatibilità e biodegradazione. Il gradiente salino ha effetti variabili sulla forma a seconda dell'idrofobicità della spina dorsale del copolimero a blocchi. Può essere usato per creare prolati, bastoncelli e stomatociti. Questo metodo guidato dal sale è stato scelto per la facilità di replica e la versatilità sperimentale.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocollo

1. Formazione di polimerismi sferici utilizzando un metodo di iniezione di solvente

  1. Dissoluzione di poliesteri in solvente organico
    NOTA: Un solo poliestere deve essere sciolto nel rispettivo solvente organico alla volta per formare polimerici.
    1. Sciogliere i poliesteri PEG-PLA o PEG-b-poly (acido lattico-co-glicolico) (PEG-PLGA) in dimetilsolfossido (DMSO) ad una concentrazione dell'1,5% in peso. In particolare, sciogliere 0,015 g di poliestere selezionato in 1 mL di DMSO (15 mg/mL). La completa dissoluzione del polimero può richiedere periodi fino a 15 minuti di vortice.
  2. Mentre il poliestere si dissolve in solvente organico, impostare l'apparato di iniezione del solvente secondo la Figura 1.
    1. Posizionare una piastra di agitazione direttamente sotto la pompa a siringa verticale. Posizionare un flaconcino di vetro da 5 ml con 1 mL di acqua deionizzata di tipo II e una barra di agitazione in miniatura sulla piastra di agitazione.
    2. Regolare l'altezza della pompa della siringa per consentire alla punta dell'ago di essere completamente immersa in acqua deionizzata di tipo II.
    3. Impostare la velocità di infusione della pompa della siringa a 5 μL/min.
      NOTA: se si utilizza una pompa a siringa di piccolo volume, l'adattatore con la siringa può essere impostato su un supporto ad anello. Se si utilizza una pompa a siringa di grande volume, la pompa può essere posizionata verticalmente su un jack da laboratorio per regolare l'altezza.
  3. Eseguire l'iniezione di solvente trafilando il solvente organico e la soluzione di poliestere (punto 1.1.1) in un ago da 27 G con una lunghezza dell'ago di 1/2".
    1. Posizionare l'ago nella pompa della siringa e assicurarsi che sia completamente sicuro. Regolare il blocco di spinta per toccare l'estremità dello stantuffo della siringa.
    2. Avviare la piastra di agitazione in modo che l'acqua stia ruotando a 100 giri / min, quindi avviare la pompa della siringa.
  4. Una volta che la pompa della siringa ha completamente infuso il solvente organico e il polimero nell'acqua di agitazione, rimuovere dalla barra di agitazione e tappare il flaconcino di vetro.
  5. Caratterizzare i polimerisomi tramite la diffusione dinamica della luce (DLS).
    1. Prendi 1 mL di acqua, ora con una piccola percentuale di solvente organico e polimero, e metti in una cuvetta da 1 mL.
    2. Utilizzando le impostazioni della Tabella 1, eseguire DLS posizionando una cuvetta da 1 mL nel sistema e impostando l'esecuzione. Leggere e raccogliere il diametro ponderato per intensità del polimero e l'indice di polidispersità (PDI).
      NOTA: Una cuvetta di plastica funziona bene in questo caso, poiché la quantità di solvente organico è molto bassa. Tuttavia, una cuvetta di vetro funzionerà anche se esistono preoccupazioni.
  6. Confermare la formazione di polimerismi sferici utilizzando la microscopia elettronica a trasmissione (TEM) e la microscopia elettronica a scansione (SEM).
    1. Ottimizza i protocolli TEM e SEM in base alle apparecchiature disponibili. Risultati rappresentativi sono stati ottenuti a 120 kV nel TEM e 5,0 kV nel SEM.
    2. Se i polimerisomi non sono visibili usando EM, applicare l'acetato di uranile come macchia di fondo.
      NOTA: I dettagli sull'imaging TEM e SEM per la modulazione della forma dei polimerisomi a base di poliestere sono disponibili nel riferimento14. Le informazioni sulle tecniche di microscopia elettronica per le nanoparticelle molli sono dettagliate nel riferimento16.

