The authors are solely responsible for the design and conduct of the presented study. Dr. Marbacher was supported by a grant from the Swiss National Science Foundation (PBSKP3-123454). The authors declare no conflict of interests. 
Author contributions to the study and manuscript preparation include the following. Conception and design: SM, JM, JF. Acquisition of data: SM, EA, JF. Analysis and interpretation of data: SM, JF, JM. Drafting the article: SM, JF, JM. Critically revising the article: JH, MN. Statistical analysis: SM, JF. Study supervision: JF, JH, MN.

참고 : 남성의 Wistar 쥐 (평균 체중 : 356 ± 44g, 10~14주 이전) 22 ~ 24 ° C와 12 시간 조명 / 펠렛 다이어트에 무료로 액세스, 일반 수돗물 어두운 사이클 동물 실에 보관 하였다 또한 제도적 지침을 준수 인간적인 치료를 받았다. 실험은 검토하고 핀란드 헬싱키 대학의 동물 복지위원회에 의해 승인되었다. 참고 : medetomidine 하이드로 클로라이드 (0.5 ㎎ / ㎏)와 케타민 염산염의 복강 내 주사 (50 ㎎ / ㎏)의 체중 적응 피하 주사로 쥐를 마취 다음 데모에서는 우리의 수술 방법은 다음과 같습니다. 발가락 - 핀치 반사의 부족에 대한 테스트는 쥐가 완전히 마취되어 있는지 확인합니다. 예를 클로르헥시딘에 대한, 중 알코올이나 물, 눈 연고를 적용 수술 부위를 클립하고, 적절한 소독제로 피부를 청소하십시오. 보호 복, 헤드 커버 및 얼굴에 넣어 손을 씻으십시오마스크 및 무균 수술 장갑. 무균 수술 환경을 유지하는 수술 보조 지원을하고 (표 1에 표시) 수술의 특성을 문서화 할 수 있습니다. 유해 자극 (발가락 핀치 테스트)에 호흡, 심장 박동, 반응에 따라 수술 중 마취 15 분마다의 깊이를 모니터링합니다. 부 프레 노르 핀 (0.03 ㎎ / ㎏)의 피하 주사는 수술 후 진통을위한 것으로 매 12 시간 필요한 경우 반복 하였다. 1 하드웨어, 소모품, 및 위치 <ol><li> 조용하고 작은 동물 수술 방을 유지 무균, 23 + 3 ° C의 실내 온도를 유지한다. 다음과 같은 최소한의 장비가 필요한 실험 동맥류 수술을 수행하려면 : <ol><li> 이상적으로 보조 범위와 디지털 현미경 카메라가 장착 된 테이블 위에 수술 현미경을 사용합니다. 