Name: a murine model of vertical sleeve gastrectomy
Uploaded: 2017-12-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 47 s
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이 연구는 NIH/NCI R21CA195002-01A1, 코넬 성과 주립대 대학원 다양성 친교의 대통령의 위원회에 의해 지원 되었다. 커밍스 박사 ' 실험실 또한 받았다 코넬 비교 암 생물학 교육 프로그램 및 일 라이 릴리와 회사에서 프로젝트 기간 동안 자금.

모든 실험 프로토콜은 코넬 대학 기관 동물 관리 및 사용 위원회에 의해 승인 되었습니다가지고.
1. 미리 수술 준비
참고: 마우스 연구는 일반적으로 배경에 C57BL 다이어트 유발 된 비만 연구 translationally 인간의 비만 인슐린 저항에 관련 된 수 있도록. 남성 및 여성 쥐 후속 단계에 설명 된 대로 공부 될 수 있습니다.
<ol>
	<li>2 개월의 나이, 2 개월 ( 재료의 표참조)에 대 한 45% 또는 60% 높은 지방 다이어트에 마우스를 놓습니다. 참고: 마우스는 비만 인슐린 저항 표현 형을 생성 하 고 지방 규정식을 먹인 다. 높은 지방 다이어트를 먹이 기의 짧은 또는 긴 기간 연구의 목표에 따라 사용할 수 있습니다.</li>
	<li>쥐를 먹이를 계속 광고 libitum 수술까지. 경우 초기 측정 필요 후 7 주 동안 높은 지방 다이어트 먹이, 6 h에 대 한 마우스를 빨리 또는 밤새 고 관심 (예: 포도 당)의 대사 산물의 측정을 위한 기준 혈액 샘플.</li>
	<li>높은 지방에 쥐 다이어트 있게 쥐 1 주일 이전 가짜 수술 또는 VSG 혈 후 복구 계속 합니다. 액체에 마우스를 놓고 수술 하기 전에 4 일 동안 ( 재료의 표참조) 다이어트. 참고: 마우스 유지 됩니다 액체 다이어트 취소 치료 응답 저하 될 수 있습니다 미 립 자 물질의 소화 관 수술 전후.</li>
	<li>수술 하기 전에 다음 항목을 소독: 포 일, 거 즈, 면 도포 (CTAs) 및 수술 기구 (운영 위, 아이리스 시저, dumont forcep hemostat 톱니 브라운 Adson forcep, gavage 바늘, 미세 바늘 드라이버, 봄이 위를 스쳐 ).</li>
</ol>
2. 수직 소매 위절제술 및 가짜 절차
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	<li>수술 당일 기준 무게 측정을 얻기 위해 마우스 무게.</li>
	<li>마 취 시스템, 온수 물 목욕와 난방 패드 수술 실 장비. 37 ° C에 물 목욕을 설정 하 고 따뜻한 관개 0.9% 식 염 수 솔루션 사용. 70% 에탄올과 수술 필드를 청소 하 고 메 마른 기술 압력가 수술 팩 및 도구를 사용 하 여. 참고: 난방 패드 동물 수술 및 마 취에서 회복 하는 동안 따뜻하게 유지 하는 데 사용 됩니다.</li>
	<li>유도 챔버를 사용 하 여, 5 %isoflurane O2 유량 1 L/분입니다 마우스 마 취의 적절 한 평면에 발가락 핀치를 수행 하 여 확인의 마우스 anesthetize. 마 취의 일관 된 평면 달성 되 면 1-3% isoflurane 0.6 L/min의 O2 흐름 속도와 마우스를 유지.</li>
	<li>일단 마우스 취 장소 눈 연 고 (재료의 표 참조) 그들을 수술 하는 동안 촉촉한 유지 하는 눈에. 이 이번에도 진통제, meloxicam 등 관리 (2 mg/kg 피하). 부드럽게 긴장을 제공 하는 피부 잡고 겨드랑이에 배꼽에서 머리 클립.
	<ol>
		<li>마우스의 피부는 얇고 섬세 한, 머리를 자르는 때 피부 병 변 발생 하지 주의 하십시오. Povidone-요오드와 알코올 피부를 청소.</li>
		<li>멸 균 장갑 하 고 메 마른 외과 분야와 악기를 준비. 무 균 기술을 사용 하 여 절차의 나머지 부분을 수행 합니다. 마우스의 양쪽에 메 마른 외과 커튼을 배치 하 여 무 균 수술 필드를 준비 합니다. 압력가 깡통 호 일을 사용 하 여 마우스에 대 한 수술 드 레이프를 만들.</li>
		<li>마우스의 복 부에 대 한 액세스를 허용 하는 종이에 작은 구멍을 잘라.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>아이리스가 위를 사용 하 여 xiphoid 연골의 수준에 중앙 복 부 (배꼽)에서 피부의 절 개를 확인 합니다. 알바와 사용 아이리스는 교육 따라 체 벽을 통해 잘라가 위 교육 식별 알바. CTAs를 사용 하 여 부드럽게 복 부의 위 상승 하 고 퉁 명 스럽게 복 부의 더 큰 곡률의 그레이터 omentum을 해 부.</li>
	<li>7-0 monofilament 흡수 봉합 사를 사용 하 여 두 개의 합자를 배치 하 여 복 부의 저 비장 사이 실행 되는 짧은 위 동맥 선 봄이 위를 사용 하 여 두 개의 합자 사이 잘라. 일단 동맥 transected 완전히 복 부 구멍에서 복 부를 exteriorize. 위장 및 조직 촉촉한 유지 하는 식 염 수와 젖은 거 즈를 놓습니다.</li>
	<li>가짜 절차
	<ol>
		<li>가짜 프로시저에 대 한 테이퍼 바늘으로 6-0 monofilament 흡수 봉합 사를 사용 하 여 봉합의 느슨한 간단한 연속 패턴을 배치 합니다. 2mm 식도의 오른쪽 (외과 의사의 오른쪽)을 시작 합니다. 복 부 위 벽을 따라 봉합 라인을 배치 하 고 등 위 벽을 따라 계속. 참고: 모든 위 조작에 대 한 감염의 위험을 줄이려면만 monofilament 흡수 봉합 사를 사용 합니다. 또한, 봉합 사 풀-""를 통해 위 조직 손상 및 dehiscence 상처의 위험을 증가 하는 절단 바늘의 사용으로 모든 위 조작에 대 한 테이퍼 바늘만 봉합을 사용 합니다.</li>
		<li>봉합을 배치 하면서 1 위 벽을 통해 완전히 바늘을 전달 합니다. 봉합 평면, 거짓말만 하지 위를 제한 다는 것을 확인 하십시오. 부드럽게 매 3-4 자유 투를 사용 하 여 봉합 하 고 2.9 단계로 건너뜁니다.</li>
		<li>VSG 절차 단계 2.7을 생략 하 고 단계로 2.8 진행.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>VSG 절차
	<ol>
		<li>VSG 절차에 대 한 위 동맥과 정 맥 monofilament 테이퍼 바늘 3를 사용 하 여 흡수 되기 쉬운 봉합 사 각 매듭에 대 한 던져 7-0의 저명한 분 지 선. 바로 아래 (즉, 위장의 낮은 곡률을 향해) 합자 transection의 의도 라인을 놓습니다. 참고: transection의 의도 라인 위장과 마 고 pilcatus 아래 최소 2 mm의 심장 노치 ~ 2 m m 위의 (복 부의 더 큰 곡률을 향해 의미)에서 시작 하 고 췌 장의 오른쪽 엽의 인접 끝. 일반적으로, 있다 출혈; 하는 위 벽 당 4 배 그러나,이 쥐 사이의 달라질 수 있습니다.</li>
		<li>위절제술 중 위 내용의 흘림 방지, 봉합 transection 테이퍼 바늘으로 6-0 monofilament 흡수 봉합 사를 사용 하 여의 의도 라인 바로 아래 두 위 벽을 통과의 간단한 연속 라인을 배치 합니다. 식도의 외과 의사의 오른쪽 마 고 pilcatus 및 췌 바로 위에 끝 아래 봉합 라인을 시작 합니다.</li>
		<li>봉합 사 선 위에 얇은 밀고 hemostats 놓고 봄이 위를 사용 하 여 봉합 라인과 hemostats 사이 잘라. 메 마른 외과 분야에서 transected 위 조직을 제거 합니다.</li></ol></li></ol>CTAs를 사용 하 여 혈액 및 복 부의 digesta 청소.
		<li>Apposition 테이퍼 바늘 간단한 불연속 패턴을 사용 하 여 6-0 monofilament 흡수 봉합 사를 사용 하 여 위 벽의 강화. 참고: 간단한 불연속 봉합 패턴 이후이 제공 하는 간단한 연속 봉합 패턴 보다 더 안전한 폐쇄 좋습니다.</li>
		<li>촉 촉 하 고 깨끗 한 조직을 유지 하기 위하여 절차를 통해 식 염 수로 위 나머지를 플러시. 20 mL 주사기에 부착 된 20 G gavage 바늘을 사용 하 여 식 염 수로 위 게 수행. 이 크기를 사용 하 여 적절 한 압력 과도 한 압력 으로부터 위 조직 손상이 나 일반 지적된 바늘의 사용에서 사고 위 조직 손상의 위험 없이 제공 됩니다.</li>
		<li>20 매듭의 최소를 사용 하 여 안전 하 게 닫고 위; 이 쪽에 액세스 하기가 더 어렵습니다 그리고 그러므로 종종 dehiscence의 사이트 폐쇄 식도 측면을 따라에 주의.</li>
		<li>CTAs와 속에 부드럽게 눌러 아무 누출 인지 확인 합니다. 누수 식별 하는 경우 추가 간단한 불연속 매듭 누설의 영역에 놓고 테스트를 다시 누설. 누출 테스트 누설 감지 때 까지입니다.</li>
		<li>전염 성 미 립 자 사정 뒤에 남아 있도록 염 분의 적어도 60 mL를 사용 하 여 위장의 최종 철저 한 게 할.</li>
	
