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요약

여기서, 우리는 겔화 된 지하 매트릭스에 튜브 형성 분석을 사용하여 혈관 네트워크 형성에 루타 graveolens의 물 추출물의 효과를 평가한다.

초록

혈관 신생은 새로운 혈관의 형성으로 이끌어 내고 몇몇 신호 전광 통로를 관련시키는 내피 세포 증식, 분화 및 이동과 같은 다른 프로세스를 포함하는 현상입니다. 여기에서 우리는 관 형성 분석이 혈관 신생에 천연물의 충격을 평가하고 관련시킨 분자 기계장치를 조사하기 위하여 간단한 시험관 내 방법이다는 것을 보여줍니다. 특히, 루타 자갈렌즈(RGWE)의 물 추출물이 존재할 때, 내피 세포는 더 이상 세포 세포를 형성할 수 없으며 인간 배꼽 정맥 내피 세포(HUVEC) 튜브 형성에 대한 RGWE 효과가 폐지되는 데에는 MEK의 구성 활성화.

서문

혈관 신생은 기존의 혈관에서 새로운 혈관의 형성으로 이끌어 내고 배아 발생 및 기관 성장 도중 생기는 생리적인 프로세스입니다. 성인기에서 혈관 신생은 사이클링 난소, 임신 중 태반, 상처 치유 및 수리 중에만 활성화됩니다. 혈관 신생은 내피 세포가 증식, 분화 및 이동하는 능력에 따라 달라지며 그대로 혈관네트워크를 형성합니다 1. 그러나 염증성, 대사 성 및 류마티스 질환과 같은 여러 장애에서 혈관 신생 과정이 변경되고 혈관 신생이 과도해집니다. 더욱이, 통제되지 않는 혈관신생 프로세스는 또한 종양진행 및 전이를 자극합니다 1. 이러한 이유로, 지난 10년간, 연구연구는 암, 안구, 관절 또는 피부 질환에서 과도한 혈관신생의 억제를 목표로 하는 새로운 치료 전략의 개발에 초점을 맞추고있다2,3.

혈관 내피 성장 인자(VEGF)는 현재 항혈관신생 요법 4의 주요표적을 나타내며, 과도한 혈관신생을 방지하기 위해 여러 개의 항-VEGF 단일클론 항체가 개발 및 합성되고 있다. 그러나, 이러한 합성 약물은 심각한 부작용을 보이고 불리한 비용대 이익 비율을 가지고 5,6. 따라서, 보완하고 현재 사용되는 약물과 결합하는 최소한의 부작용으로 과도한 혈관 신생을 제한하는 새로운 치료 전략을 찾는 것이 필수적이다. 이러한 새로운 약물은 높은 화학적 다양성과 생화학적 특이성을 특징으로하는 천연 제품 중에서 찾을 수 있습니다.

이 문서에서는, 우리는 시험관에서 겔화 된 지하 매트릭스에 튜브를 형성하는 HUVECs의 능력에 RGWE의영향을 평가하는 간단한 방법을 제안한다 5. 실제로, RGWE는 루틴이 주요성분인가운데 플라보노이드 및 폴리페놀과 같은 이차 대사산물의 혼합물이다. 그들 중 많은 사람들이 이미 항 염증 및 혈관 보호 제 7,8,9,10,11로테스트되었습니다. 더욱이, 우리는 최근에 RGWE, 그러나 루틴이 아니라, 겔화된 지하 매트릭스에 관을 형성하는 HUVEC 능력을 억제할 수 있고 이 현상이 MEK-ERK 통로에 의해 중재된다는 것을, RGWE를 잠재적인 치료 도구로 나타낼 수 있다는 것을 증명했습니다 과도 한 새로운 혈관 형성을 방지5.

프로토콜

1. RGWE 준비

  1. 식물학자의 감독 하에 봄/여름 철에 식물에서 R. graveolens 잎을 수집합니다.
    참고: 이 경우, 잎은 나폴리 식물원에서 약용 식물의 실험 섹션에서 수집되었다, 이탈리아5. 식물은 자발적이고 다년생이며 지중해 지역에 존재합니다(그림1).
  2. 잎 250g의 무게와 가위로 잘게 자릅니다.
  3. 원추형 플라스크에 잎을 넣고 다진 잎 250g에 증류수 1L를 넣고 110 °C에서 60 분 동안 끓이십시오.
  4. 3mm 깔때기 필터 용지를 사용하여 끓인 잎을 물 추출물을 나타내는 액체 상에서 분리합니다.
  5. 0.22 μm 필터를 통해 액체 상을 걸쳐 비커에 수집합니다. 비커를 파라필름으로 덮고 추출물을 밤새 -80°C에서 동결시되.
  6. 파라 필름에 바늘로 10 - 15 구멍을 만들고 동독에서 추출물을 동독화하십시오. 분말을 얻기 위해 며칠이 걸릴 수 있습니다.
  7. 얻어진 분말을 계량하고, 알리쿼트으로 나누고, 필요할 때까지 4°C에 보관하십시오. 1 년 동안 보관 할 수 있습니다.
  8. 실험에 필요한 경우, 50 mg/mL의 표준 농도로 증류수로 분말을 희석, 재고 용액을 준비합니다. 작은 볼륨 (예를 들어, 1 mL) aliquots로 분리합니다. 이 제제는 사용될 때까지 -20°C에서 보관될 수 있지만 분자의 산화로 인해 며칠 이상 4°C에서 보관할 수 없다. 동결 및 해동을 피하십시오.

