1. H.의 성장 Capsulatum <ol><li> 20 분 자외선 조사에 의해 다음 10 % 표백제와 캐비닛을 청소하여 곰팡이와 함께 일을 biosafety 캐비닛을 준비합니다. H.이 금형 양식 BSLIII을 필요로하는 동안 효모 단계에 capsulatum은 Biosafety 레벨 (BSL) II 관행이 필요합니다. 다음 단계에서 효모 양식을 사용하십시오. </li><li> 다음 PBS 5 ML과 15 ML 원뿔 튜브를 준비합니다. H.의 식민지를 수확 BHI 혈액 한천 플레이트 [포도당 10g / L, 시스테인 0.1 g / L, 페니실린 - 스트렙토 마이신 1퍼센트 및 양 적혈구 50 ML / L (콜로라도 세럼 (주), 콜로라도, 미국)에서 capsulatum (변형 HC ATCC G217B) ] 37 ° C에서 재배 또는 -80 ° C에서 냉동 효모 주식에서 나누어지는을하고 PBS에 추가합니다. 적극적으로 소용돌이 세포를하고 실온에서 10 분 1,100 XG를위한 원심 분리기. 조심스럽게 펠렛을 방해하지 않고 표면에 뜨는를 제거하고 신선한 PBS의 10mL를 추가합니다. 이 절차를 세 번 반복합니다. 50 ML 원뿔 관에 PBS 및 tranfer의 5mL에있는 세포를 일시 중지합니다. </li><li> 집계 세포를 중단하려면, 10mL 주사기에게 biosafety 캐비닛 (안면 보호를 사용하여)에서 5 번 노래 26 G1 / 2 바늘 U를 통해 효모 세포 현탁액을 전달합니다. 작은 균일 크기의 효모를 분리, 상온에서 1 분 55 XG에있는 세포를 원심 후 상위 1 ML를 제거합니다. </li><li > 16g / L 포도당, 1g / L 글루탐산, 8.4mg / L 시스틴, 6g / L 글루탐산 후 37 세포의 성장과 함께 보충 햄 F12 매체의 100 ML (GIBCO)를 포함하는 멸균 erlenmeyer 플라스크에 세포 현탁액을 추가 ° 150rpm 잡고 인큐베이터에서 48 H를위한 C. </li></ol> 2. 단클론 항체의 하이 브리 도마 성장과 정제 <ol><li> 10% 태아 송아지 혈청, 10 % NCTC, 1 %가 아닌 필수 아미노산, 1 % 페니실린 - 스트렙토 마이신을 포함한 DMEM 매체로 선택한 hybridomas을 전송합니다. 37 5~7일위한 세포 배양 플라스크 (백톤 디컨슨)에 세포를 성장 ° C / 5 % CO 2. </li><li> 그런 다음 실온에서 10 분 1,100 XG에서 매체를 원심과 알약을 중단하지 않고 모든 표면에 뜨는를 수집합니다. </li><li> 다음 단백질 FPLC로 A / G 수지를 사용하여 셀 무료 뜨는 정화. </li><li> mAb 농도는 다음 표준으로 IgG의 isotype 제어 (그림 1B)를 사용하여 캡처 엘리사 (1)로 계산하실 수 있습니다. </li></ol> 3. Histoplasma Capsulatum의 Inoculum 준비 <ol><li> 햄 F - 12 중간에서 자란 48 H Histoplasma capsulatum (변형 HC ATCC G217B) 효모 위상 문화를 가져가라. </li><li> 10 분 1,100 XG에서 세포를 원심 분리기. 뜨는을 취소하고 신선한 PBS를 추가합니다. </li><li> 3.2 프로 시저에게 3 번 반복합니다. </li><li> 주사기를 사용하여 26G1 / 2 바늘을 통해 효모 세포 현탁액에게 5 번 패스. </li><li> 펠렛 잔여 세포 클러스터 1 분 55 XG의 현탁액을 원심 분리기. 새로운 튜브로 단일 세포 현탁액을 포함하고있는 뜨는을 전송합니다. </li><li> hematocytometer를 사용하여 단일 세포 현탁액을 열거합니다. </li><li> 1.25 X 10 7 효모 (서바이벌) 또는 5.0 × 10 6 (CFU, 크린 시토킨 및 조직학) &lt;50 μL (그림 2)의 suspention에 달성하기 위해 세포 농도를 조정합니다. </li></ol> 4. MAbs의 Intraperitoneal 관리 <ol><li> 꼬리와 목의 아저씨 (그림 3A)에서 마우스를 선택하십시오. 가능한 theears (; 그림 3B와 3C 마우스 그것을 취급하는 사람을 물려고 머리를 cannotturn 있도록 충분히 피부를 차지해야합니다)에 가까운로서 목의 아저씨로 마우스를 고정. </li><li> 부드럽게 손 (그림 3D)의 손바닥에 대해 누르면 꼬리 withthe 작은 손가락을 안정. </li><li> 면봉 바늘과 주입하기 전에 혈액을 찾아 대기음로 배치하기 전에 70 %의 에탄올로 분사 영역입니다. </li><li> 함께 thelower의 왼쪽이나 오른쪽 아래 복부 사분면 (intraperitoneal 구멍)에 500μg을 (PBS, isotype 제어 항체 또는 mAb 1 ML PBS에 희석, 테스트)를 포함하는 mAb 솔루션을 주입하기 위해 피부와 abdominalmuscles을 piercethe하는 26G1 / 2를 사용하여 격막 andother 내장 (그림 3E)을 피하기 위해 돌보는 위치 아래 머리에 동물. </li><li> needleto가 누출의 가능성을 줄일 수 철수하기 전에 잠시 만요. </li><li> 다음 단계로 진행하기 전에 2 시간 최소 기다립니다. </li></ol> 5. 마우스 마취과와 비강 감염 <ol><li> 100 MG / kg, 10 MG / kg, 각각의 마취제와 xylazine을 사용하여 마취를 준비합니다. intraperitoneal PBS의 행정, isotype 제어 항체 또는 동행하는 서면 프로토콜에서 설명한대로 실험 항체를 수행합니다. 마우스를 anesthetizing과 비강 감염하기 전에 mAb 주입 후 두 시간 기다려. 100 MG / kg, 10 MG / kg, 각각 (7)에서 사용하는 마취 마취제와 xylazine를 준비합니다.<html> </li><li> 2 시간 대기 기간 동안 같이 동행하는 서면 프로토콜에 설명되어있는 Histoplasma capsulum의 inoculum을 준비합니다. </li><li> 5.5 itens 5.1에 따라 진행합니다. 트위터와 함께 동물을 공략 발가락과 반사의 부재를 확인하고 마취가 작동 확인합니다. anaesthetization 후, 부드럽게 나일론이나 목화 문자열하기 위해 앞니로 마우스를 일시 중지합니다. 