	
	<li>장소는 CTA를 사용 하 여 간 아래 복 부 구멍에 다시 위. 모든 초과 액체를 흡수 하는 복 부 구멍의 등 쪽 측면에 따라서 CTAs를 놓습니다. 무딘 18 G 바늘을 사용 하 여 주사 lactated 벨의 솔루션 (LRS) 또는 항생제 (0.5 mL 20 mg/kg Enrofloxacin + LRS) 없이 폐쇄 직전 복 부 구멍에 직접. 참고:이 유체 손실 수술 하는 동안 경험된을 대체 하 고 복구 지원 외과 사이트에 항생제의 직접 적용 하는 방법을 제공 합니다.</li>
	<li>6-0 monofilament 흡수 봉합 사를 사용 하 여 간단한 불연속 패턴에 테이퍼 바늘으로 복 부 근육 층을 닫습니다. 그런 다음 간단한 연속 패턴에 6-0 monofilament 흡수 봉합 된 피부 레이어를 닫습니다.</li>
	<li>피부에 조직 접착제를 배치 하 고 마우스 post-operatively 상처 폐쇄를 중단 수 없습니다 있도록 봉합을 묻어 봉합 선에 피부를 접어.</li>
	<li>isoflurane 해제 그리고 10-15 minbefore 집 그것의 감 금에 반환에 대 한 난방 패드에 복구 하는 마우스. 두지 마십시오 동물 무인의 식을 회복 하 고 움직일 수 때까지.</li>
	<li>수술에서 완전히 회복 될 때까지 홀로 지 내게 동물 유지. 참고: 정확한 음식 섭취 량 측정 연구를 통해 얻을 수 있다면, 마우스 연구 내내 홀로 지 내게 계속 해야 합니다. 먹는 가정 케이지 침구에서 이물질 방해의 위험이 있다. 동물 농축을 제공 하기 위해 자료를 중첩 제외 침구의 장에 보관 한다 ( 테이블의 자료를 참조).</li>

