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Method Article
조류 배아의 융모막 막 (CAM)은 다양한 연구 분야에 매우 유용하고 적용 가능한 도구입니다. 일본 메추라기 CAM의 특수 ex ovo 모델은 광 역학 치료 조사에 적합합니다.
조류 배아의 융모막 막 (CAM)은 일차 호흡 기관으로 기능하는 얇은 배아 외 막입니다. 그 특성은 혈관 신생, 종양 성장, 약물 전달 시스템 또는 광 역학 진단 (PDD) 및 광 역학 치료 (PDT)를 연구하기위한 우수한 생체 내 실험 모델입니다. 동시에이 모델은 실험 동물을 적절한 대안으로 대체하기위한 요구 사항을 해결합니다. Ex ovo 배양 배아는 물질 적용, 접근, 모니터링 및 문서화가 용이합니다. 가장 자주 사용되는 것은 병아리 CAM입니다. 그러나이 기사에서는 일본 메추라기 CAM의 장점을 저비용 및 고 처리량 모델로 설명합니다. 또 다른 장점은 더 짧은 배아 발달로 더 높은 실험 회전율을 허용합니다. 암 및 미생물 감염의 PDD 및 PDT에 대한 메추라기 CAM의 적합성은 여기에서 탐구됩니다. 예로서, 전달 시스템으로서 지단백질 또는 나노입자와 조합된 광감작제 하이페리신의 사용이 설명된다. 백색광 이미지의 손상 점수와 보라색 빛(405nm) 하에서 CAM 조직의 형광 강도 변화를 조직학적 절편의 분석과 함께 결정했습니다. 메추라기 CAM은 PDT가 혈관구조와 조직에 미치는 영향을 명확하게 보여주었습니다. 또한 모세 혈관 출혈, 혈전증, 작은 혈관의 용해 및 큰 혈관의 출혈과 같은 변화가 관찰 될 수 있습니다. 일본 메추라기 CAM은 광역학 진단 및 치료 연구를 위한 유망한 생체 내 모델로, 종양 혈관신생, 항혈관 및 항균 요법 연구에 적용됩니다.
닭 융모막 막 (CAM) 모델은 잘 알려져 있으며 다양한 연구 분야에서 널리 사용됩니다. 그것은 가스 교환 및 광물 수송을 제공하는 풍부한 혈관 화 된 배아 외 기관입니다1. 이 막의 투명성과 접근성으로 인해 개별 혈관과 그 구조적 변화를 실시간으로 관찰 할 수 있습니다2. 장점에도 불구하고 병아리 CAM에는 다른 조류 종을 사용하여 피할 수 있는 몇 가지 제한 사항(예: 더 큰 사육 시설, 계란 생산 및 사료 소비)이 있습니다. 이 프로토콜에서는 일본 메추라기 (Coturnix japonica) 배아를 사용하는 대안적인 ex ovo CAM 모델이 설명됩니다. 크기가 작기 때문에 닭 CAM보다 훨씬 많은 수의 실험 개체를 사용할 수 있습니다. 또한, 메추라기 배아의 짧은 16 일 배아 발달은 또 다른 이점이다. 메추라기 CAM의 첫 번째 큰 혈관은 배아 일 (ED) 7에 나타납니다. 이것은 병아리 배아 발달 (4-35 단계)과 직접 비교할 수 있습니다. 그러나 발달의 후기 단계는 더 이상 비교할 수 없으며 메추라기 배아3에 더 적은 시간을 필요로합니다. 흥미로운 것은 닭 CAM 4,5,6과 유사한 미세 혈관 분기의 규칙적인 발생입니다. 빠른 성적 성숙, 높은 계란 생산 및 저비용 번식은이 실험 모델7의 사용을 선호하는 다른 예입니다.