동물을 중지하기 위해 문자열을 묶어 2 열 스탠드를 사용하십시오. </li><li> 천천히 밀접하게 마우스의 호흡 속도를 모니터링하면서 micropipette를 사용하여 nare로 약 50 μl inoculum을 관리할 수 있습니다. 마우스 동물의 폐 (그림 3 층)에 효모의 증착을 촉진하기 위하여 비강 감염 후 2-5 분이 자리에서 휴식을 허용합니다. </li><li> 마우스가 감염된 후, 필요한 경우는 마취에서 회복까지 신중하게, 가열 램프를 활용, 모니터, 따뜻한 환경 (25 37 ° C 사이의 온도)에 마우스를 유지합니다. 때 마우스 깨우고, 음식과 물이 광고 libitum 접속 깨끗한 케이지로 돌아갑니다. 케이지는 우리 동물 시설에 반환하고 깨끗한 동물 방 (BLSI)에 보관됩니다. </li></ol> 6. 서바이벌 연구 <ol><li> tachypnea, 혼수, obtundation 및 체중 감량에 대한 임상 감염 모의 - 감염된 동물을 평가합니다. 동물 실험실 회원 및 동물 관리 인에 의해 매일에 의해 두 번 매일 확인하여야한다. </li><li> murine 히스토플라스마증로 삶의 끝에 닫을 때까지, 호흡 속도에 가벼운 증가 이외의 감염에 대한 명백한 신호는 일반적으로 없습니다. 보통 10~11일에서 일어나는 고급 질환으로, 마우스는 상당히 tachypneic되어 감소 활동을했습니다. 일반적으로 그들은 신속하게 죽어가는되어 만료됩니다. </li><li> 고민 동물 전용 실내의 CO 2와 적절한 euthanized해야 죽은 동물은 매일 열거해야합니다. </li></ol> 7. CFU 연구, 조직학 및 크린 시토킨 연구 <ol><li> 수집하는 각 기관에 대한 10mL PBS로 15 ML 원뿔 튜브를 준비합니다. </li><li> 로 이전에 표시된 sublethal inuculum (5.0 × 10 6)과 동물 7 감염 후 14 일 안락사 즉시 폐, 비장과 간장을 제거하십시오. </li><li> 평가할 수있는 기관의 조각을 제거하고 포르말린 하룻밤에 고정을 수행합니다. 섹션은 병리 평가를 위해 현미경으로 검사됩니다. </li><li> 5mL PBS로 50 ML 원뿔 튜브 준비는 균질하는 각 기관은 70 μm의 세포 strainers 얹은. 무균 5mL 주사기의 plungers를 사용하여 50 ML 튜브에 별도로 장기 각각의 나머지 부분을 물에 담가서 부드럽게. </li><li> 다음 순차적으로 BHI - 혈액 한천 플레이트 (2) 장기 homogenates (1:100, 1:1000 1:5000과) 및 각 희석의 접시 100μL를 희석. </li><li> 제조의 지침 (로체, 독일)에 따라 homogenates에 테아제 억제제의 위패를 추가합니다. </li><li> ° C 십사일 및 열거 CFUs에 최대 37 번호판을 품어. </li><li> 10 분 4000xg에서 장기 homogenates을 원심 분리기 및 장기 supernatants 제거 위시는 제조 업체에 따라 표준 방법으로 수행 시토킨 assays에 사용에 사용됩니다. </li></ol> 8. H. 반대 단클론 항체 보호 Capsulatum는 항체 특이성 및 Isotype에 따라 달라집니다 <ol><li> MAb isotype은 H.에 대한 보호에 매우 중요합니다 capsulatum은 Hsp60에 IgG1 또는 IgG2a mAbs 취급 생쥐로 Hsp60에 IgG2b mAb를받는 생쥐 또는 어느 컨트롤 isotype mAb 또는 PBS (그림 4) 제어에 비해 상당히 장기간 생존 있습니다. </li><li> 또한, 보호 mAbs를받은 생쥐에 일 7 폐동맥과 지라 CFU의 수를 크게 감소가되었으며 일 14 (그림 5)에서 폐 효모 숫자 2와 2.5 로그 단위의 감소. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/2532/2532fig1.jpg" alt="그림 1" /> 그림 1 : H.의 성장 capsulatum 및 hybridomas. H.에서 얻은 하나의 식민지에서 (A) 액체 햄 F - 12 문화 준비 capsulatum는 BHI - 혈액 한천 플레이트에서 성장. 세포 배양 및 단백질 flasks A / G 수지를 사용 친화 cromatography에 의해 mAb 정화의 (B) 하이 브리 도마 성장. <img src="/files/ftp_upload/2532/2532fig2.jpg" alt="그림 2" /> 그림 2 : H. 비강 감염 capsulatum의 inoculum 준비. H. 후 얻은 세포 현탁액 주사기와 원심 분리에 의해 capsulatum 합산 장애는 hemocytometer에서 계수에 의해 열거됩니다. 세포 농도가 1.25 조정됩니다 × 10 7 (생존 실험) 또는 5 &lt;50 μL에서 X 10 6 (CFUs, 크린 시토킨 및 조직학). upload/2532/2532fig3.jpg &quot;고도 =&quot;그림 3 &quot;/&gt; 그림 3 : mAb 관리하는 동안 마우스 처리. (A) 마우스는 꼬리가 데리러와 (B 및 C) theears에 가까운로서 목의 아저씨를 개최하여 움직일 수 있습니다. (D) 꼬리는 작은 손가락과 손바닥 사이에 개최됩니다. (E) mAb 솔루션 26G1 / 2 바늘을 사용하여 주입합니다. (F) H. capsulatum inoculum는 부드럽게 nare에 세포 현탁액을 pipetting하여 intranasally 관리합니다. <img src="/files/ftp_upload/2532/2532fig4.jpg" alt="그림 4" /> 그림 4 : Hsp60을 MAbs가 히스토플라스마증의 pathogenesis을 변경할 수 있습니다. 500 IgG1의 μg, 또는 이전에 감염이 크게 연장 생존 (컨트롤에 비해 P는 &lt;0.05)에 IgG2a mAbs 2 H 있지만, IgG2b mAb와 IP 주사. <img src="/files/ftp_upload/2532/2532fig5.jpg" alt="그림 5" /> 그림 5 : 마우스 5x10 6 HC의 효모를 선택 Hsp60에 mAbs 또는없는 mAb 동물을 치료 mAbs IgG1과 IgG2a에 대한 곰팡이 부담의 감소를 보여주 취급 IP와 sublethal 비강 도전 후 CFU 7에서 폐에 결정 14 일. 블랙 바 일 7시 CFUs과 흰색 막대를 나타냅니다 십사일 후 감염 (* P 칠일에 &lt;0.001, 14 일 게시물 감염에 ** P &lt;0.001).