2. 세포 배양

  1. 내피 세포 성장 배지에서 HUVECs를 육성: 내피 기저 배지 1 μg/mL 하이드로 코르티손 과 1 ng/mL 표피 성장 인자, 10% FBS, 페니실린/스트렙토마이신을 37°C에서 5% CO2의 분위기에서 보충하였다.
  2. 때 80% 결합, 의 비율로 세포를 분할 1:3 모든 통로. 성장 인자에 대한 반응에서 명백한 차이를 보이지 않는 2 ~ 5 개의 대구에서 세포를 사용하십시오. 여섯 번째 통로 후, 세포는 노화가되고 겔화 된 지하 매트릭스에 튜브를 형성하지 않습니다.

3. 감염

  1. HUVECs가 70 % 수렴되면 원하는 유전자로 트랜스 펙트하십시오.
  2. 100 mm 플레이트의 경우, 관심 있는 유전자를 포함하는 1 μg의 pCDNA3 벡터와 1 μg의 빈 pCDNA3 벡터를 사용한다(이 경우, 구성적으로 활성 MEK[caMEK])).
  3. 3 μL의 리포펙타민 2,000의 DNA의 복합체, 감소된 혈청 배지로 희석 (재료표참조) 최종 부피 200 μL. 세포에서 배지를 제거하고 신선한 완전한 배지의 1 mL로 대체; 그런 다음 셀에 트랜스펙팅 솔루션을 추가합니다. 37 °C에서 인큐베이터에서 세포를 배양하고 5% CO2로 배양합니다. 또한 제조 업체의 지침에 따라 lipofectamine 2,000에서 다른 다른 형질 감염 에이전트를 사용할 수 있습니다.
  4. 완전한 신선한 배지 의 7 mL를 첨가 3 시간 후, 다음 애혈술을 진행하기 전에 24 - 48 시간 동안 37 °C에서 세포를 추가로 배양한다. 형질전환 다음날, 매질을 신선한 완전한 매체로 교체하십시오.

4. 튜브 형성 분석

  1. 겔화 된 지하실을 준비하기 전에 96 웰 플레이트 및 피펫 팁을 4 °C에서 1 시간 동안 냉각시.
  2. 지하 준비의 순간에, 얼음 (0 °C)에 접시를 넣고 거품의 형성을 피하면서 각 우물에 차가운 매트릭스 의 50 μL을 추가합니다. 매트릭스가 실온에서 고체가 되기 때문에 매트릭스 함유 바이알은 절차 중에 얼음위에 보관되어야 합니다.
  3. 플레이트를 37°C에서 5% CO2로 30분 이상 동안 인큐베이터에 넣고 지하가 중합되도록 한다.
  4. 그 동안, 세포를 수확. HUVECs를 0.25% 트립신/0.53 mM EDTA 용액의 1 mL로 세척; 그런 다음 트립신-EDTA 용액 2 mL를 추가하고 37°C에서 5분 동안 배양합니다. 이어서, 세포가 현탁되는 배지를 수집하고 3분 동안 264 x g에서 원심분리에 의해 분리된 세포를 수확한다.
  5. 세포를 계산하기 위해, 0.2 mL의 세포 현탁액을 PBS의 0.5 mL및 0.3 mL의 0.4% 트라이판 블루 용액에 추가한다. 실온에서 5 분 후, 뷔르커 챔버에서 세포를 계산합니다.
  6. 2 x 104 세포 / 50 μL의 농도로 완전한 배지로 세포를 다시 일시 중단하십시오.
  7. 셀 수에주의하십시오. 너무 많거나 너무 적은 세포는 겔화 된 지하실에 올바른 방법으로 튜브를 형성하지 않을 수 있습니다.
  8. RGWE (0.01, 0.1 및 1 mg /mL)의 증가 복용량을 준비하고 배양 배지 또는 루틴 (12, 120 및 300 μg / mL)에서 재고 용액을 희석하고 최종 부피 50 μL / well에 추가하고 50 μL / well의 세포 현탁액을 추가하십시오. 각 웰의 최종 부피는 100 μL이 될 것입니다. 각 실험 조건에 대해 4~6개의 우물을 준비합니다. 대조군으로서, 배양 배지내의 증류수(vehicle)를 1:50의 비율로 희석시켰다.
  9. 6~ 24시간 범위의 시간 동안 37°C 및 5% CO2에서 인큐베이터에서 세포를 배양한다.
  10. 10배의 배율로 위상 대비 현미경을 사용하여 시딩 후 6~24시간 범위 내에서 세포를 관찰합니다. HUVECs는 6 시간 이내에 튜브와 같은 구조를 형성 할 수 있지만 12 - 18 시간 후에 더 나은 결과를 관찰 할 수 있습니다.
  11. 영상 획득 후, 세포는 지하 매트릭스로부터 분리될 수 있고 세포 수에 대한 치료의 효과를 평가하기 위해 카운트될 수 있다. 각 우물에 대해 배지를 제거하고 24 U/mL의 농도로 디스파스를 추가하고 플레이트를 37 °C에서 1 시간 동안 넣습니다. 이어서, 각각의 우물로부터, 세포가 부유되는 배지를 수집하고 3 분 동안 264 x g에서 원심분리에 의해 분리 된 세포를 수확. PBS의 0.2 mL에서 다시 중단. 세포를 계산하려면 0.2 mL의 세포 현탁액을 PBS의 0.5 mL에 추가하고 0.3 mL의 0.4% 트라이판 블루 용액을 추가합니다. 실온에서 5 분 후, 뷔르커 챔버의 세포를 계산합니다.
  12. 튜브 형성 분석의 결과를 정량화하기 위해, 적어도 3개의 튜브가 결합되는 분기 점의 수를 카운트할 수 있다. 적절한 이미지 소프트웨어를 사용하여, 각 현미경의 각 필드에 대해 분기 점의 수를 계산하고 각 실험 조건에 대한 평균 ± 표준 오차(SE)를 계산한다. 두 꼬리 t-검정을 사용하여 통계적 유의를 평가합니다.