3. 수술 마우스 관리 및 측정
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	<li>마우스의 집 케이지를 반환 하 고 생리대에 케이지를 놓습니다. 수술 후 적어도 7 일 동안 액체 규정식에 쥐를 유지 합니다. 진통제, meloxicam 등 관리 (2 mg/kg 피하), 수술 후 2 일 동안. 참고: enrofloxacin (20 mg/kg), 같은 항생제, 수술 후 최대 7 일 동안 주어진 수 있습니다. 항생제는 수술에서 감염의 위험을 최소화 하 고 있습니다 또는 무 균 절차를 통해 유지의 수준에 따라 필요 하지 않을 수 있습니다. 그러나, 항생제 사용 하는 경우 그들은 일관성을 유지 하기 위해 동일한 연구에 모든 쥐에 관리 될 해야 합니다.</li>
	<li>수술 후 기간 동안 몸 무게, 음식 섭취, 배변, 활동 수준, 그리고 적절 한 치유와 회복을 위해 적어도 매일 처리를 평가 합니다. 수술 후 수술 후 14 일에 대 한 모니터링을 실시 합니다. 참고: 수술 실패는 일반적으로 본 수술 직후 또는 3 일 후 이내 operatively. 동물을 먹고 하거나 수술 후 두 번째 하루에 마시는 하지 수술 합병증에 대 한 밀접 하 게 모니터링 해야 합니다.</li>
	<li>수술 기간 완료 후 적절 한 표현 형의 유지를 보장 하기 위해 연구에 걸쳐 정기적으로 몸 무게와 음식 섭취 량을 측정 합니다.</li>
	<li>포도 당 내성, 포도 당 자극 인슐린 분 비를 평가 하는 경구 포도 당 내성 검사 (OGTT)을 수행 하 고 호르몬 분 비를 직감.
	<ol>
		<li>금식 후 쥐에는 OGTT를 수행 6 h 그리고 gavage 쥐 1 g/kg의 복용량에 50% 포도 당 솔루션에 대 한 그들.</li>
		<li>꼬리 혈액 샘플에서 0, 2.5, 5, 15, 30, 60, 120 분 후에 gavage 수집 합니다. 이 시간 포인트에서 glucometer로 혈당을 측정 합니다. 다양 한 호르몬, 인슐린, GLP-1 등의 측정에 대 한 각 시간 지점에서 혈 청 샘플을 수집 합니다.</li>
		<li>6 h 이전에 안락사에 대 한 빠른 쥐입니다. 최종 혈액 샘플 및 혈당 측정을 가져가 라. 최종 혈당 측정 기준선 측정을 비교 합니다. 200 mg/kg의 복용량에 pentobarbital의 복 주사와 쥐 안락사</li>
		<li>초기 및 최종 혈 청 샘플을 사용 하 여 추가 analytes를 측정 하 여 사전 및 수술 외과 값 비교.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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	<li>Buchwald, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bariatric+surgery:+a+systematic+review+and+meta-analysis.">Bariatric surgery: a systematic review and meta-analysis.</a> JAMA. 292 (14), 1724-1737 (2004).</li><li>Wadden, T. A., Butryn, M. L., Byrne, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficacy+of+lifestyle+modification+for+long-term+weight+control.">Efficacy of lifestyle modification for long-term weight control.</a> Obes Res. 12, 151s-162s (2004).</li><li>Yanovski, S. Z., Yanovski, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Obesity.">Obesity.</a> N Engl J Med. 346 (8), 591-602 (2002).</li><li>Abbatini, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+effects+of+laparoscopic+sleeve+gastrectomy,+gastric+bypass,+and+adjustable+gastric+banding+on+type+2+diabetes.">Long-term effects of laparoscopic sleeve gastrectomy, gastric bypass, and adjustable gastric banding on type 2 diabetes.</a> Surg Endosc. 24 (5), 1005-1010 (2010).</li><li>Sjostrom, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+bariatric+surgery+on+mortality+in+Swedish+obese+subjects.">Effects of bariatric surgery on mortality in Swedish obese subjects.</a> N Engl J Med. 357 (8), 741-752 (2007).</li><li>Adams, T. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer+incidence+and+mortality+after+gastric+bypass+surgery.">Cancer incidence and mortality after gastric bypass surgery.</a> Obesity (Silver Spring). 17 (4), 796-802 (2009).</li><li>Vest, A. R., Heneghan, H. M., Schauer, P. R., Young, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+management+of+obesity+and+the+relationship+to+cardiovascular+disease.">Surgical management of obesity and the relationship to cardiovascular disease.</a> Circulation. 127 (8), 945-959 (2013).</li><li>Ahmed, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laparoscopic+Roux-en-Y+gastric+bypass+and+its+early+effect+on+blood+pressure.">Laparoscopic Roux-en-Y gastric bypass and its early effect on blood pressure.</a> Obes Surg. 19 (7), 845-849 (2009).</li><li>Pories, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Who+would+have+thought+it?+An+operation+proves+to+be+the+most+effective+therapy+for+adult-onset+diabetes+mellitus.">Who would have thought it? An operation proves to be the most effective therapy for adult-onset diabetes mellitus.</a> Ann Surg. 222 (3), 339-350 (1995).</li><li>Garibay, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=beta-Cell+Glucagon-Like+Peptide-1+Receptor+Contributes+to+Improved+Glucose+Tolerance+After+Vertical+Sleeve+Gastrectomy.">beta-Cell Glucagon-Like Peptide-1 Receptor Contributes to Improved Glucose Tolerance After Vertical Sleeve Gastrectomy.</a> Endocrinology. 157 (9), 3405-3409 (2016).</li><li>McGavigan, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TGR5+contributes+to+glucoregulatory+improvements+after+vertical+sleeve+gastrectomy+in+mice.">TGR5 contributes to glucoregulatory improvements after vertical sleeve gastrectomy in mice.</a> Gut. 66 (2), 226-234 (2017).</li><li>McGavigan, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vertical+sleeve+gastrectomy+reduces+blood+pressure+and+hypothalamic+endoplasmic+reticulum+stress+in+mice.">Vertical sleeve gastrectomy reduces blood pressure and hypothalamic endoplasmic reticulum stress in mice.</a> Dis Model Mech. 10 (3), 235-243 (2017).</li><li>Esteban Varela, J., Nguyen, N. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laparoscopic+sleeve+gastrectomy+leads+the+U.S.+utilization+of+bariatric+surgery+at+academic+medical+centers.">Laparoscopic sleeve gastrectomy leads the U.S. utilization of bariatric surgery at academic medical centers.</a> Surg Obes Relat Dis. 11 (5), 987-990 (2015).</li><li>Laferrere, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+weight+loss+by+gastric+bypass+surgery+versus+hypocaloric+diet+on+glucose+and+incretin+levels+in+patients+with+type+2+diabetes.">Effect of weight loss by gastric bypass surgery versus hypocaloric diet on glucose and incretin levels in patients with type 2 diabetes.</a> J Clin Endocrinol Metab. 93 (7), 2479-2485 (2008).</li><li>Adams, T. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Health+benefits+of+gastric+bypass+surgery+after+6+years.">Health benefits of gastric bypass surgery after 6 years.</a> Jama. 308 (11), 1122-1131 (2012).</li><li>McGavigan, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TGR5+contributes+to+glucoregulatory+improvements+after+vertical+sleeve+gastrectomy+in+mice.">TGR5 contributes to glucoregulatory improvements after vertical sleeve gastrectomy in mice.</a> Gut. , (2015).</li><li>Peterli, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improvement+in+glucose+metabolism+after+bariatric+surgery:+comparison+of+laparoscopic+Roux-en-Y+gastric+bypass+and+laparoscopic+sleeve+gastrectomy:+a+prospective+randomized+trial.">Improvement in glucose metabolism after bariatric surgery: comparison of laparoscopic Roux-en-Y gastric bypass and laparoscopic sleeve gastrectomy: a prospective randomized trial.</a> Ann Surg. 250 (2), 234-241 (2009).</li><li>Ryan, K. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=FXR+is+a+molecular+target+for+the+effects+of+vertical+sleeve+gastrectomy.">FXR is a molecular target for the effects of vertical sleeve gastrectomy.</a> Nature. 509 (7499), 183-188 (2014).</li><li>Wilson-Perez, H. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vertical+sleeve+gastrectomy+is+effective+in+two+genetic+mouse+models+of+glucagon-like+Peptide+1+receptor+deficiency.">Vertical sleeve gastrectomy is effective in two genetic mouse models of glucagon-like Peptide 1 receptor deficiency.</a> Diabetes. 62 (7), 2380-2385 (2013).</li><li>Pressler, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vertical+sleeve+gastrectomy+restores+glucose+homeostasis+in+apolipoprotein+A-IV+KO+mice.">Vertical sleeve gastrectomy restores glucose homeostasis in apolipoprotein A-IV KO mice.</a> Diabetes. 64 (2), 498-507 (2015).</li></ol>