<ol>
	<li>Casadevall, A., Mukherjee, J., Scharff, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monoclonal+antibody+based+ELISAs+for+cryptococcal+polysaccharide.">Monoclonal antibody based ELISAs for cryptococcal polysaccharide.</a> J. Immunol. Methods. 154, 27-35 (1992).</li><li>Guimaraes, A. J., Frases, S., Gomez, F. J., Zancope-Oliveira, R. M., Nosanchuk, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monoclonal+antibodies+to+heat+shock+protein+60+alter+the+pathogenesis+of+Histoplasma+capsulatum.+Infect+Immun+77.">Monoclonal antibodies to heat shock protein 60 alter the pathogenesis of Histoplasma capsulatum. Infect Immun 77.</a> , 1357-1367 (2009).</li><li>Guimaraes, A. J., Hamilton, A. J., de M Guedes, H. L., Nosanchuk, J. D., Zancope-Oliveira, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biological+function+and+molecular+mapping+of+M+antigen+in+yeast+phase+of+Histoplasma+capsulatum.">Biological function and molecular mapping of M antigen in yeast phase of Histoplasma capsulatum.</a> PLoS One. 3, e3449-e3449 (2008).</li><li>Nosanchuk, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protective+antibodies+and+endemic+dimorphic+fungi.">Protective antibodies and endemic dimorphic fungi.</a> Curr Mol Med. 5, 435-442 (2005).</li><li>Nosanchuk, J. D., Steenbergen, J. N., Shi, L., Jr, D. e. e. p. e., &amp;amp, G. S., Casadevall, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antibodies+to+a+cell+surface+histone-like+protein+protect+against+Histoplasma+capsulatum.">Antibodies to a cell surface histone-like protein protect against Histoplasma capsulatum.</a> J Clin Invest. 112, 1164-1175 (2003).</li><li>Nosanchuk, J. D., Steenbergen, J. N., Shi, L., Deepe, G. S., , ., Casadevall, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antibodies+to+a+cell+surface+histone-like+protein+protect+against+Histoplasma+capsulatum.">Antibodies to a cell surface histone-like protein protect against Histoplasma capsulatum.</a> J. Clin. Invest. 112, 1164-1175 (2003).</li><li>Smith, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+of+laboratory+animals+to+some+injectable+anaesthetics.">Responses of laboratory animals to some injectable anaesthetics.</a> Lab Anim. 27, 30-39 (1993).</li></ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