결과

혈관 신생에 대한 RGWE의 영향을 평가하기 위해 겔화 된 지하 매트릭스에 튜브 형성 분석기를 실시했습니다. 그것에 경작될 때, HUVECs는 길쭉하게 보이고 세포 세포 네트워크를 형성하기 위하여 서로 연결되는 세포에서유래하는 관 같이 구조물을 형성합니다 (그림 2). 3에서는 RGWE로 처리된 HUVECs의 분기 수가 대조군 조건에 비해...

토론

천연 화합물은 높은 화학적 다양성 및 생화학적 특이성을 특징으로 하며 잠재적으로 치료 분자의 공급원을 나타낸다. 여기서, 우리는 식물 R. graveolens에서 물 추출물을 얻는 방법을 보여주고 혈관 형성 분석법을 수행하기 쉽고 신뢰할 수 있으며 혈관 신생에 대한 RGWE의 효과를 조사하는 데 유용한 정량적 방법으로 제안합니다. 완전한 물 추출물을 얻으려면 R. graveolens 잎을 1 시간 동안...

공개

저자는 공개 할 것이 없다.

감사의 말

이 작품은 마리아 테레사 이방인과 AIRC 펀드 IG18999 마우리치오 비풀코에 루카 콜루치 - 다마토와 발레 프로그램 기금에 폰디 디 아테네에 의해 투자되었다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
HUVEC cellsClontechC2519A
FBSInvitrogen10270106
EBM-2 basal mediumClontechcc3156
Single quot kit- supplemets and growth factorsclontechcc4147
MatrigelCorning354234
96-well platesThermo Scientific167008
15 mL conical tubesSarstedt62,554,502
10 mL disposable serological pipetteSarstedt861,254,001
5 mL disposable serological pipetteSarstedt861,253,001
1,000 μL pipetteGilsonPipetman classic
100 μL pipetteGilsonPipetman classic
20 μL pipetteGilsonPipetman classic
p1000 pipette tipsSarstedt
p20-200 pipette tipsSarstedt70,760,502
Burker chamberFortuna
Trypan blu stainGibco15250-061
DPBSGibco14190-094
mill-ex 0.22 μm filtersMilliporeSLGS033SS
LyophilizerVirTis-SP Scientific
IncubatorThermo Scientific
CO2AirCos
Pen-StrepGibco15070-063
100 mm dishSarstedt833,902
pcDNA3Invitrogenv79020
Lipofectamine-2000Invitrogen11668027
Opti-MEMGibco31985070Reduced serum medium
RutinSigma-AldrichR5143-50G
Axiovert 25 microscopeZeiss
AmScope MD500 cameraAmScope
DispaseThermo ScientificD4818
Lab heaterFalc
ParaFilmAmerican National Can

참고문헌

  1. Carmeliet, P. Angiogenesis in life, disease and medicine. Nature. 438 (7070), 932-936 (2005).
  2. Carmeliet, P., Jain, R. K. Molecular mechanisms and clinical applications of angiogenesis. Nature. 473 (7347), 298-307 (2011).
  3. Ferrara, N., Kerbel, R. S. Angiogenesis as a therapeutic target. Nature. 438 (7070), 967-974 (2005).
  4. Ravishankar, D., Rajora, A. K., Greco, F., Osborn, H. M. I. Flavonoids as prospective compounds for anti-cancer therapy. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 45, 2821-2831 (2013).
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  13. DeCicco-Skinner, K. L., et al. Endothelial cell tube formation assay for the in vitro study of angiogenesis. Journal of Visualized Experiments. (91), e51312 (2014).

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