2. Dialisi per rimuovere il solvente organico

  1. Lavare una membrana per dialisi da 300 kDa secondo i protocolli forniti dal produttore.
  2. Aggiungere 1 mL di soluzione polimerica nel serbatoio del dispositivo di dialisi.
  3. Posizionare il dispositivo di dialisi in un becher da 250 mL con 150 mL di acqua deionizzata di tipo II su una piastra di agitazione. Impostare la piastra di agitazione a una velocità che consenta un movimento delicato del dispositivo di dialisi e lasciare mescolare durante la notte.
    NOTA: Se durante la dialisi si forma un vortice, la velocità deve essere ridotta.
  4. Al termine della dialisi, estrarre la soluzione polimerica da 1 mL dal dispositivo di dialisi. Caratterizzare la soluzione polimerica, seguendo il passaggio 1.5.
    NOTA: La raccolta di queste informazioni è rilevante per determinare il successo del protocollo di modulazione della forma, in quanto si dovrebbe essere in grado di identificare un aumento della PDI se il polimeroma è stato allungato.

3. Dialisi contro i gradienti salini

  1. Creare 150 mL di tampone salino desiderato, con una concentrazione di 50 mM, 100 mM o 200 mM di cloruro di sodio in base alle proprietà finali del polimero desiderato. In generale, l'aumento della concentrazione di sale porta ad un aumento dell'allungamento dei polimeri.
  2. Prendere la soluzione polimerica che è stata dializzata e caratterizzata e reinserire nel dispositivo di dialisi. Posizionare il dispositivo di dialisi caricato in 150 ml della soluzione salina desiderata e lasciare mescolare delicatamente per 18 ore.
    NOTA: i polimerisomi modulati in forma possono essere conservati e mantenere la loro forma in una soluzione isotonica per periodi fino a 7 giorni.

4. Caratterizzazione del polimeroma modulato dalla forma

  1. Dopo la modulazione della forma, eseguire la caratterizzazione dei polimerismi tramite DLS, TEM e SEM. Se i polimerisomi non sono visibili usando EM, applicare l'acetato di uranile come macchia di fondo.
  2. Eseguire misurazioni DLS come descritto nella fase 1.5, prestando particolare attenzione alle misurazioni PDI rispetto ai polimerismi sferici, poiché un cambiamento nella PDI suggerisce un efficace cambiamento di forma nei polimerisomi.
  3. Garantire l'uso di controlli appropriati per l'imaging, in particolare i polimerisomi modulati non di forma, per garantire il successo del metodo.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Risultati

La Tabella 2 presenta i risultati attesi quando si segue il passaggio 1 del protocollo. Si noti che DMSO è usato come solvente sia per PEG-PLA che per PEG-PLGA nella formazione di polimerisomi. La deviazione da questo solvente è possibile, poiché altri solventi miscibili in acqua dissolveranno i copolimeri ma si prevede che cambino i risultati. Si prevede che la PDI sarà inferiore a 0,2, indicando la formazione di polimerisomi monodispersi17. Si noti che l'aumento dell'idrofob...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussione

I sistemi autoassemblati sono notoriamente incontrollabili. Le loro proprietà finali, tra cui dimensioni, forma e struttura, sono guidate dalle proprietà idrofobiche dell'anfifilo scelto e dall'ambiente solvente selezionato. I copolimeri a blocchi anfifilici tendono verso forme sferiche, che minimizzano l'energia libera di Gibb e portano all'equilibrio termodinamico23, formando così polimerisomi. A causa della loro natura di equilibrio, i polimerisomi sono significativamente più difficili da a...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Divulgazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Riconoscimenti