여기에 제시 프로토콜 mAb는 H.하는 걸 보여줍니다 capsulatum는 실험 murine 히스토플라스마증의 과정을 수정할 수 있습니다. 병원균의 세포 표면 항원에 MAbs는 호스트와 병원체 사이 상호 작용하는 동안 발생하는 복잡한 역학을 수정할 수 있습니다. 이 연구 intraperitoneally을 주입했을 때 mAbs는 치명적인 히스토플라스마증의 murine 모델의 보호를 중재 것을 수립하고는 H2B, M의 항원 (카탈 라 ...

<table border="1"><tbody><tr><th> 재료의 이름 </th><th> 회사 </th></tr><tr><td> 생물 안전 캐비닛 (BSL2) </td><td></td></tr><tr><td> 15 ML 원뿔 튜브 </td><td> 팔콘, BD </td></tr><tr><td> 햄 F - 12 중간 </td><td> Gibco </td></tr><tr><td> 37 ° C 흔드는 </td><td></td></tr><tr><td> 와동 </td><td></td></tr><tr><td> 50 ML 원뿔 튜브 </td><td> 팔콘, BD </td></tr><tr><td> 26G1 / 2 바늘 </td><td> BD </td></tr><tr><td> 10 ML 주사기 </td><td> BD </td></tr><tr><td> 250 ML의 flasks </td><td></td></tr><tr><td> FPLC (고속 단백질 액체 크로마 토그래피) 시스템 </td><td> GE Helthcare </td></tr><tr><td> 엘리사 리더 </td><td> BioTek </td></tr><tr><td> 마취 (마취제와 Xylazine) </td><td></td></tr><tr><td> 열 스탠드 </td><td></td></tr><tr><td> 나일론 문자열 </td><td></td></tr><tr><td> 가열 램프 </td><td></td></tr><tr><td> 70μm 세포 strainers </td><td> 팔콘, BD </td></tr><tr><td> BHI 한천 플레이트 </td><td> Gibco </td></tr></tbody></table>

passive administration of monoclonal antibodies against h. capsulatum and others fungal pathogens

이 방법론의 사용 목적은 항체 또는 균류 Histoplasma capsulatum 2) 치료 대상으로 독성 요소의 역할을 검토로 인한 히스토플라스마증을 예방하거나 치료를위한 백신과 개인을 보호하기 위해 우리의 역량을 발전) 1입니다. mAbs를 생성하려면, 마우스가 예방 접종되고 면역 반응은 우리의 연구실에서 개발한 고체 위상 엘리사 시스템을 사용 평가하고 있으며, 최고의 응답의 마우스는 하이 브리 도마 세포와 융합을위한 splenocytes의 격리를 위해 선택됩니다. C57BL / 6 생쥐는 광범위 H. 연구하는 데 사용되었습니다 capsulatum pathogenesis하고 필요한 데이터를 얻기위한 최상의 모델을 제공합니다. 감염에 mAbs의 역할을 평가하기 위해서는, 마우스는 H.에 mAb 중과 관리 intraperitoneally 아르 capsulatum 또는 isotype도 정맥 주사 (IV), intraperitoneal (IP) 또는 비강 (인) 노선에 의해 제어 mAb와 일치하고 감염. 과학 문학, 마우스에 곰팡이 감염 mAbs의 효능은 이전 시간 지점에서 콜로니 formin 단위 (CFU) 평가와 함께, 끝점으로 사망률에 의존합니다. 그들은 최고의 인간의 질병을 대표로 생존 (사망 시간) 연구가 필요합니다. 따라서, 우리의 개입의 효능은 충분히 생존 곡선없이 설정할 수 없습니다 것입니다. 이것은 백신이나 독성에 대한 돌연변이 검사의 효능을 수립에도 적용됩니다. 히스토플라스마증와 생쥐는 종종 몇 시간 동안 죽은 활기찬되는 이동합니다. 이러한 mAb의 행정으로 개입의 용량은 처음에는 질병으로부터 동물을 보호 수 있지만, 질병은 짧은 CFU 실험의 재발을 실현 않을 수있는. 생존과 곰팡이 부담 assays 이외에, 우리는 감염 (조직학, 세포 채용, 시토킨 응답)로 염증 반응을 검사합니다. 생존 / 사망 실험 시간은 생쥐는 병적 상태의 흔적에 대해 최소한 회 감염 감시하고 있습니다. 곰팡이 부담, 조직 병리학, 그리고 시토킨 반응을 평가하기 위해, 생쥐는 감염 후 여러 시간에 euthanized 있습니다. 동물 실험은 의학의 알버트 아인슈타인 대학 동물 연구소의 지침에 따라 수행됩니다.

