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* 이 저자들은 동등하게 기여했습니다
이 프로토콜은 비장 세포의 운명과 장 수를 연구 하는 강력한 도구 역할을 하는 기술적으로 도전적인 모델 인 바소 이종 화제 비장 이식의 마우스 모델의 수술 단계를 자세히 설명 하 고, 별개의 비장의 메커니즘 세포 집단은 질병 진행 및 이식 면역에 있다.
비장은 면역 및 조 혈 시스템의 항상성에 중요 한 역할을 하는 독특한 림프 기관. 원인에 관계 없이 비장 절제술을 받은 환자는 압도적 인 사후 비장 절제술 감염을 개발 하 고 깊은 정 맥 혈전 증과 악성 종양의 증가 위험을 경험 하는 경향이 있다. 최근, 역학 연구는 비장 절제술은 심혈 관 질환의 발생과 관련 될 수 있음을 표시, 비장의 생리 적 기능이 아직 완전히 인식 되지 않은 것을 시사. 여기서, 우리는 혈관 화 된 이종 화제 비장 이식의 마우스 모델을 소개 하 고,이는 상이한 생물학적 과정에서 비장 면역 세포 서브 세트의 기능 및 행동 활동을 연구 하기 위해 활용 될 수 있을 뿐만 아니라, 또한 시험 하는 강력한 도구가 될 수 있다 특정 질병에서 비장 이식의 치료 잠재력. 이 모형의 주요 외과 단계는 기증자 비장 수확, 수령인 기본 비장의 제거, 및 비장 접목 혈관 신생을 포함 합니다. 콘 제 닉 마우스 균 주를 사용 하 여 (예를 들면, 마우스 CD 및 CD를 가진 생쥐), 우리는 신 유전학 이식 후에, 기증자 유래 비장 림프 구와 골수성 세포가 이식 수술의 날 초기에 접목에서 이전 된 것을 관찰 했습니다. 여러 유형의 받는 사람 세포의 유입, 따라서 독특한 키메라를 생성. 비교적 어려운 기술에도 불구 하 고,이 절차는 > 90% 성공률으로 수행 할 수 있습니다. 이 모델은 비장 유래 면역 세포에 대 한 별개의 역할을 발견 할 수 있는 좋은 기회를 제공 하 여 정상 상태 및 비장의 이식에 따라 질병 설정 시의 운명, 장 수 및 기능을 추적 허용 다른 질병 과정.
비장 본문에 가장 큰 보조 림프 장기 이며 면역 및 조 혈 시스템에 중요 하다. 그 기능은 주로 두 가지 형태학 적으로 별개의 구획, 적색 펄프 및 백색 펄프1에 의해 수행 된다. 적색 펄프는 망상 섬유, 망상 세포 및 관련 대 식 세포로 구성 된 정 맥 공동 및 비장 코드의 입체 메시 작업입니다. 이 독특한 구조는 붉은 펄프가 외국 물질과 오래 되거나 손상 된 적혈구를 제거 하는 효과적인 혈액 필터 역할을 할 수 있습니다. 백색 펄프는 모 낭을 포함 하 고, 한계 구역 및 periarteriolar 림프의 보호관 (PAL) 및 항 원 포착 및 처리, 림프 구 유도, 변환, 증식 및 성숙에 대 한 중요 한 사이트입니다2. 그럼에도 불구 하 고 비장은 림프절과 같은 다른 림프 기관이 기능을 수행 할 수 있으며 비장의 손실이 일반적으로 사망으로 이어지는 것이 아니기 때문에 일반적으로 분배 가능한 기관으로 간주 되었습니다. 비장 절제술 따라서 널리 비장 부상 또는 양성 혈액 질환 환자에 대 한 치료 방법으로 수행 된3. 그러나, 비장 절제술을 가진 환자는 많은 장기 합병증을 직면 합니다. 세균 감염은 비장 절제술의 최고 인식 합병증 이다4,5. 최근, 압도적인 후 비장 절제술 패 혈 증은 높은 사망률과 관련 된 비장 절제술의 집중적 인 합병증으로 인식6. 더욱이, 최근의 역학 연구는 비장 절제술이 심혈 관 질환의 발생과 관련 될 수 있음을 나타내며, 비장의 추가 생리 기능을 탐구 하는 것을 제안7,8.