Questo progetto è stato finanziato in parte dal National Institutes of Health Project numero 5P20GM103499-19 attraverso il programma Student Initiated Research Project. Questo lavoro è stato anche parzialmente supportato dal Creative Inquiry Program di Clemson. Riconosciamo anche Nicholas L'Amoreaux e Aon Ali che inizialmente hanno lavorato alla creazione di questo protocollo, pubblicando il loro primo articolo citato qui14.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
15*45 vials screw thread w/cap attachedFisherbrand9609104000
Dimethyl SulfoxideFisher ChemicalD128-1
Dimethyl SulfoxideBDHBDH1115-1LP
Isoremp stirrers, hotplates, and stirring hotplatesFisher scientificCIC00008110V19
LEGATO 130 SYRINGE PUMPkd Scientific788130
PEG(1000)-b-PLA(5000), Diblock PolymerPolysciences Inc24381-1note the molecular weights when replicating
Poly(ethylene glycol) (2000) Methyl ether-block-poly(lactide-co-glycolide) (4500)Sigma aldrich764825-1Gnote the molecular weights when replicating
Single-Use Syringe/BD PrecisionGlide Needle combination, sterile, BD medicalBD medicalBD305620Tuberculin
Sodium ChlorideBDHBDH9286
Zetasizer Nano ZSMalvern