저자는 커밍스 박사 받은 일 라이 릴리와 회사에서 자금을 제외 하 고 아무 충돌을 선언 합니다.

Bariatric 수술 비만 대 한 가장 효과적인 장기 치료 이며, 타입-2 당뇨병과 고혈압 면제1,9,15의 높은 속도 같은 다른 건강 상의 혜택에 결과. Bariatric 수술의 murine 모델 bariatric 수술 비만 comorbidities에 신속 하 고 뚜렷한 향상을 발생 하는 메커니즘을 식별 하는 강력한 도구를 제공 합니다. Bariatric 수술의 murine 모델은 용기 조절 물질 ...

비만 전세계 성장 지속으로 bariatric 수술 비만1에 대 한 가장 효과적인 장기 치료로 인기를 얻고 있다. 불행히도, 체중 감량 식이 요법과 운동에 의해 끝났습니다 달성 하기 어렵고 상대적으로 효과 없는 장기2,3. Bariatric 수술, 수직 소매 위절제술 (VSG), 같은 무게 손실1,4목적 위장의 조작으로 정의 됩니다. 무게 손실 bariatric 수술의 눈에 띄는 결과, 비록 bariatric 수술 비만 comorbidities 향상과 수명5확장 등 다른 건강 상의 혜택을 제공 합니다. 예를 들어 bariatric 수술 타입 2 당뇨병과 고혈압, 그리고 특정 유형의 암1,,67의 개발의 평생 위험 감소의 면제의 높은 속도에서 발생합니다. 메모의 2 형 당뇨병 및 고혈압의 면제를 일으키는 원인이 되는 비만 수술의 효과 종종 관찰 수술 후 곧 체중 감량8,9이전. 이 수술 후 관찰 하는 효능에 기여 하는 몸 무게의 독립적인 기계 장치는 개념을 강조 표시 합니다. Bariatric 수술의 동물 모델 개발 되었습니다와10,,1112이러한 건강 상의 혜택에서 발생 하는 데 사용 하는 메커니즘을 연구 활용 됩니다.
우리 우리는 bariatric 수술 비만 2 형 당뇨병, 고혈압, 대 장 암10 등 comorbidities 향상 하는 메커니즘을 연구 하는 다양 한 유전자 변형된 마우스 모델에 적용 된 VSG의 마우스 모델을 확인 한 , 11 , 12. 설치류 모델 허용 더 실험 제어 및 유전 또는 제약 조작, 특정 유전자의 역할 또는 관심의 신호 경로 정의 수행할 수 있는 능력. VSG 미국13클리닉에서 가장 일반적으로 수행된 bariatric 절차 이므로 우리 VSG에 주로 집중 하 고 있다. 또한, VSG Roux-en-Y 위장 바이패스 또는 biliopancreatic 전환 등 다른 절차에 비해 적은 해부학 수정 간단한 수술 모델입니다.
VSG의 우리의 마우스 모델이 인간에서 관찰 된 bariatric 수술의 효과: 체중 감소, 감소 된 음식 섭취 량, 향상 된 포도 당 규칙, 섬 기능 향상, 사후 높은가격순 글 루카 곤 유사 펩 티 드-1 (GLP-1) 분 비를 증가 동맥 혈압 및 증가 순환 담 즙 산 농도10,11,12,13,,1415감소. 따라서, 몸 무게 의존 하 고 독립적인 메커니즘은 VSG 개선 또는 비만 comorbidities 해결을 공부 하는 이상적인 모델입니다. 또한, 그것은 큰 기계적 통찰력12다양 한 질병 조건 VSG의 영향의 조사에 대 한 허용 하는 다른 수술 절차와 결합 될 수 있는 신뢰할 수 있는 모델입니다.

