우리는 기술 지원을, 음성 해설에 대한 CM Popelier, S. Ypenburg와 C. 레베을 MR HELMUS 감사합니다. 이 연구는 재정적으로 과학 연구에 대한 네덜란드기구 (NWO), 예술과 과학의 왕립 네덜란드 아카데미 (KNAW) 및 일본 학생 지원기구 (JASSO)에 의해 지원된다. 이 책은 JMK에 NWO의 오픈 액세스 부여에 의해 지원되었다.

1. 사육 시설 <ol><li> VU 대학에서 같은 실험실 문화에서 Lymnaea stagnalis (L.)의 성인 표본을 얻습니다. </li><li> 지속적인 물 교환이 사육 시설 (molluscarium) 및 실험 탱크, 모두 20 ° C의 낮은 구리 물을 유지한다. </li><li> 12 시간 : 12 시간에 빛 / 어둠주기를 설정합니다. </li><li> 번식, 성인 달팽이 무농약 상추 임의로 먹이 TetraPhyll (물고기) 조각으로 젊은 청소년을 공급. 24 시간 시간 내에 배치됩니다 알 덩어리에서 시작하여, 연령에 따라 별도의 탱크에있는 달팽이를 유지한다. </li><li> 달팽이는 그들이 효과를 방지하기 위해, 반환되지 않습니다 사육 탱크에서 제거되면 약간 다른 조건에서뿐만 아니라 pseudoreplication을 방지하기 위해 유지 된 것으로. </li></ol> 2. 해부 <ol><li> 1 주 동안 달팽이를 분리하고, 그쪽을 보장하기 위해, 무제한 사료를 먹이t은 전체 정자와 정액 매장이있다. </li><li> 스테레오 현미경, 핀 해부 접시, 작은 외과 용 가위, 및 미세 집게, 50 mM의 MgCl2를 솔루션, 주사 바늘 (0.3 mm X 13mm)과 종이 수건으로 가득 10 ML의 주사기를 준비합니다. </li><li> MgCl2를보기 (31.6 ± 2.1 mm 젖은 무게 0.55 g ± 2.89의 껍질 길이가 성인 달팽이에 대한 일반적으로 3 ㎖ 이상) 2 용액을 주입하여 달팽이를 안락사. 45 ° 각도로 주사 바늘로 다리를 관통하고 달팽이 완화 및 (초 이내) 확장 남을 때까지 부드럽게 지속적으로 압력을 적용하여 주입. 주사 바늘을 제거하고 달팽이가 (촉수 철수 반사가없는 여부를 확인하여, 예를 들어) 안락사 여부를 확인합니다. </li><li> 조심스럽게 굵은 집게를 사용하여 곡률 다음 껍질을 제거합니다. 반쯤, 부드럽게 집게로 긁어 쉘에서 columellar 근육을 분리합니다. 부드럽게 t 트위스트그는 쉘의 권선 방향 다음, 껍질 밖으로 달팽이. </li><li> 해부 접시에 달팽이를 놓고 다리의 뒤쪽 끝을 아래로 고정. 그런 다음 머리를 핀을 배치하고 절개를 용이하게하기 위해 달팽이에 약간의 긴장을 뒀다. </li><li> 나중에 해부에 대한 기준점이 될 여성 gonopore을 집중. </li><li> 외과 용 가위 및 미세 집게를 사용하여, 단지 맨틀의 가장자리에서, 첫 번째 절개를하고 여성 gonopore으로 잘라. 가위 &#39;블레이드 중 하나가 몸 벽에서 강요하면, 본체 만의 벽, 내부 장기의 것도, 절단 될 수 있도록 살짝 들어 올립니다. 머리쪽으로 gonopore 위 절단 계속 직선으로 잘라. </li><li> 전립선 (후방)과 정낭 (전방)을 집중. 주의 깊게을 해부하고 얼음에 보관하십시오. 정액 및 / 또는 정자를 포함하는 테스트 솔루션을 만들기 위해 이들을 사용합니다. 생리 Lymnaea의 염을 사용하여오프라인 (5.83 밀리몰 / L 염화칼슘 2 · 2H 2 O, 3.76 밀리몰 / L MgCl2를 2 · 6H 2 O, 42.69 밀리몰 / L의 NaCl, 37.53 밀리몰 / L의 KCl) 캐리어 매체로. </li><li> 전립선의 루멘뿐만 아니라 정낭의 정자에 존재하는 정액을 수집합니다. 그 후, 부드럽게 내용을 표현하고 집게로 장기 조직을 제거하여 별도의 유리 병에 식염수에 모두를 일시 중지합니다. 얼음에 보관하고 같은 날에 사용합니다. 나중에, 다른 치료 솔루션을 만들려면 다음 현탁액을 혼합한다. </li></ol> 3. 질내 주입 <ol><li> 질내 주입 절차를 시작하기 전에, (쉘의 선단에 맞게 제) 실리콘 쉘 주형을 준비하고, 1mm 주사기, 1mm의 직경을 10-12 센티미터의 실리콘 튜브 (주사 바늘을 무디게 0.3 mm X 13mm ), 굵은 집게와 날카로운 주사 바늘 장착 된 50 mM의 MgCl2를 용액으로 채워져 같은 10 ML의 주사기. </li><li> 어떤 치료의 정액 (또는 개별 정액 단백질)에 추가하는 데 필요한 정자를 수집; 생물학적으로 관련 복용량은 전립선 및 사출 당 정낭의 1 / 3에 해당. 참고 : 대표 결과 섹션 (그림 1)에서 세 가지 다른 치료와 실험의 결과가 표시됩니다 : 컨트롤 형 (전달 매체, 즉, 생리 식염수), Ovipostatin (확인 된 정액 단백질의 하나)와 Ovipostatin를 정자와 함께 제공합니다. 또한, 다른 종의 생물학 관련 용량을 추정하기 위해, 최근에 성관계 16 성적으로 격리 남아 개인이 개인의 전립선의 무게의 차이를 결정합니다. </li><li> 제조 된 시험 용액 각각 1 ㎖ 주사기를 준비합니다. 하나의 솔루션으로 각 주사기를 입력하고 내부에 기포가 없는지 확인합니다. </li><li> 각각의 주사기에 무딘 주사 바늘을 장착한다. </li><li> 주사는 1을 사용하십시오10cm의 최소 길이 mm 직경의 실리콘 튜브. </li><li> 조심스럽게 튜브를 관통하지 않도록하고, 주사 바늘을 통해 실리콘 튜브 슬라이드, 조심스럽게 주사기에 압력을 적용하여 튜브에서 공기를 제거합니다. </li><li> 포인트 2.3과 동일한 프로토콜을 수행하여 달팽이를 마취시키다. 이 시간은 50 mM의 MgCl2를 이상 2 ~ 3 ㎖를 주입하지 않도록하십시오. </li><li> 안정적인 위치를 유지하기 위해 쉘 금형 달팽이를 놓습니다. </li><li> (이 위치는 또한 민물 달팽이의 다른 종에 적용) 분명히 오른쪽 촉수와 남성 gonopore에 동물, 전방의 오른쪽에 흰 반점으로 보이는 여성 gonopore을 찾습니다. 