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Passive Administration of Monoclonal Antibodies Against H. capsulatum and Others Fungal Pathogens

C57BL / 6 마​​우스는 HC의 pathogenesis을 연구하고 최상의 모델을 제공하는 데 사용되었습니다. 우리는이 곰팡이에 대한 체액성 면역의 가능성 혜택을 탐구하고 [히스톤 H2B와 열 충격 단백질 60kDa로] 여러 mAbs를 생성 우리가 intraperitoneal 행정부 이후에 그들의 보호 효능에 대한 테스트 것을.

반대 단클론 항체의 수동적 관리 H. capsulatum 및 기타 곰팡이 병원균을

The purpose of the use of this methodology is 1) to advance our capacity to protect individuals with antibody or vaccine for preventing or treating ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Passive Administration of Monoclonal Antibodies Against H. capsulatum and Others Fungal Pathogens

11.9K 조회수.  Albert Einstein College of Medicine. C57BL / 6 마​​우스는 HC의 pathogenesis을 연구하고 최상의 모델을 제공하는 데 사용되었습니다. 우리는이 곰팡이에 대한 체액성 면역의 가능성 혜택을 탐구하고 [히스톤 H2B와 열 충격 단백질 60kDa로] 여러 mAbs를 생성 우리가 intraperitoneal 행정부 이후에 그들의 보호 효능에 대한 테스트 것을.

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Quantitative Analyses of all Influenza Type A Viral Hemagglutinins and Neuraminidases using Universal Antibodies in Simple Slot Blot Assays

Hemagglutinin (HA) and neuraminidase (NA) are two surface proteins of influenza viruses which are known to play important roles in the viral life cycle and the induction of protective immune responses1,2. As the main target for neutralizing antibodies, HA is currently used as the influenza vaccine potency marker and is measured by single radial immunodiffusion (SRID)3. However, the dependence of SRID on the availability of the corresponding subtype-specific antisera causes a minimum of 2-3 months delay for the release of every new vaccine. Moreover, despite evidence that NA also induces protective immunity4, the amount of NA in influenza vaccines is not yet standardized due to a lack of appropriate reagents or analytical method5. Thus, simple alternative methods capable of quantifying HA and NA antigens are desirable for rapid release and better quality control of influenza vaccines.
Universally conserved regions in all available influenza A HA and NA sequences were identified by bioinformatics analyses6-7. One sequence (designated as Uni-1) was identified in the only universally conserved epitope of HA, the fusion peptide6, while two conserved sequences were identified in neuraminidases, one close to the enzymatic active site (designated as HCA-2) and the other close to the N-terminus (designated as HCA-3)7. Peptides with these amino acid sequences were synthesized and used to immunize rabbits for the production of antibodies. The antibody against the Uni-1 epitope of HA was able to bind to 13 subtypes of influenza A HA (H1-H13) while the antibodies against the HCA-2 and HCA-3 regions of NA were capable of binding all 9 NA subtypes. All antibodies showed remarkable specificity against the viral sequences as evidenced by the observation that no cross-reactivity to allantoic proteins was detected. These universal antibodies were then used to develop slot blot assays to quantify HA and NA in influenza A vaccines without the need for specific antisera7,8. Vaccine samples were applied onto a PVDF membrane using a slot blot apparatus along with reference standards diluted to various concentrations. For the detection of HA, samples and standard were first diluted in Tris-buffered saline (TBS) containing 4M urea while for the measurement of NA they were diluted in TBS containing 0.01% Zwittergent as these conditions significantly improved the detection sensitivity. Following the detection of the HA and NA antigens by immunoblotting with their respective universal antibodies, signal intensities were quantified by densitometry. Amounts of HA and NA in the vaccines were then calculated using a standard curve established with the signal intensities of the various concentrations of the references used. 
Given that these antibodies bind to universal epitopes in HA or NA, interested investigators could use them as research tools in immunoassays other than the slot blot only.

A simple slot blot method was developed for the quantification of influenza viral hemagglutinin and neuraminidase using universal antibodies targeting their most conserved sequences identified through bioinformatics analyses. This innovative approach may provide a useful alternative to quantitative determination of all viral hemagglutinin and neuraminidase.

모든 독감의 양적 분석 간단한 슬롯 얼룩 Assays에서 유니버설 항체를 사용하는 바이러스성 Hemagglutinins 및 Neuraminidases를 입력하십시오

Hemagglutinin (HA) and neuraminidase (NA) are two surface proteins of influenza viruses which are known to play important roles in the viral life cycle ...