<table><tbody><tr><td>45% high fat diet</td><td>Research Diets</td><td>D12451</td><td></td></tr><tr><td>60% high fat diet</td><td>Research Diets</td><td>D12492</td><td></td></tr><tr><td>Boost</td><td>Nestle</td><td>160-67538</td><td>rich chocolate flavor</td></tr><tr><td>6-0 Suture</td><td>Ethicon</td><td>Z432</td><td>monofilament absorbable/taper</td></tr><tr><td>7-0 Suture</td><td>Covidien</td><td>8866127-01</td><td>monofilament absorbable/taper</td></tr><tr><td>Cotton Swabs</td><td>Fisherbrand</td><td>23-400-118</td><td>small</td></tr><tr><td>Cotton Swabs</td><td>Fisherbrand</td><td>233-400-101</td><td>large</td></tr><tr><td>Gauze</td><td>Various</td><td></td><td>4x4 4 ply and 2x2 4 ply</td></tr><tr><td>Foil</td><td>Various</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Surgery drape</td><td>Various</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.9% saline solution</td><td>Various</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LRS</td><td>Hospira</td><td>170RX</td><td></td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Various</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alcohol</td><td>Various</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Eye Ointment</td><td>Paralube&amp;reg; Vet Ointment</td><td>17033-211-38</td><td></td></tr><tr><td>Tissue Adhesive</td><td>Vetbond</td><td>1469SB</td><td></td></tr><tr><td>Meloxicam (Metacam)</td><td>Boehringer Ingelheim</td><td>141-213</td><td>5 mg/ml</td></tr><tr><td>Enrofloxacin</td><td>Baytril</td><td>08713254-186599</td><td>22.7 mg/ml</td></tr><tr><td>Thin tipped hemostats</td><td>Fine Science Tools</td><td>13021-12</td><td></td></tr><tr><td>Metzenbaum Scissor</td><td>Fine Science Tools</td><td>14018-18</td><td></td></tr><tr><td>Iris Scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>14058-09</td><td></td></tr><tr><td>Dumont Forcep</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>Serrated Forcep</td><td>Fine Science Tools</td><td>11020-12</td><td></td></tr><tr><td>Gavage needle</td><td>Fine Science Tools</td><td>18060-20</td><td></td></tr><tr><td>Microneedle driver</td><td>Fine Science Tools</td><td>12075-14</td><td></td></tr><tr><td>Spring Scissor</td><td>Fine Science Tools</td><td>15396-00</td><td></td></tr><tr><td>Insulin syringe</td><td>Various</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1mL syringe</td><td>Various</td><td></td><td></td></tr><tr><td>20mL syringe</td><td>Various</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glucometer (one touch ultra mini)</td><td>Lifescan</td><td>70021208</td><td></td></tr><tr><td>Multiplex insulin and GLP-1 kit</td><td>Meso Scale Discovery</td><td>K15171C-1</td><td></td></tr><tr><td>GraphPad Prism 6.00</td><td>GraphPad Software</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nestlets</td><td>Ancare</td><td>NES3600</td><td></td></tr></tbody></table>

a murine model of vertical sleeve gastrectomy

수직 소매 위절제술 (VSG) 같은 bariatric 수술은 체중 감량을 목적으로 수행 되는 위장의 수술. Bariatric 수술은 현재 비만 대 한 가장 효과적인 장기 치료입니다. 체중 감소 이외에 bariatric 수술 타입 2 당뇨병, 고혈압, 면제의 면제와 같은 추가적인 건강 혜택을 생성 하 고 특정 유형의 암 개발의 위험을 감소. 이러한 혜택에 대 한 체중 감량 넘어 메커니즘 불완전 하 게 정의 된 남아 있습니다. 따라서, bariatric 수술의 동물 모델 되는 개발 및 위장 생리학의 이해와 새로운 치료 목표를 식별 개선의 목표와 함께 이러한 혜택을 선도 하는 메커니즘을 식별 하는 유효성 검사. VSG 되고있다 미국에서 병원에 가장 일반적으로 수행된 bariatric 절차 때문에 체중 감량 및 대사 개선, 생산에 매우 효과적 이며 다른 bariatric 절차 보다 수행을 간단 하 게. 따라서, 우리는 개발과 VSG의 murine 모델 검증. 이 murine VSG 모델 VSG 인간, 향상 된 혈당 및 혈압 조절 등에서의 효과의 많은. 메서드를 사용 하면 복 부의 더 큰 곡률에 따라 transecting에 의해 복 부의 절연, 위 혈관의 결 찰 및 복 부의 70%의 제거에 기반. 우리 기계 참여자 VSG의 혜택을 정의 하기 위해 다양 한 유전자 변형된 마우스 라인을 성공적으로이 수술 프로토콜을 적용 했습니다. 또한,이 murine VSG 모델 깊은 기계적 통찰력을 달성 하기 위해 다른 외과 기술로 결합 하고있다. 따라서, 위장 생리학을 공부 하 고 비만 수술의 효능에 대 한 간단 하 고 다재 다능 한 모델입니다.

가짜와 VSG 절차는 그림 1에 묘사 된다. 그림 1A 는 가짜 절차 동안 위 벽을 따라 봉합 라인 배치 되는 위치를 보여 줍니다. 이 같은 지역 위 VSG 수술 하는 동안 컷은입니다. 그림 1B 실적 VSG의 후 위 왼쪽의 관 나머지를 보여준다.
통계 및 데이터 분석<...

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A Murine Model of Vertical Sleeve Gastrectomy

다음에서는 쥐에 수직 소매 위절제술의 성능을 설명합니다. 복 부의 약 70%의 제거를 포함 하는 체중 감소 수술의 유형입니다.

수직 소매 위절제술의 Murine 모델

Bariatric surgery, such as vertical sleeve gastrectomy (VSG), is a surgery of the gastrointestinal tract that is performed for the purpose of weight loss. ...

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Research

JoVE Journal

Biology

11.1K 조회수.  Cornell University. 다음에서는 쥐에 수직 소매 위절제술의 성능을 설명합니다. 복 부의 약 70%의 제거를 포함 하는 체중 감소 수술의 유형입니다.