방해받지 않고 접근 할 수 있는지 확인하십시오. </li><li> 실리콘 튜브의 끝을 잡고 부드럽게 여성 gonopore에 실리콘 튜브의 약 2 ~ 4 mm의 삽입 집게를 사용합니다. </li><li> 조심스럽게 주사기에 압력을 적용하고 시험 용액 0.03 ㎖를 주입. 반 분을 기다립니다튜브를 제거하기 전에 여성 기관으로 확산 관 내의 압력을 허용하기 UTE. </li><li> 이 모니터링 할 수있는 그것의 분리 용기에 처리 달팽이를 반환하고 실험 탱크에 진정을 복구 할 수 있습니다. </li></ol> 4. 생물 검정 <ol><li> 식별을 위해 각 달팽이 레이블과 껍질의 길이를 측정합니다. 후자는 생식 출력을 정량화 할 때 관련 크기의 좋은 지표입니다. </li><li> 실험 탱크 내의 물을 교환 할 수 있도록 천공 된 460 ml의 용기에 고립 된 각각의 달팽이를 유지합니다. 이는 효율적인 물 교환을 허용하기 위해 물 흐름의 방향이 뚫린, 오른쪽 방향으로 모든 컨테이너를 배치하는 것이 중요하다. </li><li> 생물 검정시, 양상추의 표준화 된 양을 정기적으로 달팽이를 공급. 상추를 잘라 라운드, 금속 주먹을 사용합니다. 이 프로토콜에서 19.6 cm 2의 상추 디스크는 근사하는 데 사용됩니다그들은 최대한 하루에 먹을 수있는 마운트. </li><li> 주걱의 평평한면을 사용하여 산란 량을 수집하고 용기 벽에서 계란 질량을 다 쳤어요. 계란 질량을 수집하기 위해 숟가락면을 사용합니다. 주 : 다만 배치 된 불투명 한 계란 대중이 (가 누워 후 몇 시간 이내에 투명하게)를 사용하여 스캔을 할 수 없습니다. 그들은 일주일에 2 ~ 3 알의 질량을 생성하기 때문에이 프로토콜의 모델 종, Lymnaea의 stagnalis는 매일 계란 대중을 확인합니다. 이것은 다른 종에 차이가 있습니다. </li><li> 스캐너 드라이버를 포함 (랩탑) 컴퓨터, 플랫 베드 스캐너, 표준 밀리미터 스케일, 주걱, 플레이트 및 유리 타일을 전송하여, 디지털 수집 달걀 질량 스캔. </li><li> 전송 접시에 각각의 산란 량을 놓고 접시가 가득 될 때까지 반복합니다. 그 후, 계란 대중 종이 타월 건조 줘봐 및 전송 접시에와 같은 순서로 유리 타일에 전송할 수 있습니다. </li><li> (거꾸로 각 타일을 돌려계란 대중은 유리 타일에 충실) 조심스럽게 바로 밀리미터 규모에서 평판 스캐너에 배치됩니다. 그들은 모두 같은 초점 평면 내에서 표시되도록 균등하게 계란을 배포 할, 계란 대중을 평평하게하기 위해 압력을 조금을 적용합니다. 모든 계란이 동일하게 평평 것을 보장하기 위해 두 개의 가장자리 테이프의 표준화 된 양의 타일을 장착한다. </li><li> 스캐너 설정을 조정합니다. 그것은, 그것의 최대 해상도를 조정 미리보기 스캔을하기 위해선, 작업 영역을 자르기, 밝기 및 대비를 조정하는 것이 중요합니다. 계란 대중을 스캔합니다. </li><li> 추가 개발 및 부화에 대한 자신의 레이블 20 ㎖ 유리 병에 각 산란 량을 놓습니다. </li><li> 제대로 산소를 유지하기 위해 매일 튜브를 부화에 물을 새로 고칩니다. 다음과 같은 순서로 갓 부화 한 번호와 크기에 따라이 작업을 수행합니다 : (더 파묻혀) 오프 쏟아져 없음 / 경사 분리 (부화의 시작) 범람하고 피펫 (많은 새끼)와 물을 추출. </li></ol> &lt;P 클래스 = &quot;jove_title&quot;&gt; 5. 계란을 측정 및 계산 <ol><li> 자유롭게 이용 가능한 이미지 분석 소프트웨어 ImageJ에 (NIH, 미국)과 셀 카운터 플러그인을 설치합니다. </li><li> 오픈 ImageJ에 등으로 데이터를 전송하기 위해 스프레드 시트 프로그램. 그런 ImageJ에 달걀 대중의 스캔 한 사진을 엽니 다. </li><li> 밀리미터 규모로 이동 줌 도구를 사용하여 배율을 설정합니다. 확대 화면을 채우기 위해 1mm의 창을 조정합니다. 1mm를 나타내는 두 줄 사이의 줄 도구를 사용하여 선을 그립니다. 분석으로 이동 및 크기를 설정합니다. 팝업 메뉴에서 측정 된 길이 옵션은 1로 알려진 거리를 조정하고 길이의 단위 mm로, 표시됩니다. 상자 글로벌를 확인하고 창을 닫습니다. </li><li> 분석로 이동하여 원하는 측정 (길이, 폭, 둘레)를 설정하고, 지역과의 Feret의 직경 (길이 및 폭)을 선택하여 측정을 설정합니다. 확인하고 이미지 분석을 계속하려면 확인을 클릭합니다. </li><li> 계란을 측정하기 위해, ZO측정해야 할 제 산란 량의 달걀에서 OM. 800%의 줌을 권장합니다. 그런 다음, 타원형 도구는 정확히 알, 프레스 Ctrl 키를 주위에 타원을 그린 사용하여 + D (두 번 같은 알을 측정 방지하기 위해) 이미지에 경계선을 그립니다. 그런 다음 타원형 (길이, 폭, 둘레)의 특성의 측정을 기록 CTRL + M을 누르면; 팝업 화면이 측정 값을 표시 열립니다. 주 : 계란을 측정 할 수있는 타원형 도구를 사용하여 모든 종에 적용되지 않습니다. 비 균일의 모양의 달걀 종, 대신 손으로 선택 항목을 사용합니다. </li><li> 필요한만큼의 계란을 측정하고. XLS 워크 시트 등의 조치를 저장합니다. 선택적으로, 직접 워크 시트에 데이터를 복사합니다. </li><li> 그 후 카운터 창을 사용하여, 산란 량에서 계란을 계산하고 수동으로 워크 시트에 수를 넣어. </li><li> 대안 적으로, 셀 카운터 플러그인의 도움으로 산란 량 당 개별적인 계란 센다. 이를 위해, 플러그인로 이동다음, 분석 및 셀 카운터를 선택합니다. 셀 카운터 창은 &#39;초기화&#39;상자를 눌러 &#39;원본을 유지&#39;를 확인 나타납니다. 새 카운터 창 도구 모음에서 십자선 도구를 선택하고 셀 카운터 메뉴의 카운터 형식을 선택 나타납니다. 셀 카운터 창에서 개별적인 계란 클릭함으로써 개별적인 계란 횟수. 셀 카운터 메뉴에서 카운터 형식 옆의 총 수를 관찰합니다. 스프레드 시트에 수동으로 번호를 복사하거나 결과를 눌러 결과를 얻을 수 있습니다. </li><li> 필요한 경우, 카운터 형식을 추가하여 하나의 계산 이벤트 내에서 여러 계란 질량을 계산합니다. </li></ol>