연구

면역학 및 감염병학

Infection of Zebrafish Embryos with Intracellular Bacterial Pathogens

Zebrafish (Danio rerio) embryos are increasingly used as a model for studying the function of the vertebrate innate immune system in host-pathogen interactions 1. The major cell types of the innate immune system, macrophages and neutrophils, develop during the first days of embryogenesis prior to the maturation of lymphocytes that are required for adaptive immune responses. The ease of obtaining large numbers of embryos, their accessibility due to external development, the optical transparency of embryonic and larval stages, a wide range of genetic tools, extensive mutant resources and collections of transgenic reporter lines, all add to the versatility of the zebrafish model. Salmonella enterica serovar Typhimurium (S. typhimurium) and Mycobacterium marinum can reside intracellularly in macrophages and are frequently used to study host-pathogen interactions in zebrafish embryos. The infection processes of these two bacterial pathogens are interesting to compare because S. typhimurium infection is acute and lethal within one day, whereas M. marinum infection is chronic and can be imaged up to the larval stage 2, 3. The site of micro-injection of bacteria into the embryo (Figure 1) determines whether the infection will rapidly become systemic or will initially remain localized. A rapid systemic infection can be established by micro-injecting bacteria directly into the blood circulation via the caudal vein at the posterior blood island or via the Duct of Cuvier, a wide circulation channel on the yolk sac connecting the heart to the trunk vasculature. At 1 dpf, when embryos at this stage have phagocytically active macrophages but neutrophils have not yet matured, injecting into the blood island is preferred. For injections at 2-3 dpf, when embryos also have developed functional (myeloperoxidase-producing) neutrophils, the Duct of Cuvier is preferred as the injection site. To study directed migration of myeloid cells towards local infections, bacteria can be injected into the tail muscle, otic vesicle, or hindbrain ventricle 4-6. In addition, the notochord, a structure that appears to be normally inaccessible to myeloid cells, is highly susceptible to local infection 7. A useful alternative for high-throughput applications is the injection of bacteria into the yolk of embryos within the first hours after fertilization 8. Combining fluorescent bacteria and transgenic zebrafish lines with fluorescent macrophages or neutrophils creates ideal circumstances for multi-color imaging of host-pathogen interactions. This video article will describe detailed protocols for intravenous and local infection of zebrafish embryos with S. typhimurium or M. marinum bacteria and for subsequent fluorescence imaging of the interaction with cells of the innate immune system.

Transparent zebrafish embryos have proved useful model hosts to visualize and functionally study interactions between innate immune cells and intracellular bacterial pathogens, such as Salmonella typhimurium and Mycobacterium marinum. Micro-injection of bacteria and multi-color fluorescence imaging are essential techniques involved in the application of zebrafish embryo infection models.

세포내 세균성 병원균과 Zebrafish 태아의 감염

Zebrafish (Danio rerio) embryos are increasingly used as a model for studying the function of the vertebrate innate immune system in host-pathogen ...

Assessing Anti-fungal Activity of Isolated Alveolar Macrophages by Confocal Microscopy

The lung is an interface where host cells are routinely exposed to microbes and microbial products. Alveolar macrophages are the first-line phagocytic cells that encounter inhaled fungi and other microbes. Macrophages and other immune cells recognize Aspergillus motifs by pathogen recognition receptors and initiate downstream inflammatory responses. The phagocyte NADPH oxidase generates reactive oxygen intermediates (ROIs) and is critical for host defense. Although NADPH oxidase is critical for neutrophil-mediated host defense1-3, the importance of NADPH oxidase in macrophages is not well defined. The goal of this study was to delineate the specific role of NADPH oxidase in macrophages in mediating host defense against A. fumigatus. We found that NADPH oxidase in alveolar macrophages controls the growth of phagocytosed A. fumigatus spores4. Here, we describe a method for assessing the ability of mouse alveolar macrophages (AMs) to control the growth of phagocytosed Aspergillus spores (conidia). Alveolar macrophages are stained in vivo and ten days later isolated from mice by bronchoalveolar lavage (BAL). Macrophages are plated onto glass coverslips, then seeded with green fluorescent protein (GFP)-expressing A. fumigatus spores. At specified times, cells are fixed and the number of intact macrophages with phagocytosed spores is assessed by confocal microscopy.

A method to evaluate the ability of isolated mouse alveolar macrophages to control the growth of phagocytosed Aspergillus spores by confocal microscopy.

공 초점 현미경으로 고립 된 폐포 대 식세포의 반대로 곰팡이 활동을 평가

The lung is an interface where host cells are routinely exposed to microbes and microbial products. Alveolar macrophages are the first-line phagocytic ...

Biolistic Transformation of a Fluorescent Tagged Gene into the Opportunistic Fungal Pathogen Cryptococcus neoformans

The basidiomycete Cryptococcus neoformans, an invasive opportunistic pathogen of the central nervous system, is the most frequent cause of fungal meningitis worldwide resulting in more than 625,000 deaths per year worldwide.&#160;Although electroporation has been developed for the transformation of plasmids in Cryptococcus, only&#160;biolistic&#160;delivery provides&#160;an effective means to transform&#160;linear&#160;DNA&#160;that can be integrated into the genome by homologous recombination.&#160;
Acetate has been shown to be a major fermentation product during cryptococcal infection, but the significance of this is not yet known.&#160;A bacterial pathway composed of the enzymes xylulose-5-phosphate/fructose-6-phosphate phosphoketolase (Xfp) and acetate kinase (Ack) is one of three potential pathways for acetate production in C. neoformans. Here, we demonstrate the biolistic transformation of a construct, which has the gene encoding Ack fused to the fluorescent tag mCherry, into&#160;C. neoformans. We then confirm integration of the ACK-mCherry fusion into the&#160;ACK&#160;locus.