비디오: A Murine Model of Vertical Sleeve Gastrectomy

Murine Pancreatic Islet Isolation

Hi, I am Greg Zott. I'm with the UCSF Diabetes Center in the Bluestone Laboratory, and today I'm gonna show you the process for isolating mouse eyelets. The procedure involves the injection of a collagenase solution into the pancreas of a C3 H donor mouse, where we will then remove that pancreas, digest it away, purify the eyelets on a fial gradient, and then handpick them for ultimate transplant into the kidney capsule of a diabetic NOD mouse, Which will be our recipient.Before we start this procedure, we diluted our ATE solution in a modified Hanks buffer and we have adjusted the concentration specific for the strain of mouse that we're using the C3 H.We found digests better at a 0.8 mgs per mil collagenase solution, and we will use that to inject into the common bile duct to distend the pancreas.Performing. The procedure today Will be Pavo codre of the diabetes center. He will inject, open up the mouse, expose the the intestines, and then inject into the common bile duct.We will spray down the mouse with ethanol to keep the hair down, and then we will also verify that the mouse has been sacrificed properly with a toe pinch. Pavo will now open up the mouse and exposing the intestine and the pancreas with a midline incision. The diaphragm will also be cut to verify that the mouse will be sacrificed.Before we get started, I'd like to point out some of the important structures. The stomach is lying right here with the pancreas attached underneath into the duodenum and above. This is the liver where we'll find the gallbladder and the common bile duct, which you can see right here.So what Pavo will do next is he will isolate the small intestine, find where the common bile duct enters the small intestine. Once the intestine is exposed, we clamp on either side of the common bile duct with mosquito clamps. We find that this allows more collagenates to enter the pancreas while other groups try to direct the clamp on top of the common bile duct.We find that this is a better technique in allowing enzyme to enter the pancreas. This is a gentle procedure. You don't want to tear the bowel.You wanna allow the clamps to lie gently on either side of the common bile duct. Now we will find a gallbladder, and once the gallbladder's exposed, we will use that as a guide to injecting the collagenase into the common bile duct. Powell's using a 30 gauge needle with a five cc syringe containing three mills of collagenase solution.As he's entering the common bile duct, he's distending that duct with collagenase solution and then he travels down the common bile duct till he reaches near the intestine. And as he's going down, the enzyme solutions being pumped into the injected into the pancreas. Now that the pancreas is inflated with collagenase solution, Powell's gonna remove the hemostats and then remove the pancreas from the the mouse carefully tearing it away from the intestine.He removes it from the stomach. Okay, and then using the spleen as a handle, he lifts up the pancreas and then slowly snips it away in the common bile duct, and that's it. Pancreas is laid out and then the spleen is removed, and there he's removing the meso enteric tissue, and then the pancreas is placed in a two mill collagenase solution and a sterilized glass vial and it's placed back on Ice.The isolated pancreas that we put into the glass vials will now be placed into a 37 degree water bath for approximately 17 minutes. We placed them into a 50 mil conical rack so that they don't float up. Once during the bath, the timer starts and the digestion begins.Once the digestion time is completed, vials are removed, and then they are shaken and disrupted gently. And once the tissue starts falling apart, the vial is then placed on ice. A sterile screen is placed over a 400 mil beaker that contains washing buffer.The pancreas digest is then carefully poured over the screen into the wash buffer. For demonstration purposes, the hood has been turned off and the glass of the hood has been raised so we could see what we're doing. Once the pancreas digest is poured into the beaker, the vials are rinsed with the same washing buffer and the wash buffer placed over the screen.We have a syringe filled with washing buffer. We will use that to forcefully wash the tissue through the screen. The idea is to release any loose eyelets that are unattached to the matrix, but leaving the membranes and the undigested tissue on the screen.And when you're finished washing a tissue, this is what you usually See at the end of the procedure. The Pancreas tissue that's in the bottom of the tube will now be transferred to two 50 mil conical, and the tissue will be washed, the tissue's mixed evenly, and then distributed evenly so that we have a equal pellet volume in each tube. The beaker is now rinsed with more washing buffer.The sides are rinse so that you get all tissue that is entered the beaker again. Then it's equally distributed between each two, both 50 mil. Conical then are topped off with wash buffer.The tissue is inverted several times and then placed into a centrifuge. This is a quick spin. The centrifuge is allowed to reach a thousand RPM and then is turned off.The tissue at this time is very S eyelets are very sensitive, and you don't want to over compact them. The tubes are removed and we will do this wash step three more times. This is the end of the third wash.The components of the 50 mil conical tube are transferred to the 15 conical tube and centrifuge for a thousand RP M and then stopped. The supernat will be removed and the first part of the FI Call will be started. We are at the step where we Have our pelleted di pancreas digest.We'll resuspend that tissue so it's nice and loose to the pellets. We'll add the first density gradient, which is 1 1 0 8. We'll add five mils to each tube.The pellet is then mixed thoroughly in each of the gradients. It's important that you get good tissue distribution in your heaviest gradient. Now we will layer two mils of 1 0 9 6 density.We will then on top of that, layer two mils of 1 0 6 9 density, and then on top of that 1 0 3 7 density. It's important while you're layering the densities that you don't mix. Then all the layers have been added to the tube.And you can see this is the top of 1 1 0 8, the top of 9 1 0 9 6, the top of 1 0 6 9 and the top of 1 0 3 7. And you could see the tissue is already starting to move to its proper density even without centri fusion. The fial gradients are brought up to speed at 1800 RPM for 15 minutes, and remember to keep the brake off after the tubes are removed from the centrifuge.You can see between the 0 0 9 6 and 0 0 7 layer, there's a nice band of eyelet tissue Pablo's. Now removing the 0 3 7 layer to remove any tissue debris and DNA that might have been released during the processing. Using a sterile plastic pasture pipette, he will now remove the islet layer and transfer them to a 50 mil conical containing 25 mils of wash buffer.You want do this step quickly because fol is toxic to eyelets. We actually removed the entire 0 6 9 and 0 9 6 layer. Pavo cuts the top of the plastic pasture pipette and rinses it with wash buffer.The eyelets are then centrifuge like we centrifuge previously. Centrifuge is brought up to a Thousand RPM and then we stop it and We aspirate off. The supernatant eyelets will be washed three times with wash media.So we just completed the eyelid Isolation process we took from the digest to the fol gradient to the purified eyelets after our third wash with wash buffer, we resuspended the eyelets in our RPMI media and we played it in a tissue culture plate. These eyelets are now ready for in vitro assays or in vivo preps like eyelet Transplant.