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	<li>Mann, T., Lutwak-Mann, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Male reproductive function and semen. , (1981).</li><li>Arnqvist, G., Rowe, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Sexual Conflict. , (2005).</li><li>Birkhead, T. R., Hosken, D. J., Pitnick, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Sperm Biology, an Evolutionary Approach. , (2008).</li><li>Koene, J. M., Ter Maat, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Allohormones":+A+class+of+bioactive+substances+favoured+by+sexual+selection.">Allohormones": A class of bioactive substances favoured by sexual selection.</a> Journal of Comparative Physiology A. 187 (5), 323-326 (2001).</li><li>Parker, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sperm+competition+and+its+evolutionary+consequences+in+the+insects.">Sperm competition and its evolutionary consequences in the insects.</a> Biological Reviews. 45 (4), 525-567 (1970).</li><li>Perry, J. C., Sirot, L., Wigby, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+seminal+symphony:+how+to+compose+an+ejaculate.">The seminal symphony: how to compose an ejaculate.</a> Trends in Ecology &amp; Evolution. 28 (7), 414-422 (2013).</li><li>Baldini, F., Gabrieli, P., Rogers, D. W., Catteruccia, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Function+and+composition+of+male+accessory+gland+secretions+in+Anopheles+gambiae:+a+comparison+with+other+insect+vectors+of+infectious+diseases.">Function and composition of male accessory gland secretions in Anopheles gambiae: a comparison with other insect vectors of infectious diseases.</a> Pathogens and Global Health. 106 (2), 82-93 (2012).</li><li>Xu, J., Baulding, J., Palli, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proteomics+of+Tribolium+castaneum+seminal+fluid+proteins:+identification+of+an+angiotensin-converting+enzyme+as+a+key+player+in+regulation+of+reproduction.">Proteomics of Tribolium castaneum seminal fluid proteins: identification of an angiotensin-converting enzyme as a key player in regulation of reproduction.</a> Journal of Proteomics. 78, 83-93 (2013).</li><li>Jarne, P., Auld, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animals+mix+it+up+too:+The+distribution+of+self-fertilization+among+hermaphroditic+animals.">Animals mix it up too: The distribution of self-fertilization among hermaphroditic animals.</a> Evolution. 60 (9), 1816-1824 (2006).</li><li>Nakadera, Y., Koene, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reproductive+strategies+in+hermaphroditic+gastropods:+conceptual+and+empirical+approaches.">Reproductive strategies in hermaphroditic gastropods: conceptual and empirical approaches.</a> Canadian Journal of Zoology. 91 (6), 367-381 (2013).</li><li>Chase, R., Blanchard, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+snail&#8217;s+love-dart+delivers+mucus+to+increase+paternity.">The snail&#8217;s love-dart delivers mucus to increase paternity.</a> Proceedings of the Royal Society of London B. 273 (1593), 1471-1475 (2006).</li><li>Koene, J. M., Chase, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+the+reproductive+system+of+the+snail+Helix+aspersa+caused+by+mucus+from+the+love+dart.">Changes in the reproductive system of the snail Helix aspersa caused by mucus from the love dart.</a> Journal of Experimental Biology. 201 (15), 2313-2319 (1998).</li><li>Van Duivenboden, Y. A., Pieneman, A. W., Ter Maat, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiple+mating+suppresses+fecundity+in+the+hermaphrodite+freshwater+snail+Lymnaea+stagnalis:+a+laboratory+study.">Multiple mating suppresses fecundity in the hermaphrodite freshwater snail Lymnaea stagnalis: a laboratory study.</a> Animal Behaviour. 33, 1184-1191 (1985).</li><li>Koene, J. M., Brouwer, A., Hoffer, J. N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reduced+egg+laying+caused+by+a+male+accessory+gland+product+opens+the+possibility+for+sexual+conflict+in+a+simultaneous+hermaphrodite.">Reduced egg laying caused by a male accessory gland product opens the possibility for sexual conflict in a simultaneous hermaphrodite.</a> Animal Biology. 59 (1), 435-448 (2009).</li><li>Hoffer, J. N. A., Schwegler, D., Ellers, J., Koene, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mating+rate+influences+female+reproductive+investment+in+a+simultaneous+hermaphrodite,+Lymnaea+stagnalis.">Mating rate influences female reproductive investment in a simultaneous hermaphrodite, Lymnaea stagnalis.</a> Animal Behaviour. 84 (3), 523-529 (2012).</li><li>Koene, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Male+accessory+gland+protein+reduces+egg+laying+in+a+simultaneous+hermaphrodite.">Male accessory gland protein reduces egg laying in a simultaneous hermaphrodite.</a> PLoS ONE. (5), (2010).</li><li>Nakadera, Y., Swart, E. M., Hoffer, J. N. A., Den Boon, O., Ellers, J., Koene, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Receipt+of+seminal+fluid+proteins+causes+reduction+of+male+investment+in+a+simultaneous+hermaphrodite.">Receipt of seminal fluid proteins causes reduction of male investment in a simultaneous hermaphrodite.</a> Current Biology. 24, 1-4 (2014).</li></ol>