Biolistic Transformation of a Fluorescent Tagged Gene into the Opportunistic Fungal Pathogen Cryptococcus neoformans

Biolistic transformation is a method used to generate stable integration of DNA into the genome of the opportunistic pathogen Cryptococcus neoformans through homologous recombination. We will demonstrate biolistic transformation of a construct, which has the gene encoding acetate kinase fused to the fluorescent tag mCherry into&#160;C. neoformans.

편의적 곰팡이 병원균에 형광 태그 유전자의과 유전자 변형<em&gt; 크립토 콕 쿠스 네오 포르</em

The basidiomycete Cryptococcus neoformans, an invasive opportunistic pathogen of the central nervous system, is the most frequent cause of fungal ...

Generation of Recombinant Human IgG Monoclonal Antibodies from Immortalized Sorted B Cells

Finding new methods for generating human monoclonal antibodies is an active research field that is important for both basic and applied sciences, including the development of immunotherapeutics. However, the techniques to identify and produce such antibodies tend to be arduous and sometimes the heavy and light chain pair of the antibodies are dissociated. Here, we describe a relatively simple, straightforward protocol to produce human recombinant monoclonal antibodies from human peripheral blood mononuclear cells using immortalization with Epstein-Barr Virus (EBV) and Toll-like receptor 9 activation. With an adequate staining, B cells producing antibodies can be isolated for subsequent immortalization and clonal expansion. The antibody transcripts produced by the immortalized B cell clones can be amplified by PCR, sequenced as corresponding heavy and light chain pairs and cloned into immunoglobulin expression vectors. The antibodies obtained with this technique can be powerful tools to study relevant human immune responses, including autoimmunity, and create the basis for new therapeutics.

Synthesis of human monoclonal antibodies is the first step in studies aimed at unraveling the pathophysiological mechanisms of auto-antibody-mediated immune responses. We have developed a protocol to generate recombinant human immunoglobulin G (IgG) monoclonal antibodies from blood sorted B cells, including B-cell isolation, antibody cloning and in vitro synthesis.

정렬 된 불멸화 된 B 세포로부터 재조합 인간 IgG 단일 클론 항체의 생성

Finding new methods for generating human monoclonal antibodies is an active research field that is important for both basic and applied sciences, ...

Generation of Murine Monoclonal Antibodies by Hybridoma Technology

Monoclonal antibodies are universal binding molecules and are widely used in biomedicine and research. Nevertheless, the generation of these binding molecules is time-consuming and laborious due to the complicated handling and lack of alternatives. The aim of this protocol is to provide one standard method for the generation of monoclonal antibodies using hybridoma technology. This technology combines two steps. Step 1 is an appropriate immunization of the animal and step 2 is the fusion of B lymphocytes with immortal myeloma cells in order to generate hybrids possessing both parental functions, such as the production of antibody molecules and immortality. The generated hybridoma cells were then recloned and diluted to obtain stable monoclonal cell cultures secreting the desired monoclonal antibody in the culture supernatant. The supernatants were tested in enzyme-linked immunosorbent assays (ELISA) for antigen specificity. After the selection of appropriate cell clones, the cells were transferred to mass cultivation in order to produce the desired antibody molecule in large amounts. The purification of the antibodies is routinely performed by affinity chromatography. After purification, the antibody molecule can be characterized and validated for the final test application. The whole process takes 8 to 12 months of development, and there is a high risk that the antibody will not work in the desired test system.

An optimized protocol is presented for the generation of monoclonal antibodies based on the hybridoma technology. Mice were immunized with an immunoconjugate. Spleen cells were fused by PEG and an electric impulse with immortal myeloma cells. Antibody-producing hybridoma cells were selected by HAT and antigen-specific ELISA screening.

하이 브리 도마 기술에 의해 쥐 단일 클론 항체의 생성

Monoclonal antibodies are universal binding molecules and are widely used in biomedicine and research. Nevertheless, the generation of these binding ...

Generation of Escape Variants of Neutralizing Influenza Virus Monoclonal Antibodies

Influenza viruses exhibit a remarkable ability to adapt and evade the host immune response. One way is through antigenic changes that occur on the surface glycoproteins of the virus. The generation of escape variants is a powerful method in elucidating how viruses escape immune detection and in identifying critical residues required for antibody binding. Here, we describe a protocol on how to generate influenza A virus escape variants by utilizing human or murine monoclonal antibodies (mAbs) directed against the viral hemagglutinin (HA). With the use of our technique, we previously characterized critical residues required for the binding of antibodies targeting either the head or stalk of the novel avian H7N9 HA. The protocol can be easily adapted for other virus systems. Analyses of escape variants are important for modeling antigenic drift, determining single nucleotide polymorphisms (SNPs) conferring resistance and virus fitness, and in the designing of vaccines and/or therapeutics.

We describe a method by which we identify critical residues required for the binding of human or murine monoclonal antibodies that target the viral hemagglutinin of influenza A viruses. The protocol can be adapted to other virus surface glycoproteins and their corresponding neutralizing antibodies.

인플루엔자 바이러스 단일 클론 항 체를 중화의 탈출 변종의 생성

Influenza viruses exhibit a remarkable ability to adapt and evade the host immune response. One way is through antigenic changes that occur on the surface ...