Murine 췌장 아일릿 격리

연구

생물학

Murine Model of Hindlimb Ischemia 

In the United States, peripheral arterial disease (PAD) affects about 10 million individuals, and is also prevalent worldwide. Medical therapies for symptomatic relief are limited. Surgical or endovascular interventions are useful for some individuals, but long-term results are often disappointing. As a result, there is a need for developing new therapies to treat PAD. The murine hindlimb ischemia preparation is a model of PAD, and is useful for testing new therapies. When compared to other models of tissue ischemia such as coronary or cerebral artery ligation, femoral artery ligation provides for a simpler model of ischemic tissue. Other advantages of this model are the ease of access to the femoral artery and low mortality rate. 
In this video, we demonstrate the methodology for the murine model of unilateral hindimb ischemia. The specific materials and procedures for creating and evaluating the model will be described, including the assessment of limb perfusion by laser Doppler imaging. This protocol can also be utilized for the transplantation and non-invasive tracking of cells, which is demonstrated by Huang et al.1.

Murine Model of Hindlimb Ischemia

The surgical procedure for induction of unilateral hindlimb ischemia is demonstrated, with confirmation of ischemia by laser Doppler perfusion imaging.

Hindlimb 국소 빈혈의 Murine 모델

In the United States, peripheral arterial disease (PAD) affects about 10 million individuals, and is also prevalent worldwide.  Medical therapies for ...

Murine Renal Transplantation Procedure

Renal orthotopic transplantation in mice is a technically challenging procedure. Although the first kidney transplants in mice were performed by Russell et al over 30 years ago (1) and refined by Zhang et al years later (2), few people in the world have mastered this procedure. In our laboratory we have successfully performed 1200 orthotopic kidney transplantations with &gt; 90% survival rate. The key points for success include stringent control of reperfusion injury, bleeding and thrombosis, both during the procedure and post-transplantation, and use of 10-0 instead of 11-0 suture for anastomoses.
Post-operative care and treatment of the recipient is extremely important to transplant success and evaluation. All renal graft recipients receive antibiotics in the form of an injection of penicillin immediately post-transplant and sulfatrim in the drinking water continually. Overall animal health is evaluated daily and whole blood creatinine analyses are performed routinely with a portable I-STAT machine to assess graft function.

Renal transplantation in mice is a technically challenging procedure that requires careful post-operative care and treatment for success.

Murine 신장 이식 절차

Renal orthotopic transplantation in mice is a technically challenging procedure. Although the first kidney transplants in mice were performed by Russell ...

Murine Model for Parkinson's Disease: from 6-OH Dopamine Lesion to Behavioral Test

Parkinson's disease (PD) affects at least 6.5 million people worldwide, irrespective of gender, social, ethnic, economic, or geographic boundaries. Key symptoms, such as tremor, rigidity and bradikinesia, develop when about 3/4 of dopaminergic cells are lost in the substantia nigra, and fail to provide for the smooth, coordinated regulation of striatal motor circuits. Depression and hallucinations are common, and dementia eventually occurs in 20% of patients. At this time, there is no treatment to delay or stop the progression of PD. Rather, the medications currently available aim more towards the alleviation of these symptoms. New surgical strategies may reversibly switch on the functionally damaged circuits through the electrical stimulation of deep brain structures, but although deep brain stimulation is a major advance, it is not suitable for all patients. It remains therefore necessary to test new cell therapy approaches in preclinical models.
Selective neurotoxic disruption of dopaminergic pathways can be reproduced by injection of 6-hydroxydopamine (6-OHDA) or MPTP (1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tertahydropyridine) whereas depleting drugs and oxidative-damaging chemicals may also reproduce specific features of PD in rodents. Unlike MPTP, 6-OHDA lesions cause massive irreversible neuronal loss, and can be uni- or bilateral. The 6-OHDA lesion model is reliable, leads to robust motor deficits, and is the most widely used after 40 years of research in rats1. As interactions between grafted cells and host can now be studied more thoroughly in mice rather than in rats, the model has been transposed to mice2,3, where it has been recently characterized4.
In this video, we demonstrate how to lesion the left nigro-striatal pathway of anesthetized mice by slowly delivering 2.0 &mu;L of 6-OHDA through a stereotaxically inserted micro-syringe needle. The loss of dopaminergic input occurs within days, and the functional impairments can be monitored over post-operative weeks and months by rating animal rotations induced by dopaminergic agents5. Here, we show full-body contralateral rotations occurring 10 minutes after a single subcutaneous administration of apomorphine, measured one month after the lesion. Outcomes and drawbacks are discussed below.

Parkinson disease is caused by loss of dopaminergic innervation to the striatum, which can be experimentally induced by 6-OH-dopamine. We describe how to perform a stereotaxic lesion and to monitor apomorphine-induced rotational behavior in mice. This model is useful and reliable for testing new therapies for Parkinson disease.

파킨슨병에 대한 Murine 모델 : 6 - OH 도파민의 병변에서 행동 테스트

Parkinson's disease (PD) affects at least 6.5 million people worldwide, irrespective of gender, social, ethnic, economic, or geographic boundaries. Key ...

LAD-Ligation: A Murine Model of Myocardial Infarction

Research models of infarction and myocardial ischemia are essential to investigate the acute and chronic pathobiological and pathophysiological processes in myocardial ischemia and to develop and optimize future treatment.
Two different methods of creating myocardial ischemia are performed in laboratory rodents. The first method is to create cryo infarction, a fast but inaccurate technique, where a cryo-pen is applied on the surface of the heart (1-3). Using this method the scientist can not guarantee that the cryo-scar leads to ischemia, also a vast myocardial injury is created that shows pathophysiological side effects that are not related to myocardial infarction. The second method is the permanent ligation of the left anterior descending artery (LAD). Here the LAD is ligated with one single stitch, forming an ischemia that can be seen almost immediately. By closing the LAD, no further blood flow is permitted in that area, while the surrounding myocardial tissue is nearly not affected. This surgical procedure imitates the pathobiological and pathophysiological aspects occurring in infarction-related myocardial ischemia.
The method introduced in this video demonstrates the surgical procedure of a mouse infarction model by ligating the LAD. This model is convenient for pathobiological and pathophysiological as well as immunobiological studies on cardiac infarction. The shown technique provides high accuracy and correlates well with histological sections.