실험실 벤치를 보호하기 위해 비 다공성 재사용 운영 표면과 청소 가능 악기 표면을 사용합니다. </li><li&gt; 같은 피부 소독제, 생리 식염수, 크고 작은 거즈 면봉과 9-0 마이크로 봉합, 5-0 비 흡수성, 3-0 흡수성 봉합사를 포함하여 봉합사와 같은 소모품을 준비합니다. </li><li> 외과 용 가위, 조직 겸자, 연부 조직 확장기 또는 자체 유지 견인기, 두 개의 모기 외과 클램프 : 다음과 같은 표준 수술 도구를 사용합니다. </li><li> 곡선 미세 바늘 홀더, 곡선 하나와 두 개의 직선 microforceps하고, 직선 또는 곡선 microscissor ​​: 포함 기본 미세 악기 세트를 사용합니다. </li><li> 수술 중 끈적하고 깨끗한 장비를 유지하기 위해 멸균 식염수로 가득 신장 접시에 미세 악기를 보관하십시오. 신장 요리는 고무 매트 또는 마이크로 악기의 선단의 손상을 방지하기 위해 수술 장갑으로 패딩된다. 모든 공급 멸균 및 절차는 실험 동물에서 생존 수술에 대한 현재의 권장 사항에 따라 무균 기술로 수행되었는지 확인 <sup&gt; 8-10. </li><li> 또한, 혈관 클립 어플리케이터 세 외상 임시 혈관 클램프를 사용한다. 그것은 사용 클램프 래트 대동맥 매우 얇은 벽으로 부상을 방지 낮은 닫는 힘이 중요하다. 또한 반 밀리미터 스케일 바, 작은 색깔의 고무 패드, 짧은 무딘 바늘 통치자를 준비합니다. </li><li> , 앙와위에서 쥐를 배치로 전면을 고정화하고 피부에 스트레칭이나 압축을 적용하지 않고 수술 테이프로 발을 뒷다​​리, 그리고 뒷면의 목재 영역 아래에 배치하여 두꺼운 마커 또는 소작 펜으로 자신의 등을 구부리십시오. 그것은 미세 문합을 용이 infrarenal 대동맥 복막 노광 및 접근성을 향상시키기 위해 가능한 한 많은 요추 전만을 얻는 것이 중요하다. 이 위치는 복부 대동맥 동맥류 작성을 권장하지만, 흉부 이식 수확에 필요한되지 않습니다. </li></ol></li></ol> 2 이식 수확 <ol><li> U파인더 전신 마취, 흉강을 열고 (이식 허혈 시작 시간). 쥐가 다음 단계를 진행하기 전에 응답하지 않는 것을 확인하기 위해 유해 발가락 핀치를 적용합니다. midventral 복벽을 통해 자르고, 단지 간 위에 진동판을 식별하고, 흉곽에 대한 액세스를 허용하도록 진동판의 하부에서 결합 조직을 잘라. 리브의 실수로 큰 위, 아래로 무딘면, 그냥 일cm 왼쪽과 흉곽의 정중선의 오른쪽 흉강을 엽니 다. 폐는 심장의 오른쪽에 동원된다. 케타민 hydrochloride.Pulmonary 트렁크 왼쪽 쇄골 하 정맥의 심장 내 주입, 왼쪽 뇌 대정맥과 했나봐하여 쥐를 희생하고 azygous 정맥 근위 흉부 대동맥의 수확을 방해. </li><li> 꼬리는 눈에 띄는 혈관에 마이크로 가위 microforceps를 사용하여 하행 흉부 대동맥 박리를 시작하는 좋은 엔트리 포인트가있다. </li><li> 흉부 대동맥 B를 추적위쪽으로 모기 외과 클램프와 부드러운 무딘 후퇴와 절개에 의한 대동맥 궁에 가슴의 등쪽 벽에서 ACK. </li><li> 클램프 한 다음 가위로 정맥을 잘라. 혈관에 클램프를 유지하고 기본 대동맥 궁을 노출 트랙터로 사용합니다. </li><li> 단지 대동맥을 떠나 첫 번째 늑간 동맥 위에 비 흡수성 6-0 실크 봉합사를 놓습니다. </li><li> 단지 왼쪽 쇄골 하 동맥 아래에 다음 합자 아래 하행 대동맥을 잘라. 트리밍은 수직 표준화 동맥류 형상을 얻기 위해 수행 될 수 있고, 또는 필요한 경우, 대동맥 동맥류와의 축 사이의 소정 각도를 얻기 위해. 