조류 CAM 모델은 종종 광 역학 치료 (PDT) 연구에 사용됩니다8. PDT는 여러 형태의 암 (작은 국소 종양) 및 기타 비 종양학 질환을 치료하는 데 사용됩니다. 그 원리는 형광 약물인 감광제(PS)를 손상된 조직에 전달하고 적절한 파장의 빛으로 활성화하는 것입니다. 연구에 사용 된 한 가지 전향 적 PS는 원래 약용 식물 세인트 존스 워트 (Hypericum perforatum)9에서 분리 된 하이퍼 리신입니다. 이 화합물의 강력한 감광성 효과는 광화학적 및 광물리적 특성을 기반으로 합니다. 이들은 약 600 nm에서 형광의 방출을 유도하는 400-600 nm 범위의 다중 형광 여기 피크를 특징으로합니다. 스펙트럼 대역 내에서 하이퍼리신의 흡수 최대값은 540-590nm 범위에 있고, 형광 최대값은 590-640nm범위입니다9. 이러한 감광성 효과를 달성하기 위해, hypericin은 국소 투여 후 405 nm의 파장에서 레이저 광에 의해 여기된다10. 빛의 존재 하에서, 하이퍼 리신은 바이러스 성, 항 증식 성 및 세포 독성 효과11를 나타낼 수 있지만, 전신 독성은 없으며, 유기체로부터 빠르게 방출된다. Hypericin은 수 불용성, 비 형광 응집체를 형성하는 친 유성 물질이므로 고분자 나노 입자 12,13 또는 고밀도 및 저밀도 지단백질 (HDL, LDL)14,15와 같은 여러 유형의 나노 운반체가 세포로의 전달 및 침투를 돕는 데 사용됩니다. CAM은 자연적으로 면역 결핍 시스템이기 때문에 종양 세포를 막 표면에 직접 이식 할 수 있습니다. 이 모델은 또한 정의 된 점수16,17에 따라 PDT 유발 혈관 손상의 정도를 기록하는 데 매우 적합합니다. PDT에 비해 낮은 강도의 빛은 광역학 진단(PDD)에 사용할 수 있습니다. 보라색 여기 LED 광 하에서 조직을 모니터링하는 것은 또한 형광 광의 방출을 초래하는 광민감제18,19,20의 광활성화로 이어지지만, PDT 반응을 시작하고 세포를 손상시키기에 충분한 에너지를 제공하지 않습니다. 종양 시각화 및 진단 또는 사용 된 PS14,15의 약물 동력학 모니터링에 좋은 도구입니다.
이 기사에서는 생존율이 80 % 이상인 메추라기 ex ovo CAM 분석의 준비에 대해 설명합니다. 이 ex ovo 배양은 많은 실험에서 성공적으로 적용되었습니다.
연구는 기관 지침에 따라 수행되었습니다. 모든 장비와 시약은 70% 에탄올 또는 자외선으로 오토클레이브 또는 멸균해야 합니다.
1. 계란 배양
2. 전 오보 배양 준비
알림: 초기 배양 후, 알은 ex ovo 재배를 시작하기에 적합합니다.
그림 1: Ex ovo 배양 준비. (A) 일본 메추라기 알이 저장되고 배양되는 경우. (B) 에탄올로 계란 표면 소독. (C) 달걀 껍질을 가위로 자른다. (D) 계란의 내용물을 우물에 비웁니다. (E) CAM 혈관 구조가 발달하여 3 일 된 배아를 적절하게 준비했습니다. (F) 배양기에 보관 된 배양 플레이트. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: 배아와 실리콘 링이 위에 놓인 6웰 배양 플레이트. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
3. 종양세포 접종
알림: 모든 절차에는 멸균 층류 캐비닛을 사용해야 합니다.