Generation of Discriminative Human Monoclonal Antibodies from Rare Antigen-specific B Cells Circulating in Blood

Monoclonal antibodies (mAbs) are powerful tools useful for both fundamental research and in biomedicine. Their high specificity is indispensable when the antibody needs to distinguish between highly related structures (e.g., a normal protein and a mutated version thereof). The current way of generating such discriminative mAbs involves extensive screening of multiple Ab-producing B cells, which is both costly and time consuming. We propose here a rapid and cost-effective method for the generation of discriminative, fully human mAbs starting from human blood circulating B lymphocytes. The originality of this strategy is due to the selection of specific antigen binding B cells combined with the counter-selection of all other cells, using readily available Peripheral Blood Mononuclear Cells (PBMC). Once specific B cells are isolated, cDNA (complementary deoxyribonucleic acid) sequences coding for the corresponding mAb are obtained using single cell Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction (RT-PCR) technology and subsequently expressed in human cells. Within as little as 1 month, it is possible to produce milligrams of highly discriminative human mAbs directed against virtually any desired antigen naturally detected by the B cell repertoire.

We describe a method for the production of human antibodies specific for an antigen of interest, starting from rare B cells circulating in human blood. Generation of these natural antibodies is efficient and rapid, and the antibodies obtained can discriminate between highly related antigens.

희귀 한 항 원 특정 B 세포 혈액 순환에서 구별 인간 단일 클론 항 체의 생성

Monoclonal antibodies (mAbs) are powerful tools useful for both fundamental research and in biomedicine. Their high specificity is indispensable when the ...

Generation of Monoclonal Antibodies Against Natural Products

The analysis of the bioactive components present in foods and natural products has become a popular area of study in many fields, including traditional Chinese medicine and food safety/toxicology. Many of the classical analysis techniques require expensive equipment and/or expertise. Notably, enzyme-linked immunosorbent assays (ELISAs) have become an emerging method for the analysis of foods and natural products. This method is based on antibody-mediated detection of the target components. However, as many of the bioactive components in natural products are small (&lt;1,000 Da) and do not induce an immune response, creating monoclonal antibodies (mAbs) against them is often difficult. In this protocol, we provide a detailed explanation of the steps required to generate mAbs against target molecules as well as those needed to create the associated indirect competitive (ic)ELISA for the rapid analysis of the compound in multiple samples. The procedure describes the synthesis of the artificial antigen (i.e., the hapten-carrier conjugate), immunization, cell fusion, monoclonal hybridoma preparation, characterization of the mAb, and the ELISA-based application of the mAb. The hapten-carrier conjugate was synthesized by the sodium periodate method and evaluated by MALDI-TOF-MS. After immunization, splenocytes were isolated from the immunized mouse with the highest antibody titer and fused with the hypoxanthine-aminopterin-thymidine (HAT)-sensitive mouse myeloma cell line Sp2/0 -Ag14 using a polyethylene glycol (PEG)-based method. The hybridomas secreting mAbs reactive to the target antigen were screened by icELISA for specificity and cross-reactivity. Furthermore, the limiting dilution method was applied to prepare monoclonal hybridomas. The final mAbs were further characterized by icELISA and then utilized in an ELISA-based application for the rapid and convenient detection of the example hapten (naringin (NAR)) in natural products.

This article provides a detailed protocol for the preparation and evaluation of monoclonal antibodies against natural products for use in various immunoassays. This procedure includes immunization, cell fusion, indirect competitive ELISA for positive clone screening, and monoclonal hybridoma preparation. The specifications for antibody characterization using MALDI-TOF-MS and ELISA analyses are also provided.

천연 제품에 대 한 단일 클론 항 체의 생성

The analysis of the bioactive components present in foods and natural products has become a popular area of study in many fields, including traditional ...

Opsonophagocytic Killing Assay to Assess Immunological Responses Against Bacterial Pathogens

A key aspect of the immune response to bacterial colonization of the host is phagocytosis. An opsonophagocytic killing assay (OPKA) is an experimental procedure in which phagocytic cells are co-cultured with bacterial units. The immune cells will phagocytose and kill the bacterial cultures in a complement-dependent manner. The efficiency of the immune-mediated cell killing is dependent on a number of factors and can be used to determine how different bacterial cultures compare with regard to resistance to cell death. In this way, the efficacy of potential immune-based therapeutics can be assessed against specific bacterial strains and/or serotypes. In this protocol, we describe a simplified OPKA that utilizes basic culture conditions and cell counting to determine bacterial cell viability after co-culture with treatment conditions and HL-60 immune cells. This method has been successfully utilized with a number of different pneumococcal serotypes, capsular and acapsular strains, and other bacterial species. The advantages of this OPKA protocol are its simplicity, versatility (as this assay is not limited to antibody treatments as opsonins), and minimization of time and reagents to assess basic experimental groups.

This opsonophagocytic killing assay is used to compare the ability of phagocytic immune cells to respond to and kill bacteria based on different treatments and/or conditions. Classically, this assay serves as the gold&#160;standard for assessing effector functions of antibodies raised against a bacterium as opsonin.

Opsonophagocytic 살해 분석 결과 세균성 병원 체에 대 한 면역학 응답을 평가 하

A key aspect of the immune response to bacterial colonization of the host is phagocytosis. An opsonophagocytic killing assay (OPKA) is an experimental ...