폭과 길이 이식을 측정합니다. NOTE : 수확 역시 즉시 이식받는 쥐에 이식하거나, 상기 그래프트 벽의 탈세 포화를 달성하기 위하여 처리 될 수있다. Decellularized 이식은 나중에 다시 주입 (그림 1)까지 -4 섭씨 온도에서 저장 될 수있다. 목동맥류 벽의 전자 탈세 포화는 11를 확대 동맥류 걸리기 쉬운 것으로 나타났다. </li></ol> 3 이식 탈세 포화 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 정지 기증자 이식 인산염에 C ° -4 완충 식염수. </li><li> 다음 날, 이식을 녹여 상온에서 정제 및 탈 이온수로 세척하고, 0.1 % 황산 도데 실 나트륨에 37 ° C에서 10 시간 동안 배양한다. </li><li> 마지막으로, 교반과 함께 황산 도데 실 나트륨 처리 이식을 세 번 씻어 인산염 완충 생리 식염수에 다시 냉동 및하시오 -4 ° C 사용할 때까지. </li></ol> 4 동맥류 만들기 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 복부 대동맥의 해부 <ol><li> 동물을 마취 한 후 수술 부위에서 털을 잘라 내고 적합한 살균제로 피부를 깨끗하게. 종래의 피부 절개에 토인 핀치 응답의 부족에 대한 시험. 성기에 절개 1cm 근위 시작 전N midventral 위치 (단계 : 시작 시간). 조심스럽게 기본 근육으로부터 피부를 구분합니다. 흉골 아래 1~2cm 최종 해부. </li><li> 조심스럽게 단단히 기본 장기에 손상을 방지하기 위해 기본이되는 복부 근육을 잡아 당깁니다. 칼 모양의 프로세스에 위쪽으로 원격 교육의 알바을 따라 종 방향 절단을 확장 및 방광의 수준에서 꼬리 방향으로 끝난다. </li><li> 부드럽게 복막 공간에 대한 액세스를 용이하게하기 위해 그것을 비우기 방광에 압력을 적용한다. </li><li> 소장하고 오른쪽 또는 왼쪽으로 눈에 띄는 맹장 이동합니다. 복강의 왼쪽 하단에있는 대장에게 즉 하행 결장을 확인합니다. </li><li> 등쪽 체벽의 넓은 노출을 허용하는 소장 및 두개골 방향으로 하강 콜론 사이의 인대를 잘라. 떨어져 창자를 보유하는 자체 유지 견인기를 놓습니다. </li><li> 엔드 - 투 - 사이드 동맥류 문합 난의 이상적인 위치신장과 iliolumbar 맥 사이의 레벨에있는 s의. 복부 대동맥은 지방 조직에 포함 된 복막을있다. 해부하는 동안 쌍 거의 투명 요관 및 고환의 혈관에 특히주의를 기울이십시오. </li><li> 내장의 추가 후퇴가 필요한 경우, 큰 스왑 거즈를 사용한다. 쥐의 허리 아래 소작 펜 또는 유사 물체를 배치하여 위치하는 동안 유도 요추 전만은 크게 장 후퇴의 필요성을 감소시킨다. </li><li> 등쪽 체벽의 복부 표면은 얇은 정수리 복막으로 덮여있다. 이가 개방되면, 바로 아래 대동맥을 시각화. 인접한 큰 혈관에서 복부 대동맥 조심 날카로운 무딘 절개 중에 혈관 벽의 손상을 방지하기 만 외막을 파악. </li><li> 가끔, 작은 척추 동맥은 복부 대동맥의 등면에서 분절 선박으로 일어나 준비를 방해합니다. 혈관의 결찰 및 절단은 옛 성은입니다동맥류 봉합 동안 역행 흘러 나오지 않도록 DED. 곡선 형 마이크​​로 핀셋을 사용하면 깊이 합자 배치를 용이하게 할 수있다. </li></ol></li><li> 엔드 - 투 - 측면 문합 <ol><li> 복부 대동맥 아래 색깔의 고무 패드를 넣고 작은 거즈 면봉을 대다. 