비장 자동 이식 및 비장 allotransplantation 모두 클리닉에서 활용 되었습니다. 현재, 비장에 의해 자동 이식 큰 전조에 만든 파우치에 비장 조직의 섹션을 이식 하 여 외상 비장 절제술 후 비장 기능을 보존 하기 위한 유일한 가능성으로 간주 됩니다9,10. 그러나이 수술의 효능은 수술 후 합병증으로 인해 비장 조직의 무 균 괴 사와 수술 후 유착으로 인 한 작은 창 자 폐색이 발생할 수 있습니다 (11). 비장 allotransplantation 다중 내장 이식12에 관여 합니다. 다중 내장 이식 으로부터의 임상 증거는 비장 allotransplantation 이식 편대 숙주 질환 (GVHD)을 유발 하지 않고 작은 창 자 이식 거부에서 보호 역할을 할 수 있음을 시사한다. 그러나 다중 내장 이식의 구성 요소로 서 비장 allotransplantation의 유익한 효과에 관한 문학은 여전히 제한적 이며 근본적인 기전이 정의 될 수 있다. 2006에서, Yair Reisner et은 마우스에 T 세포가 없는 배아 비장 조직을 이식 하 여 혈우병을 치료할 수 있다고 보고 하였으며, 유전자 질환 인 GVHD (13)를 유발 하지 않고, 비장 이식이 치료 약속을 보유 하 고 있음을 지지 한다 특정 질병. 따라서, 비장 이식의 치료 가능성에 대 한 추가 조사에 대 한 필요성이 있다.
비장 이식의 동물 모델은 비장 이식의 잠재적 인 치료 효과를 테스트 할 뿐만 아니라 질병 진행에서 비장 유래 면역 세포의 비 평가 기능을 탐구 하는 것이 중요 합니다. 실험적인 전체 비장 이식 모델은 코헨14에 의해 검토로 1900 년대 초 이후 문서화 되었습니다. 1969, coburn 리처드 j.와이 외. 쥐에 비장 이식의 기술15,16. 더 최근, 소용돌이 스키 FK 외. 비장 이식17의 마우스 모델을 설명 했다. 쥐 모델에 비해, 비장 이식의 마우스 모델은 여러 가지 고유 한 장점으로 인해 더 매력적 이다. 예를 들어, 마우스 모델을 활용 하 여 쥐 모델에서 사용할 수 없는 광대 한 다양 한 시 약 들에 접근할 수도 있습니다. 또한, 콘 제 닉 마우스 (예를 들어, CD를 사용 하는 마우스, 예컨대)를 이용 하 여 비장이 식은, 비장 (18)의 운명, 장 수 및 기능을 추적 하는 것을 가능 하 게 한다. 소용돌이 스키 FK 외에 의해 작업을 기반으로17, 우리는 또한 쥐에 비장 이식의이 간단 하 고 향상 된 프로토콜을 설립. 아래에 설명 된 프로토콜은 신뢰성과 타당성을 표준화 된 방식으로 결합 하 고 비장 생물학 및 이식 면역을 연구 하는 도구로 활용할 수 있습니다.
이 연구에서 모든 절차와 동물 사용은 노스웨스턴 대학 내부 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC)가 승인한 프로토콜에 따라 수행 되었습니다. 본 연구에서, 8 ~ 10 주 남성 CD 72.8 및 CD 45.1 마우스 (둘 다의 BALB/c 배경, 잭슨 실험실에서)는 각각 비장 기증자 및 수혜자로 사용 되었으며, 신 제네 비장 이식 모델을 생성 하였다. 모든 동물은 노스웨스턴 대학의 동물 시설에서 무 균 환경에 보관 되었다. 안구 윤활제는 건조를 방지 하기 위해 마 취 후 모든 마우스에 적용 되었다.