Riferimenti

  1. Varma, L. T., et al. Recent advances in self-assembled nanoparticles for drug delivery. Current Drug Delivery. 17 (4), 279-291 (2020).
  2. Salatin, S., Maleki Dizaj, S., Yari Khosroushahi, A. Effect of the surface modification, size, and shape on cellular uptake of nanoparticles. Cell Biology International. 39 (8), 881-890 (2015).
  3. Baio, J. E., et al. Reversible activation of pH-sensitive cell penetrating peptides attached to gold surfaces. Chemical Communications. 51 (2), 273-275 (2015).
  4. Zhou, Y., et al. Mesoporous silica nanoparticles for drug and gene delivery. Acta Pharmaceutica Sinica B. 8 (2), 165-177 (2018).
  5. Champion, J. A., Mitragotri, S. Role of target geometry in phagocytosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (13), 4930-4934 (2006).
  6. Banerjee, A., Qi, J., Gogoi, R., Wong, J., Mitragotri, S. Role of nanoparticle size, shape and surface chemistry in oral drug delivery. Journal of Controlled Release. 238, 176-185 (2016).
  7. Kolhar, P., et al. Using shape effects to target antibody-coated nanoparticles to lung and brain endothelium. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (26), 10753-10758 (2013).
  8. Meng, F., Zhong, Z., Feijen, J. Stimuli-responsive polymersomes for programmed drug delivery. Biomacromolecules. 10 (2), 197-209 (2009).
  9. Iqbal, S., Blenner, M., Alexander-Bryant, A., Larsen, J. Polymersomes for therapeutic delivery of protein and nucleic acid macromolecules: from design to therapeutic applications. Biomacromolecules. 21 (4), 1327-1350 (2020).
  10. Discher, D. E., Ahmed, F. Polymersomes. Annual review of biomedical engineering. 8, 323-341 (2006).
  11. Seifert, U., Berndl, K., Lipowsky, R. Shape transformations of vesicles: Phase diagram for spontaneous- Curvature and bilayer-coupling models. Physical Review A. 44 (2), 1182-1202 (1991).
  12. Rikken, R. S. M., et al. Shaping polymersomes into predictable morphologies via out-of-equilibrium self-assembly. Nature Communications. 7, 1-7 (2016).
  13. Kim, K. T., et al. Polymersome stomatocytes: Controlled shape transformation in polymer vesicles. Journal of the American Chemical Society. 132 (36), 12522-12524 (2010).
  14. L'Amoreaux, N., Ali, A., Iqbal, S., Larsen, J. Persistent prolate polymersomes for enhanced co-delivery of hydrophilic and hydrophobic drugs. Nanotechnology. 31 (17), 175103(2020).
  15. Salva, R., et al. Polymersome shape transformation at the nanoscale. ACS Nano. 7 (10), 9298-9311 (2013).
  16. Skoczen, S. L., Stern, S. T. Characterization of Nanoparticles Intended for Drug Delivery. Methods in Molecular Biology. 1682, Springer New York. New York, NY. (2018).
  17. Bhattacharjee, S. DLS and zeta potential - What they are and what they are not. Journal of Controlled Release. 235, 337-351 (2016).
  18. Men, Y., Li, W., Lebleu, C., Sun, J., Wilson, D. A. Tailoring polymersome shape using the Hofmeister effect. Biomacromolecules. 21 (1), 89-94 (2020).
  19. Decuzzi, P., et al. Size and shape effects in the biodistribution of intravascularly injected particles. Journal of Controlled Release. 141 (3), 320-327 (2010).
  20. Liu, Y., Tan, J., Thomas, A., Ou-Yang, D., Muzykantov, V. R. The shape of things to come: Importance of design in nanotechnology for drug delivery. Therapeutic Delivery. 3 (2), 181-194 (2012).
  21. Tao, L., et al. Shape-specific polymeric nanomedicine: Emerging opportunities and challenges. Experimental Biology and Medicine. 236 (1), 20-29 (2011).
  22. L'Amoreaux, N., Ali, A., Iqbal, S., Larsen, J. Persistent prolate polymersomes for enhanced co-delivery of hydrophilic and hydrophobic drugs. BioRxiv. , 796201(2019).
  23. Chandler, D. Interfaces and the driving force of hydrophobic assembly. Nature. 437 (7059), 640-647 (2005).
  24. Wong, C. K., Mason, A. F., Stenzel, M. H., Thordarson, P. Formation of non-spherical polymersomes driven by hydrophobic directional aromatic perylene interactions. Nature Communications. 8 (1), (2017).
  25. Abdelmohsen, L. K. E. A., et al. Shape characterization of polymersome morphologies via light scattering techniques. Polymer. 107, 445-449 (2016).
  26. Men, Y., et al. Nonequilibrium Reshaping of polymersomes via polymer addition. ACS Nano. 13 (11), 12767-12773 (2019).
  27. Meeuwissen, S. A., Kim, K. T., Chen, Y., Pochan, D. J., van Hest, J. C. M. Controlled shape transformation of polymersome stomatocytes. Angewandte Chemie. 123 (31), 7208-7211 (2011).
  28. Wong, C. K., et al. Faceted polymersomes: A sphere-to-polyhedron shape transformation. Chemical Science. 10 (9), 2725-2731 (2019).
  29. Chidanguro, T., Ghimire, E., Simon, Y. C. Shape-transformation of polymersomes from glassy and crosslinkable ABA triblock copolymers. Journal of Materials Chemistry B. 8 (38), 8914-8924 (2020).
  30. Van Oers, M. C. M., Rutjes, F. P. J. T., Van Hest, J. C. M. Tubular polymersomes: A cross-linker-induced shape transformation. Journal of the American Chemical Society. 135 (44), 16308-16311 (2013).
  31. Che, H., et al. Pathway dependent shape-transformation of azide-decorated polymersomes. Chemical Communications. 56 (14), 2127-2130 (2020).
  32. Haryadi, B. M., et al. Nonspherical nanoparticle shape stability is affected by complex manufacturing aspects: Its implications for drug delivery and targeting. Advanced Healthcare Materials. 8 (18), 11-13 (2019).
  33. Katterman, C., Pierce, C., Larsen, J. Combining nanoparticle shape modulation and polymersome technology in drug delivery. ACS Applied Bio Materials. , (2021).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Ristampe e Autorizzazioni

Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi Autorizzazione

Esplora altri articoli

BioingegneriaNumero 170polimeronanomedicinamodulazione di formananotecnologiadrug deliverypoliesteri

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Riservatezza

Condizioni di utilizzo

Politiche

Ricerca

Didattica

CHI SIAMO

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Tutti i diritti riservati