계획된 문 합부의 수준에서 느슨한 결합 조직 및 외막을 제거합니다. </li><li> 첫째, 다음 근위부 문합에 복부 대동맥의 원위부 클램프 (대동맥 차단 시간을 시작). 이것은 용기의 충전을 보장 회사 및 후속 arteriotomy을 용이하게한다. </li><li> 직선 또는 곡선 마이크로 가위를 사용하여 arteriotomy를 수행합니다. 마이크로 집게 타원형를 잘라하기 위해 혈관 벽의 아주 작은 조각을 보유하고있다. </li><li> 끝이 무딘 바늘을 사용하여 두 방향으로 식염수로 완전히 동맥을 세척합니다. </li><li> (arteriotomy의 근위 및 원위 단부에서이 엔드 - 투 - 측면 문합이 봉합 제를 배치 문합 시작 시간). 가능하면 마이크로 포셉으로 혈관 벽의 잡지 마십시오. 각 봉합은 혈관벽의 모든 층을 통해 배치되어 있는지 확인합니다. </li><li> 중 연속 또는 중단 봉합사로 봉합을 수행합니다. 중단 봉합을 선택하면 먼저 뒷면 구 시방 봉합을 배치합니다. 후속 봉합사는 봉합사 최초 인접 시작 이격 될 수있다. 조심스럽게 외막을 잡고. 내막의 압착 / 파지을 피하십시오. </li><li> 다시 벽이 완료되면 잘못된 봉합의 문합의 endoluminal 부분을 확인합니다. 전방 측에 동일한 순서로 동일한 절차를 수행한다. 봉합 당 세 노트의 총의 첫번째가 너무 꽉 회사가 아닌 지 확인합니다. </li></ol></li><li> 지혈 및 폐쇄 <ol><li> 측면 문합에 단부 (끝 문합 시간)을 완료 한 후, 생리 식염수와 사이트 린스 및 (역류를 허용하는 제 1 단부 대동맥 시간과 종료 그래프트 허혈 TI 클램핑을 원위 클램프를 제거나). </li><li> 명백한 출혈 여분 스티치가 필요할 수있다 역류로부터 발생하는 경우 (지혈 개시 시간). 마이너 스며 경우, 거즈 면봉의 작은 조각을 이용하여 출혈 사이트 위에 부드러운 압력으로 지혈을 달성한다. </li><li> , 근위 혈관 클램프를 제거 한 번 더 문 합부를 씻어하고, 동맥류 돔에서 합자의 나머지 끝을 잘라. </li><li> 피크 동맥 맥파 중 동맥류의 볼륨 증가의 관찰에 의해 동맥류의 개통을 확인합니다. 직접 &quot;착유 테스트&quot;를 통해 말초 복부 동맥의 개통을 평가합니다. </li><li> 플라스틱 시트와 아래에있는 작은 거즈 면봉을 제거합니다. 생성 된 동맥류 내에서 맥동 혈액 소용돌이는 명확하게 볼 수 있습니다. </li><li> 작은 돌아 다니며 여전히 존재하는 경우 (지혈의 종료 시간) 추가 지혈을위한 지방 조직 또는 Spongostan의 작은 조각으로 문합 주위 봉합 라인을 커버. </li><li> 연부 조직 확장기와 거즈 면봉을 제거합니다.다시 올바른 위치에 소장, 맹장, 그리고 지방 질량을 놓습니다. </li><li> 5-0, 4-0, 또는 3-0 3-0 흡수성 polyfilament 봉합 (끝 동작 시간)으로 연속 봉합 기술을 사용하여 피부에 상처 폐쇄 다음 흡수성 또는 비 흡수성 봉합사를 사용하여 중간 선 복부 근육을 닫습니다. 참고 : 우리의 경험 쥐 비 흡수성 모노 필라멘트 봉합사보다 흡수성 피부 봉합을 허용합니다. </li></ol></li></ol>