저자가 공개하는 게 없다.

제시된 프로토콜은 정액 방법과 생물학적으로 의미있는 방식으로이 문제를 테스트하는 방법을 수집하는 방법을 보여줍니다. 여기에서이 절차는 전립선 추출물을 사용하여 도시되어 있지만, 단일 정제 정액 단백질의 효과도 같은 방법으로 시험 할 수있다. 분명히, 이러한 테스트에서 프로 시저 및 / 또는 캐리어 매체는 질문 14,16의 파라미터에 영향을주지 않도록하는 적절한 컨트롤 (모의먼트)을 포함하는 것이 중요하다. 이 방법을 사용하면, 이미 계란 14,16 누워있는 환원을 매개 단일 정액 단백질, 즉 Ovipostatin이 있다는 것을 보였다. 전립선에서 생산하고 정자와 함께 짝짓기하는 동안 전송이 단백질은, 동시 자웅 동체의 첫 번째 완전히 특성화 된 정액 성분을 나타내며, 지금까지 알려진 단백질에 대한 유사성을 표시하지 않습니다. 발견이 Oviposta주석받는 사람에 계란 대량 생산은 정액의 물질이 13 ~ 15 누워 계란에 영향을 미칠 수 있음을 나타내는 이전 작업을 확증 줄일 수 있습니다. 생물학적으로 관련 금액을 전송하여 (3.2 16 참조), 하나의 설득력은 계란에서 관찰 된 감소 누워 (그림 1) 중재 정액 단백질, 그리고 정자의 존재 자체라는 것을 입증 할 수 있습니다. 자연 교배를 통해 정액의 반복 영수증 계란 15 당 투자를 증가 시킨다는 것을 감안할 때, 지금은 달걀 누워의 다른 매개 변수를 정량화 관련성이 높은됩니다. 제시된 프로토콜은 지금 수행하는 데 필요한 방법을 제공합니다. 영향을받는 사람 (16)에 의해 규정 된 계란의 성공을 부화에 Ovipostatin의 발견되었지만,이 단백질과 협력하여 행동 다른 정액 단백질이있을 수 있습니다. 따라서, 이러한 맥락에서 정량화 할 필요가 매개 변수 - 다음 주파수와 계란 번호를 누워에이 - 계란의 크기, hatc 포함힝 시간, 갓 부화 한 개발과 갓 부화 한 크기. 또, 예컨대 정자 저장 및 사용뿐만 아니라, 여성 및 남성 기능 14, 17 향해 생식 자원의 할당으로 달걀 누워 이외 여성 프로세스에 영향을보고하는 것이 가능하다. 분명히, 제시된 방법은 Lymnaea stagnalis과 다른 신선한 물 달팽이 모두, 이러한 후속 문제를 해결하는 수단이다. 결론적으로, 정액 단백질을 전송이 프로토콜 쇼를 사용하여 실험이 동시에 나온 것에받는 사람의 여성의 생식 성능에 영향을 미칠 수 있습니다. 몇 가지 연구는이 문제를 해결 한 것을 감안할 때, 그것은 훨씬 더 일반적인 현재 과학 문헌에 반영되는 것보다 내부에서 나온 것 일구 될 가능성이 높습니다. 하나는 사전 교미 메이트 선택과 정자 경쟁이 나온 것 14 일에 중요한 역할을하는 것으로 나타났다 것을 알게 특히 어떤 highlighTS 같은 남성 소품 동맥 단백질의 전위는 성적이 시스템을 선택한다. 마지막으로,이 연구는 별도 -이 영향을받는 종 용으로 정액 단백질이 동시에 자웅 동체에 대한 동등한 중요성의 것을 개발 개념을 지원하는 데 도움이됩니다.