그림 3 : 종양이있는 CAM 접종. (A) 피펫을 이용한 스페로이드 흡인 및 (B) CAM 표면에 이식. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
4. 감광제의 적용
5. PDD 및 PDT
그림 4: 레이저 광을 사용한 CAM 처리. 이 사진은 설명을 위해 찍은 것입니다. PDD 또는 PDT의 경우 방이 어두워 야합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
6. 추가 평가를 위한 CAM 준비
그림 5: 프랙탈 분석을 위한 CAM 조직. PDT 후, CAM은 고정되고, 슬라이드에 장착되고, 프랙탈 분석을 위해 건조된다. 사진은 트랜스 일루미네이터를 사용하여 백색광에서 촬영되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
CAM 표면에서 종양의 국소화는 백색광에서 어렵습니다. PDD에 사용되는 광감작제(여기서, 하이퍼리신)는 종양에 의해 선택적으로 흡수될 것으로 예상되며, 종양을 시각화하는 것을 돕는다. 하이페리신의 첨가 및 형광광(예를 들어, 405 nm)의 사용은 종양(편평 세포 TE1) 위치를 매우 잘 나타내었다(도 6A). 조직 학적 분석은 중요한 종양 세포가 건강한 조직을 침범하는 것으로 나타...
성공적인 exovo 재배를 위해서는 위의 프로토콜을 따르는 것이 중요합니다. 또한, 계란이 충분히 조심스럽게 열리지 않거나 재배 중에 습도가 충분하지 않으면 노른자 자루가 껍질에 달라 붙어 종종 파열됩니다. 약 60 시간의 난자 배양시 ex ovo 재배의 시작은 이미 취급에서 생존 할 수있을만큼 충분히 크기 때문에 배아의 높은 생존율을 보장합니다. 후기 발달 단계에서 CAM은 더 얇아지?...
저자는 이해 상충이 없습니다.
이 작업은 VEGA 2/0042/21 및 APVV 20-0129의 지원을 받았습니다. V. Huntošová의 기여는 프로젝트 구현의 결과입니다 : 의학의 현대 학제 간 연구를위한 개방형 과학 커뮤니티 (약어 : OPENMED), ITMS2014 + : 313011V455 ERDF가 자금을 지원하는 운영 프로그램 통합 인프라가 지원합니다.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
6-Well Cell Culture Plate | Sarstedt | 83.392 | Transparent polystyrene, sterile |
CO2 Incubator ESCO CCL-0508 | ESCO, Singapore | CCL-050B-8 | CO2 cell culture incubator |
cryocut Leica CM 1800 | Reichert-Jung, USA | ||
digital camera Canon EOS 6D II | Canon, Japan | ||
diode laser 405 nm | Ocean Optics, USA | ||
DMSO | Sigma-Aldrich | 67-68-5 | dimethyl sulfoxid |
eosin | Sigma-Aldrich | 15086-94-9 | |
ethanol | Sigma-Aldrich | 64-17-5 | |
fine brush size 2 | Faber-Castell | 281802 | brush for CAM separation and manipulation |
glutaraldehyde | Sigma-Aldrich | 111-30-8 | |
hematoxylin | Sigma-Aldrich | 517-28-2 | |
hypericin | Sigma-Aldrich | 84082-80-4 | |
incubator Bios Midi | Bios Sedl![]() | Forced draught incubator for initial incubation | |
incubator Memmert IF160 | Memmert, Germany | Forced air circulation incubator for CAM incubation | |
Kaiser slimlite plano, LED light box | Kaiser, Germany | 2453 | Transilluminator |
LED light 405 nm | custom made circular LED light | ||
macro lens Canon MP- E 65 mm f/2.8 | Canon, Japan | ||
microscope Kapa 2000 | Kvant, Slovakia | optical microscope | |
microtome Auxilab 508 | Auxilab, Spain | manual rotary microtome | |
paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 30525-89-4 | |
Paraplast Plus | Sigma-Aldrich | P3683 | parafin medium for tissue embedding |
PBS | Sigma-Aldrich | P4417 | Phosphate saline buffer |
scissors Castroviejo | Orimed | OR66-108 | micro scissors for CAM separation |
software ImageJ 1.53 | public domain | image processing and analysis program | |
stock solution HDL | Sigma-Aldrich | 437641-10MG | high density lipoproteins |
stock solution LDL | Sigma-Aldrich | 437644-10MG | low density lipoproteins |
Tissue-Tek O.C.T. Compound | Sakura Finetek | 4583 | Optimal Cutting Temperature Compound 118 mL squeeze bottles |
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