1. 외과 준비, 마 취 및 진통 요법
2. 기증자 비장 수확
3. 수령인 비장 절제술 및 비장 접목 이식
4. 동물 회복
5. 수술 후 통증 관리
마우스 비장 이식의 전체 절차는 경험 있는 마이크로 외과 의사에 의해 90 분 이내에 완료 할 수 있습니다. 우리 실험실은 쥐에서 100 비장 이식 이상을 수행 했습니다. 성공률은 90% 이상입니다, 모두의 생존에 의해 정의 된 마우스와 비장 후 수술 일 (포드) 1 또는 포드 7 (우리의 연구 종점)에 접목. 비장 이식의 생존은 비장 세포의 거시적 외관 및 유 세포 분석기 분석에 의해...
강력한 증거가 나왔다 비장 유래 단 핵 구는 동맥 경화 증 등의 멸 균 염증 과정에서 중요 한 역할을 한다19, 급성 허 혈 성 뇌 (20 ) 또는 폐 부상18뿐만 아니라 심근 I/R 부상 및 리 모델링21,22,23. 이 보고서는 심혈 관 질환이 중요 한 (특히 그것은 세계적으로 번호를 하나의 살?...
저자는 공개 할 것이 없습니다.
저자는 노스웨스턴 대학 종합 이식 센터와 자원 및 자금 지원을 위한 의학 연구 코어 프로그램의 Feinberg 학교 감사 합니다. 구체적으로, 유 세포 분석 및 조직학 서비스는 노스웨스턴 대학교 유 세포 분석 핵심 시설과 마우스 조직학 및 표현 형 실험실에 의해 제공 되었으며, 각각은 로버트 H에 게 수 여 되는 NCI P30-CA060553에 의해 지지 되 고 있다. 루 리 종합 암 센터. 이 원고를 교정 해 주셔서 감사 합니다.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Ketamine | Wyeth | 206205-01 | |
Xylazine | Lloyd Laboratories | 139-236 | |
Heparin solution | Abraxis Pharmaceutical Products | 504031 | |
Injection grade normal saline | Hospira Inc. | NDC 0409-4888-20 | |
70% Ethanol | Pharmco Products Inc. | 111000140 | |
ThermoCare Small Animal ICU System | Thermocare, Inc. | ||
Adson Forceps | Roboz Surgical Instruments | RS-5230 | |
Derf Needle Holder | Roboz Surgical Instruments | RS-7822 | |
Extra Fine Micro Dissecting Scissors | Roboz Surgical Instruments | RS-5881 | |
Micro-clip | Roboz Surgical Instruments | RS-5420 | |
7-0 silk | Braintree Scientific | SUT-S 103 | |
11-0 nylon on 4-mm (3/8) needle | Sharpoint DR4 | AK-2119 | |
Ms CD45.2 antibody | BD Bioscience | 553772 | |
Ms CD45.1 antibody | BD Bioscience | 553776 | |
Ms CD11b antibody | BD Bioscience | 557657 | |
Ms B220 antibody | BD Bioscience | 553089 | |
Ms Ly6C antibody | eBioscience | 48-5932-80 | |
Ms Ly6G antibody | BD Bioscience | 561236 | |
Ms F4/80 antibody | BD Bioscience | 565614 | |
Ms CD11c antibody | BD Bioscience | 558079 | |
Ms CD3 antibody | eBioscience | 48-0032-82 | |
Ms CD4 antibody | BD Bioscience | 552051 | |
Ms CD8 antibody | BD Bioscience | 563786 | |
LIVE/DEAD™ Fixable Violet Dead Cell Stain Kit | Thermo Fisher | L34955 |
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