양도시, 정자는 일반적으로 남성 액​​세서리 분비에 의해 생산 정액 함께 제공됩니다. 어떤 사정의 구성 요소가 영양과 활성화 정자 1에 역할을하는 동안, 다른 사람은 정자 기증자 2-4 수정의 성공을 높이기 위해 여성의 생리에 영향을 미친다. 종은 매우 불규칙하고 효율적인 정자 저장 및 정자 소화가있을 때 이러한 효과는 특히, 성적 선택을 통해 선택됩니다. 이러한 조건에서, 정자 기증자 계란 5의 수정에 크게 경쟁. 남성의 수정 성공을위한 정액 물질의 중요성에 대한 풍부한 상호 연관 증거가 있지만, 직접 증거가 더 드문 몇 가지 연구는 생리 학적 변화 및 / 또는 6 관련 물질의 세부 사항에 파 놓은 광산있다. 종에서 별도의 남녀 (즉, 남성과 여성, gonochorists)와 몇 가지 잘 조사 모델의 시험편이 있습니다그것은 정액의 성분과 그 효과에 관해서 에스. 예를 들면 과일 파리, 초파리 6, 말라리아 모기, 아노 펠 레스 gambiae 7 및 빨간 가루 딱정벌레, Tribolium의 castaneum 8 있습니다. 그것이 재생이 모드는 동물계 9 공통하더라도 (즉, 개인이 동시에 기능적 암수이다) 동시에 자웅 동체이다 종에 관해서 이러한 정액 연구는 훨씬 더 희소하다. 액세서리 선 물질의 전송의 가장 주목할만한 자웅 동체 예는 아마도 물질이 피하 주사 11, 12, 즉,하지를 통해 정자 기증자에 의해 전송되는 토지 달팽이 2,10, 소위 사랑의 다트의 촬영입니다 정자와 함께. 그러나 자신의 정자와 함께 남성 액​​세서리 선 제품을 전송 많은 동시 자웅 동체가있다예 여기에 사용되는 모델 종으로, 큰 연못 Lymnaea stagnalis 달팽이. 이전 연구는 이미 정액의 영수증이 종의 여성의 생식 출력 13 ~ 15에 영향을 미치는 것을 보여 주었다, 그리고 참여 정액 단백질 중 일부는 16, 17을 확인되었습니다. Koene 등 16에보고 된 방법의 확장이 프로토콜의 전반적인 목표는 복족류 연체 동물의 알 누워 다양한 매개 변수에 대한 정액 단백질의 효과를 테스트하는 것입니다. 이것은 전립선 (즉, 정액 생산하는 남성 액세서리 선) 표준화 된 실험실 문화에서 성적으로 고립 된 기증자의 달팽이를의 해부하여 수행됩니다. 둘째, 기증자의 정자는 정낭에서 수집 및 다른 치료 솔루션이 만들어집니다. ,이어서, 시험 달팽이 마취 및 질내 예컨대 시험 용액 (주입혼자 전립선 추출물, 정자와 전립선 추출물, 혼자 정자, 단독으로 전달 매체). 이 시험 달팽이는 다음 달걀 누워을​​ 기록, 표준 조건 하에서, 주에 다음과 같은 일에 대해 모니터링된다. 계란 대중은 디지털 계산 및 다양한 파라미터를 측정하기위한 검사, 수집하고 부화에 대한 개별 유리 병에 배치됩니다. 약 2 주 후, 새끼는 계산과 디지털 스캔됩니다. 계란 질량체와 새끼 양의 모든 스캔은 다음 자유로이 사용할 이미지 분석 소프트웨어 패키지를 사용하여 분석된다. 이 프로토콜에 대한 큰 연못 달팽이, Lymnaea의 stagnalis의 실험실 균주 암스테르담 VU 대학에서 사육하는 데 사용됩니다. 이 종은 성적 선택과 자웅 동체의 재생에 대한 질문을 조사하기위한 모델 시스템 역할을합니다. 동물의 비교적 큰 크기는 실험적으로 매우 액세스 할 수 있습니다. 또한, 때문에 많은 B의 모델 종으로 사용됩니다iological 분야는 우리는 이미 이러한 동물의 기본적인 생물학에 대해 많이 알고있다. 이 방법은 일반적으로 정액 단백질을 통해 매개되는 성적 선택의 과정에 대한 질문을 연구하는 데 도움이 될 것입니다. 이러한 동시 나온 것 때문에 또, 그들이 남녀가 16,17 분리되는 종의 관광과 같은 단백질이 유사 및 / 또는 다른 방식으로 동작하는지 여부를 해결하는 것이 가능하다.

<table><tbody><tr><td>Fish food flakes</td><td>TetraPhyll</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stereo microscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Small surgical scissors</td><td>WPI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Coarse and fine forceps</td><td>WPI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 ml syringe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Injection needles (0.3 mm x 13 mm)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>50 mM MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5.83 mmol/L CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;&amp;#183;2H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3.76 mmol/L MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;&amp;#183;6H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>42.69 mmol/L NaCl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>37.53 mmol/L KCl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Two component Silicon</td><td>Sylgard</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mm syringes</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Silicon tubing (diameter 1 mm)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Blunted injection needles (0.3 mm x 13 mm)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubes</td><td>Eppendorff</td><td></td><td></td></tr><tr><td>460 ml perforated containers</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metal leaf puncher (19.6 cm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spatula/spoon</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>(Laptop) computer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flatbed scanner</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Millimeter scale</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Transferring plates</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glass tiles</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>20 ml glass vials</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

effect of male accessory gland products on egg laying in gastropod molluscs

내부적으로 동물을 시비에서 정액 유체는 일반적으로 함께 정액이나 사정을 형성, 정자에 추가됩니다. 영양 및 활성화 정자 외에, 정액의 구성 요소는 또한 정자 기증자의 수정의 성공을 증가시키기 위해 여성의 생리에 영향을 미칠 수있다. 많은 연구가 별도의 남녀와 종과 같은 효과를보고 있지만, 몇 가지 연구를 동시에 자웅 동체 동물이 해결했다. 이 비디오 프로토콜은 모델 생물로 동시에 자웅 동체 민물 달팽이, 큰 연못 달팽이 Lymnaea의 stagnalis를 사용하여, 복족류에있는 정액의 효과를 연구 할 수있는 방법을 제시한다. 프로 시저가 완료 전립선 추출물을 사용하여 도시되어 있지만, 각 구성 요소 정액의 (즉, 단백질, 펩티드 및 다른 화합물)를 동일한 방식으로 시험 될 수있다. 달걀 누워에 사정 구성 요소의 영수증의 효과 달걀 누워 주파수의 정량화 될 수있다이러한 각각의 계란 대중 내에서 계란 번호와 같은 여성의 생식 성능의 미묘한 추정하고있다. 결과는 정액 단백질은 성적 선택에 대한 자신의 중요성을 강조,이 동시 자웅 동체의 여성의 생식 출력에 영향을 미치는 것으로 나타났다.

그림 1은 제어 물질 (생리 식염수) 하나의 질내 주입 한 후 알을 낳고 동물의 비율을 보여줍니다, Ovipostatin, 또는 Ovipostatin 정자와 함께 제공합니다. N은 각 치료 = 15; . 정보 및 통계를 Koene 등 16 참조 (출처 :. Koene 등 2010 PLoS 하나의 그림 3 참조). <img alt="그림 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51698/51698fig1highres.jpg" width="500" /> 그림 1. Lymnaea stagnalis의 계란 대량 생산에 Ovipostatin의 효과. 그래프 제어 물질 (생리 식염수) 하나의 질내 주입 한 후 알을 낳고 동물의 비율을 보여줍니다, Ovipostatin, 또는 Ovipostatin 정자와 함께 제공합니다. N은 각 치료 = 15; Koene 등을 참조하십시오. 2010 정보 및 통계. Koene 등의 허가를 다시 인쇄 2010 PLoS 하나 5 :. E10117.