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저자는 사용 된 약물 물질 또는 장치 중 임의 재정적 또는 상업적 관심이 없다.

주머니 모양 뇌동맥 동맥류의 복잡한 생물학에 대한 우리의 이해의 발전은 동물 모델 3,12,13 환자의 샘플 및 실험 연구에 실험 연구에 의해 보완 역학 및 임상 데이터의 분석에 따라 달라집니다. 예를 들면 쥐와 같은 작은 동물은 본질적으로 실험 주택의 낮은 비용과 관련, 전문 장비의 필요성을 줄일 수 있습니다. 쥐의 측벽 동맥류의 미세 창조를위한 60 분 미만의 평?...

주머니 모양 뇌동맥 동맥류의 파열은 뇌졸중, 영구적 인 신경 손상 또는 사망에 이르는 생명을 위협하는 출혈이 발생합니다. 파열이 중 미세 클리핑이나 혈관 동맥류 폐색을 방지 할 수있다. 동맥류 성장 및 파열을 방지하기 위해 의료 치료를 아직 확립되어 있지 않다. 주머니 모양 동맥류에 대한 실험 모델은 동맥 동맥류 및 새로운 치료 장치 및 전략의 테스트를위한 생물학을 연구하기 위해 필요하다. 이러한 목적을 위해, 다른 종에서 여러 가지 모델이 개발 한 간행되었다. 돼지, 개, 토끼의 큰 동맥류 모델은 바람직 복잡한 동맥류 아키텍처 1,2에서 혈관 혁신을 테스트하는 데 사용됩니다. 동맥류 뮤린 모델은, 반면에, 유전자 변형 종 3,4 연구 질문 테스트 허용 세포 및 분자 생물학에서 동맥류의 설명을 용이하게큰 종 1보다 훨씬 더 나은 수준. 혈관 트랜스 경동맥 및 트랜스 - 장골 장치 배포가 큰 쥐 제한 (&gt; 400~500g) 및보다 작은 2.0 mm 직경 5,6에서 1.5 mm를 스텐트 있지만, 스텐트는 복부 대동맥에 직접 삽입을 통해 배치 할 수 있습니다 실험 동맥류를 숨겨 세그먼트. 쥐 미세 복부 대 동맥류 측벽 모델을 사용하여 이전 작업은 테스트 소설 전성 장치에있는 그것의 타당성 및 동맥류 생물학 3,7의 분자 기초를 공부에서의 사용을 보여 주었다. 현재 게시 된 실험 동맥류 모델의 대부분은 고가의 장비, 특수 환경 (투시 기능을 예를 들면 멸균 조작 실), 중재 적 방사선 능력, 비싼 종의 사용을 필요로한다. 이러한 요구 사항은 이러한 모델의 광범위한 사용을 제한하고, M 개의 상이한 실험실에서 다른 모델의 사용으로 이어질akes 데이터 비교 및​​ 메타 분석 불가능하지는 않지만 어렵다. A, 간단한 강력하고 저렴한 실험 모델은 상이한 기관에서 유사한 결과를 얻기 위하여 여러 실험실에서 표준화 된 방식으로 사용할 수있는 표준화 된 도구로서 필요하다. 이러한 목적을 위해, 우리는 래트 대동맥 측벽 주머니 모양 동맥 동맥류 모델을 만들었다. 이 보고서의 목적은 필요한 장비에 대한 단계별 절차 지침, 정보를 제공하고, 쥐의 복부 대동맥 측벽 동맥류의 성공적인 미세 창조를위한 중요한 해부학 및 수술 특성을 설명하는 것입니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="752">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:236px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Medetomidine</td>
			<td style="width:236px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Any genericon</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Ketamin</td>
			<td style="width:236px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Any genericon</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Buprenorphine</td>
			<td style="width:236px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Any genericon</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Phosphate buffered saline</td>
			<td style="width:236px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Sodium dodecyl sulfate (0.1%)</td>
			<td style="width:236px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">3-0 resorbable suture</td>
			<td style="width:236px;">Ethicon Inc., USA</td>
			<td><a name="RANGE!C7">VCP824G</a></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">5-0 non absorbable suture</td>
			<td style="width:236px;">Ethicon Inc., USA</td>
			<td>8618G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">6-0 non absorbable silk suture</td>
			<td style="width:236px;">B. Braun, Germany</td>
			<td style="width:119px;">C0761060</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">9-0 nylon micro suture</td>
			<td style="width:236px;">B. Braun, Germany</td>
			<td style="width:119px;">G1118471</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Spongostan</td>
			<td style="width:236px;">Ethicon Inc., USA</td>
			<td style="width:119px;">MS0002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Operation microscope</td>
			<td style="width:236px;">Leica , Germany</td>
			<td style="width:119px;">M651</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Digital microscope camera</td>
			<td style="width:236px;">Sony, Japan</td>
			<td style="width:119px;">SSC-DC58AP</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Standard surgical instruments</td>
			<td style="width:236px;">B. Braun, Germany</td>
			<td style="width:119px;">Multiple</td>
			<td>See protocol 1.4</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Microsurgical instruments</td>
			<td style="width:236px;">B. Braun, Germany</td>
			<td style="width:119px;">Multiple</td>
			<td>See protocol 1.5</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Vascular clip applicator</td>
			<td style="width:236px;">B. Braun, Germany</td>
			<td style="width:119px;">FT495T</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:231px;">Temporary vascular clamps</td>
			<td style="width:236px;">B. Braun, Germany</td>
			<td style="width:119px;">FT250T</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Graph Pad Prism statistical software&#160;</td>
			<td style="width:236px;">GraphPad Software, San Diego, California, USA</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>V 6.02 for Windows</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

the helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model

실험 동맥류 모델은 임상에 도입되기 전에 새로운 수술 및 혈관 내 치료 방법 및 장치를 테스트하기 위해 필요하다. 또한, 실험 모델은 주머니 모양 동맥류의 파열로 이어지는 복잡한 동맥류 생물학을 규명하기 위해 필요하다. 주머니 모양 동맥류에 대한 실험 모델의 몇 가지 다른 종류의 다른 종에 설립되었다. 그들 중 대부분은, 그러나, 그들의 광범위한 사용을 제한하는, 특별한 기술, 고가의 장비 또는 특수 환경을 필요로한다. A, 간단한 강력하고 저렴한 실험 모델은 다양한 기관에서 표준화 된 방식으로 사용할 수있는 표준화 된 도구로서 필요하다. 미세 쥐의 복부 대 동맥류 측벽 모델은 새로운 혈관 내 치료 전략 및 표준화하고 저렴한에서 동맥류 생물학의 분자 기준을 모두 공부 할 수있는 가능성을 결합방법. 모양, 크기, 형상에 의한 표준화 된 이식은 기증자 쥐의 하행 대동맥에서 수확 후 syngenic받는 사람 쥐에 이식된다. 동맥류는 지속적으로 엔드 - 투 -면을 봉합하거나 infrarenal 복부 대동맥에 9-0 나일론 봉합사를 중단한다. 우리는 필요한 장비에 대한 단계별 절차 지침, 정보를 제공하고, 쥐의 복부 대동맥 측벽 동맥류의 성공적인 미세 창조를위한 중요한 해부학 및 수술 세부 사항을 논의.

파일럿 시리즈는 14 쥐를 구성. 그 후 84 동물의 총은 2012 년 추가 29 동물 동맥 주머니 모양 이식을위한 기증자 역임 월과 9 월 사이에 몇 가지 연구 프로젝트에 대한 발표 프로토콜에 따라 운영되었다. 나머지 실험 수확과 동일한 성별, 스트레인, 체중, 연령의 래트를 사용하여 이전의 실험에서 저장된 전처리 이식편을 사용하여 수행 하였다. 체중, 전체 운전 시간, 대동맥 차단...

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The Helsinki Rat Microsurgical Sidewall Aneurysm Model

Microsurgical sidewall aneurysms in rats are created by end-to-side anastomosis of an aortic graft to the abdominal aorta. We present step-by-step instructions and discuss anatomical and surgical details for successful experimental saccular aneurysm creation.

헬싱키 쥐 미세 측벽 동맥류 모델

Experimental saccular aneurysm models are necessary for testing novel surgical and endovascular treatment options and devices before they are introduced ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

12.1K 조회수.  University of Helsinki, Helsinki, Finland. Microsurgical sidewall aneurysms in rats are created by end-to-side anastomosis of an aortic graft to the abdominal aorta. We present step-by-step instructions and discuss anatomical and surgical details for successful experimental saccular aneurysm creation.