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Effect of Male Accessory Gland Products on Egg Laying in Gastropod Molluscs

This video protocol demonstrates a method to study effects of seminal fluid in gastropods, using the hermaphroditic freshwater snail Lymnaea stagnalis.

복족류 연체 동물의 달걀 누워에 남성 액​​세서리 글 랜드 제품의 효과

In internally fertilizing animals, seminal fluid is usually added to the spermatozoa, together forming the semen or ejaculate. Besides nourishing and ...

effect-male-accessory-gland-products-on-egg-laying-gastropod

Research

JoVE Journal

Biology

10.6K 조회수.  VU University. This video protocol demonstrates a method to study effects of seminal fluid in gastropods, using the hermaphroditic freshwater snail Lymnaea stagnalis.

비디오: Effect of Male Accessory Gland Products on Egg Laying in Gastropod Molluscs

A Noninvasive Method For In situ Determination of Mating Success in Female American Lobsters (Homarus americanus)

Despite being one of the most productive fisheries in the Northwest Atlantic, much remains unknown about the natural reproductive dynamics of American lobsters. Recent work in exploited crustacean populations (crabs and lobsters) suggests that there are circumstances where mature females are unable to achieve their full reproductive potential due to sperm limitation. To examine this possibility in different regions of the American lobster fishery, a reliable and noninvasive method was developed for sampling large numbers of female lobsters at sea. This method involves inserting a blunt-tipped needle into the female&#39;s seminal receptacle to determine the presence or absence of a sperm plug and to withdraw a sample that can be examined for the presence of sperm. A series of control studies were conducted at the dock and in the laboratory to test the reliability of this technique. These efforts entailed sampling 294 female lobsters to confirm that the presence of a sperm plug was a reliable indicator of sperm within the receptacle and thus, mating. This paper details the methodology and the results obtained from a subset of the total females sampled. Of the 230 female lobsters sampled from George&#39;s Bank and Cape Ann, MA (size range = 71-145 mm in carapace length), 90.3% were positive for sperm. Potential explanations for the absence of sperm in some females include: immaturity (lack of physiological maturity), breakdown of the sperm plug after being used to fertilize a clutch of eggs, and lack of mating activity. The surveys indicate that this technique for examining the mating success of female lobsters is a reliable proxy that can be used in the field to document reproductive activity in natural populations.

A Noninvasive Method For In situ Determination of Mating Success in Female American Lobsters Homarus americanus

Fishery-induced changes to exploited crustacean fisheries, such as the American lobster fishery, could potentially influence their reproductive dynamics, leading to a reduction in mating success. This study&#39;s goal was to develop a noninvasive method for ascertaining the mating success of female lobsters that may be physiologically or functionally mature.

에 대한 비 침습적 방법<em&gt; 현장에서</em&gt; 여성 미국의 바닷가에 연결 성공 (의 결정<em&gt; Homarus의 americanus</em&gt;)

Despite being one of the most productive fisheries in the Northwest Atlantic, much remains unknown about the natural reproductive dynamics of American ...

연구

환경과학

Obtaining Eggs from Xenopus laevis Females

The eggs of Xenopus laevis intact, lysed, and/or fractionated are useful for a wide variety of experiments. This protocol shows how to induce egg laying, collect and dejelly the eggs, and sort the eggs to remove any damaged eggs.

The eggs of Xenopus laevis intact, lysed, and/or fractionated are useful for a wide variety of experiments. This protocol shows how to induce egg laying, collect and dejelly the eggs, and sort the eggs to remove any damaged eggs.

Xenopus laevis 여성의 난자를 구하기

The eggs of Xenopus laevis intact, lysed, and/or fractionated are useful for a wide variety of experiments. This protocol shows how to induce egg laying, ...

생물학

Mechanical Separation and Protein Solubilization of the Outer and Inner Perivitelline Sublayers from Hen's Eggs

The perivitelline layer that surrounds the egg yolk plays a fundamental role in fertilization, in egg defense, and in the development of the avian embryo. It is formed by two proteinaceous sublayers that are tightly associated and formed by distinct female reproductive organs. Both structures are assumed to have their own functional specificities, which remain to be defined. To characterize the function of proteins composing each sublayer, the first challenge is to establish the conditions that would allow for the mechanical separation of these two intricate layers, while limiting any structural damage. The second step is to optimize the experimental conditions to facilitate protein solubilization from these two sublayers, for subsequent biochemical analyses. The efficiency of this approach is assessed by analyzing the protein profile of each sublayer by Sodium Dodecyl Sulfate-Poly-Acrylamide Gel Electrophoresis (SDS-PAGE), which is expected to be distinct between the two structures. This two-step procedure remains simple; it requires classical biochemical equipment and reagents; and is compatible with further in-depth proteomics. It may also be transposed to other avian eggs for comparative biology, knowing that the structure and the composition of the perivitelline layer has been shown to have species-specific features. In addition, the non-denaturing conditions developed for sublayers separation (step 1) allow their structural analyses by scanning and transmission electron microscopy. It may also constitute the initial step for subsequent protein purification to analyze their respective biological activities and 3D structure, or to perform further immunohistochemical or functional analyses. Such studies would help to decipher the physiological function of these two sublayers, whose structural and functional integrities are determinant criteria of the reproductive success.

This article reports a simple method to isolate the outer and inner perivitelline sublayers of chicken eggs while minimizing structural alteration and to optimize protein solubilization of each sublayer for proteomic analyses.

암탉의 계란에서 외부 및 내부 인식 하층의 기계적 분리 및 단백질 용해화

The perivitelline layer that surrounds the egg yolk plays a fundamental role in fertilization, in egg defense, and in the development of the avian embryo. ...

생화학

Analysis of Transforming Growth Factor &#223; Family Cleavage Products Secreted Into the Blastocoele of Xenopus laevis Embryos

The two arms of the Transforming Growth Factor &#223; (Tgf&#223;) superfamily, represented by Tgf&#223;/Nodal or Bone morphogenetic protein (Bmp) ligands, respectively, play essential roles in embryonic development and adult homeostasis. Members of the Tgf&#223; family are made as inactive precursors that dimerize and fold within the endoplasmic reticulum. The precursor is subsequently cleaved into ligand and prodomain fragments. Although only the dimeric ligand can engage Tgf&#223; receptors and activate downstream signaling, there is growing recognition that the prodomain moiety contributes to ligand activity. This article describes a protocol that can be used to identify cleavage products generated during activation of Tgf&#223; precursor proteins. RNA encoding Tgf&#223; precursors are first microinjected into X. laevis embryos. The following day, cleavage products are collected from the blastocoele of&#160;gastrula stage embryos and analyzed on Western blots. This protocol can be completed relatively quickly, does not require expensive reagents and provides a source of concentrated Tgf&#223; cleavage products under physiologic conditions.

Analysis of Transforming Growth Factor &#223; Family Cleavage Products Secreted Into the Blastocoele of Xenopus laevis Embryos

When Transforming Growth Factor &#223; family precursor proteins are ectopically expressed in Xenopus laevis embryos, they dimerize, get cleaved and are secreted into the blastocoele, which begins at the late blastula to early gastrula stage. We describe a method for aspirating cleavage products from the blastocoele cavity for immunoblot analysis.

제노푸스 라레비스 배아의 블라스코클로로 분비된 성장 인자 변형 분석 가족 분열 제품

The two arms of the Transforming Growth Factor &#223; (Tgf&#223;) superfamily, represented by Tgf&#223;/Nodal or Bone morphogenetic protein (Bmp) ligands, ...

발생학

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. When selecting sites to deposit their eggs, female flies are capable of ranking the relative attractiveness of their options and choosing the &#34;greater of two goods.&#34; However, most egg-laying preference assays are not practical if one wants to take a systematic genetic screening approach to search for the circuit basis underlying this simple decision-making process, as they are population-based and laborious to set up. To increase the throughput of studying of egg-laying preferences of single females, we developed custom chambers that each can simultaneously assay egg-laying preferences of up to thirty individual flies as well as a protocol that ensures each female has a high egg-laying rate (so that their preference is readily discernable and more convincing). Our approach is simple to execute and produces very consistent results. Additionally, these chambers can be equipped with different attachments to allow video recording the egg-laying animals and to deliver light for optogenetics studies. This article provides the blueprints for fabricating these chambers and the procedure for preparing the flies to be assayed in these chambers.

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

This protocol describes a high throughput assay for testing egg-laying preferences of Drosophila melanogaster at single-animal resolution. This assay provides a simple, efficient, and scalable platform to identify genes and circuit components that control a simple decision-making process.

높은 처리량 분석은 개인의 알을 낳는 환경 설정을 검사합니다<em&gt; 노랑 초파리</em

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. ...

신경과학

Two Types of Assays for Detecting Frog Sperm Chemoattraction

Sperm chemoattraction in invertebrates can be sufficiently robust that one can place a pipette containing the attractive peptide into a sperm suspension and microscopically visualize sperm accumulation around the pipette1. Sperm chemoattraction in vertebrates such as frogs, rodents and humans is more difficult to detect and requires quantitative assays. Such assays are of two major types - assays that quantitate sperm movement to a source of chemoattractant, so-called sperm accumulation assays, and assays that actually track the swimming trajectories of individual sperm.
Sperm accumulation assays are relatively rapid allowing tens or hundreds of assays to be done in a single day, thereby allowing dose response curves and time courses to be carried out relatively rapidly. These types of assays have been used extensively to characterize many well established chemoattraction systems - for example, neutrophil chemotaxis to bacterial peptides and sperm chemotaxis to follicular fluid. Sperm tracking assays can be more labor intensive but offer additional data on how chemoattractancts actually alter the swimming paths that sperm take. This type of assay is needed to demonstrate the orientation of sperm movement relative to the chemoattrractant gradient axis and to visualize characteristic turns or changes in orientation that bring the sperm closer to the egg.
Here we describe methods used for each of these two types of assays. The sperm accumulation assay utilized is called a "two-chamber" assay. Amphibian sperm are placed in a tissue culture plate insert with a polycarbonate filter floor having 12 &mu;m diameter pores. Inserts with sperm are placed into tissue culture plate wells containing buffer and a chemoatttractant carefully pipetted into the bottom well where the floor meets the wall (see Fig. 1). After incubation, the top insert containing the sperm reservoir is carefully removed, and sperm in the bottom chamber that have passed through the membrane are removed, pelleted and then counted by hemocytometer or flow cytometer.
The sperm tracking assay utilizes a Zigmond chamber originally developed for observing neutrophil chemotaxis and modified for observation of sperm by Giojalas and coworkers2,3. The chamber consists of a thick glass slide into which two vertical troughs have been machined. These are separated by a 1 mm wide observation platform. After application of a cover glass, sperm are loaded into one trough, the chemoattractant agent into the other and movement of individual sperm visualized by video microscopy. Video footage is then analyzed using software to identify two-dimensional cell movements in the x-y plane as a function of time (xyt data sets) that form the trajectory of each sperm.

Eggs and the extracellular coatings around eggs frequently release peptides, proteins and small molecules that communicate with sperm to guide them to the egg thereby promoting fertilization. Using frog sperm we describe and compare two classes of assays used to detect sperm chemoattraction &#x2013; sperm accumulation assays and sperm tracking assays.

감지 개구리 정자 Chemoattraction에 대한 Assays 두 종류의

Sperm chemoattraction in invertebrates can be sufficiently robust that one can place a pipette containing the attractive peptide into a sperm suspension ...

A Whole Mount In Situ Hybridization Method for the Gastropod Mollusc Lymnaea stagnalis

Whole mount in situ hybridization (WMISH) is a technique that allows for the spatial resolution of nucleic acid molecules (often mRNAs) within a &#39;whole mount&#39; tissue preparation, or developmental stage (such as an embryo or larva) of interest. WMISH is extremely powerful because it can significantly contribute to the functional characterization of complex metazoan genomes, a challenge that is becoming more of a bottleneck with the deluge of next generation sequence data. Despite the conceptual simplicity of the technique much time is often needed to optimize the various parameters inherent to WMISH experiments for novel model systems; subtle differences in the cellular and biochemical properties between tissue types and developmental stages mean that a single WMISH method may not be appropriate for all situations. We have developed a set of WMISH methods for the re-emerging gastropod model Lymnaea stagnalis that generate consistent and clear WMISH signals for a range of genes, and across all developmental stages. These methods include the assignment of larvae of unknown chronological age to an ontogenetic window, the efficient removal of embryos and larvae from their egg capsules, the application of an appropriate Proteinase-K treatment for each ontogenetic window, and hybridization, post-hybridization and immunodetection steps. These methods provide a foundation from which the resulting signal for a given RNA transcript can be further refined with probe specific adjustments (primarily probe concentration and hybridization temperature).

A Whole Mount In Situ Hybridization Method for the Gastropod Mollusc Lymnaea stagnalis

The goal of this protocol is to provide users with a set of methods for the high-throughput decapsulation of Lymnaea stagnalis embryos and larvae in preparation for whole mount in situ hybridization, and for subsequent pre- and post-hybridization treatments.

전체 산<em&gt; 현장에서</em복족류 연체 동물 용&gt; 하이브리드 방법<em&gt; Lymnaea의 stagnalis</em

Whole mount in situ hybridization (WMISH) is a technique that allows for the spatial resolution of nucleic acid molecules (often mRNAs) within a ...

Standardizing a Non-Lethal Method for Characterizing the Reproductive Status and Larval Development of Freshwater Mussels (Bivalvia: Unionida)

Actively monitoring the timing, development, and reproductive patterns of endangered species is critical when managing for population recovery. Freshwater mussels are among the most imperiled organisms in the world, but information about early larval (glochidial) development and brooding periods is still lacking for many species. Previous studies have focused on the complex life history stage when female mussels are ready to parasitize host fish, but few studies have focused on the brooding period and timing of larval development. The protocol described here allows researchers to non-lethally evaluate the state of gravidity for female mussels. The results of this study show that this method does not affect a female mussel&rsquo;s ability to stay gravid or become gravid again after sampling has been performed. The advantage of this method may permit its use on federally threatened or endangered species or other populations of high conservation concern. This protocol can be adapted for use on both preserved or live individuals and was tested on a variety of mussel species. The database provided is a repository for a breadth of information on timing of reproductive habits and will facilitate future freshwater mussel research, conservation, and recovery efforts.

Standardizing a Non-Lethal Method for Characterizing the Reproductive Status and Larval Development of Freshwater Mussels Bivalvia: Unionida

Freshwater mussel conservation is dependent on monitoring reproductive patterns and processes of species. This study standardizes a non-lethal protocol for sampling gill contents, characterizing larval development, and providing a digital repository for data collected. This protocol-database package will be an important tool for mussel researchers in recovery of imperiled species.

민물 홍합의 생식 상태 및 애벌레 개발을 특성화하기위한 비 치명적인 방법 표준화 (비발비아 : 유니온니다)

Actively monitoring the timing, development, and reproductive patterns of endangered species is critical when managing for population recovery. Freshwater ...

Eyestalk Ablation to Increase Ovarian Maturation in Mud Crabs

Mud crabs (Scylla spp.) are commercially important crustacean species that can be found throughout the Indo-West Pacific region. During culture, the induction of ovarian maturation is important to meet the consumer demand for mature mud crabs and hasten seed production. Eyestalk ablation is an effective tool to enhance ovarian maturation in mud crabs. However, there is no standard protocol for the eyestalk ablation of mud crabs. In this study, two eyestalk ablation techniques are described: cauterization (the use of hot metal to ablate the eyestalk of an anesthetized crab) and surgery (the removal of the eyestalk using surgical scissors). Before eyestalk ablation, sexually mature females (CW &#62; 86 mm) were anesthetized using an ice bag (&#8722;20 &#176;C) with seawater. When the water temperature reached 4 &#176;C, the ice bag was removed from the water. Flowing seawater (ambient temperature: 28 &#176;C) was used for recovery from the anesthesia immediately after eyestalk ablation. Mortality did not occur during or after the process of eyestalk ablation. The eyestalk ablation protocol presented here accelerated the ovarian maturation of the mud crabs.

Two eyestalk ablation protocols (i.e., cauterization and surgery&#160;approaches) were performed on anesthetized female crabs. The eyestalk ablation of mud crabs hastened the ripening of ovaries without decreasing the survival rate.

머드 크랩의 난소 성숙을 증가시키는 눈썹 절제

Mud crabs (Scylla spp.) are commercially important crustacean species that can be found throughout the Indo-West Pacific region. During culture, the ...

Drosophila Male Accessory Gland Dissection: A Method to Isolate Secondary Cells

Source: Immarigeon, C., et al. <a href="https://www.jove.com/video/60218/" target="_blank">A FACS-based Protocol to Isolate RNA from the Secondary Cells of Drosophila Male Accessory Glands</a>. J. Vis. Exp. (2019).
This video describes the dissection of the accessory glands from male flies and shows an example in which the isolated gland will be dissociated into a single cell suspension.

초파리 남성 부속샘 박리: 2차 세포를 분리하는 방법

Source: Immarigeon, C., et al. A FACS-based Protocol to Isolate RNA from the Secondary Cells of Drosophila Male Accessory Glands. J. Vis. Exp. (2019).
...

복족류 연체 동물의 달걀 누워에 남성 액세서리 글 랜드 제품의 효과

요약

더 많은 비디오 탐색

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에 대한 비 침습적 방법

Xenopus laevis 여성의 난자를 구하기

암탉의 계란에서 외부 및 내부 인식 하층의 기계적 분리 및 단백질 용해화

제노푸스 라레비스 배아의 블라스코클로로 분비된 성장 인자 변형 분석 가족 분열 제품

높은 처리량 분석은 개인의 알을 낳는 환경 설정을 검사합니다

감지 개구리 정자 Chemoattraction에 대한 Assays 두 종류의

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