This video demonstrates how to use a fast and reliable model to study pathobiological and pathophysiological processes of myocardial ischemia.

내사 - 결합 : 심근 경색의 Murine 모델

Research models of infarction and myocardial ischemia are essential to investigate the acute and chronic pathobiological and pathophysiological processes ...

Techniques of Sleeve Gastrectomy and Modified Roux-en-Y Gastric Bypass in Mice

Obesity is a major public health issue, with a prevalence of 4 to 28% for men and 6.2 to 36.5% for women in Europe (from 2003 to 2008). Morbid obesity is frequently associated with metabolic complications, such as type 2 diabetes, hypertension, and dyslipidemia, reducing life expectancy and quality. In the absence of any effective noninvasive treatments, bariatric surgery is a valuable therapeutic option for patients with morbid obesity (body mass index (BMI) &#62;40 kg/m2), leading to long-term, sustained weight loss and improvements in metabolic complications. However, the underlying cellular and molecular mechanisms sustaining the beneficial effects of bariatric surgery are not yet fully understood. Due to the numerous genetically-modified strains available, the mouse model is the most convenient animal model to explore the molecular mechanisms behind the pleiotropic beneficial effects of bariatric surgeries. Here, we detailed the optimized healthcare methods and surgical protocols in mice for the two most widely-used bariatric surgeries: the sleeve gastrectomy and the modified Roux-en-Y gastric bypass. Deciphering the molecular mechanisms underlying the therapeutic effects of bariatric surgeries offers the promise of identifying new therapeutics targets.

Bariatric surgery is the most efficient way to reduce body weight and the deadly metabolic complications (diabetes, obesity, and dyslipidemia) frequently associated with morbid obesity. Mouse models of bariatric surgery represent a unique asset for deciphering molecular mechanisms behind the beneficial effects of these surgeries on diabetes, hypertension, and dyslipidemia.

소매 절제술의 기술 및 쥐에서 Roux-EN-Y 위장 바이 패스를 수정

Obesity is a major public health issue, with a prevalence of 4 to 28% for men and 6.2 to 36.5% for women in Europe (from 2003 to 2008). Morbid obesity is ...

의학

Efficient Production and Purification of Recombinant Murine Kindlin-3 from Insect Cells for Biophysical Studies

Kindlins are essential coactivators, with talin, of the cell surface receptors&#160;integrins and also participate in integrin outside-in signalling, and the control of gene transcription in the cell nucleus. The kindlins are ~75 kDa multidomain proteins and bind to an NPxY motif and upstream T/S cluster of the integrin &#946;-subunit cytoplasmic tail. The hematopoietically-important kindlin isoform, kindlin-3, is critical for platelet aggregation during thrombus formation, leukocyte rolling in response to infection and inflammation and osteoclast podocyte formation in bone resorption. Kindlin-3&#39;s role in these processes has resulted in extensive cellular and physiological studies. However, there is a need for an efficient method of acquiring high quality milligram quantities of the protein for further studies. We have developed a protocol, here described, for the efficient expression and purification of recombinant murine kindlin-3 by use of a baculovirus-driven expression system in Sf9 cells yielding sufficient amounts of high purity full-length protein to allow its biophysical characterization. The same approach could be taken in the study of the other mammalian kindlin isoforms.

Kindlins are fundamental to cell adhesion through integrins but studies of them have been hampered by the difficulty encountered in expressing them recombinantly in bacterial hosts. We describe here methods for their efficient production in baculovirus-infected insect cells.

의 효율적인 생산 및 정제 재조합 쥐과 Kindlin-3 생물 물리학 연구 곤충 세포에서

Kindlins are essential coactivators, with talin, of the cell surface receptors&#160;integrins and also participate in integrin outside-in signalling, and ...

Sleeve Gastrectomy in Mice using Surgical Clips

The number of people who are overweight and obese is continually increasing both in the adult and adolescent populations. This coincides with the increased universal phenomenon of type 2 diabetes (T2D) and other metabolic problems. Bariatric surgery, such as SG, is currently one of the most effective and commonly used long-term treatment for obesity and T2D, but the association between them is not completely explored yet. The mechanisms underlying the outcomes seen after bariatric surgery in humans can be investigated based on preclinical animal studies. The SG reduces body weight, glucose levels and many metabolic parameters, and is easy to perform with a low incidence of complications. The goal of this work is to provide a simple method and an uncomplicated preclinical model of bariatric surgery in animals for researchers.

The prevalence of diabetes and obesity is continuously increasing worldwide. The mechanisms between diabetes, obesity and their associated mortality and co-morbidities need to be further investigated. Here, we present a protocol for sleeve gastrectomy (SG) in animals as an uncomplicated preclinical model of bariatric surgery.

외과 클립을 사용하여 마우스에 소매 위절제술

The number of people who are overweight and obese is continually increasing both in the adult and adolescent populations. This coincides with the ...

Single-Anastomosis Duodeno-Ileal Bypass with Sleeve Gastrectomy Model in Mice

Obesity is a major health issue worldwide. As a response, bariatric surgeries have emerged to treat obesity and its related comorbidities (e.g., diabetes mellitus, dyslipidemia, non-alcoholic steatohepatitis, cardiovascular events, and cancers) through restrictive and malabsorptive mechanisms. Understanding the mechanisms by which these procedures allow such improvements often require their transposition into animals, especially in mice, because of the ease of generating genetically modified animals. Recently, the single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy (SADI-S) has emerged as a procedure that uses both restrictive and malabsorptive effects, which is being used as an alternative to gastric bypass in case of major obesity. Thus far, this procedure has been associated with strong metabolic improvements, which has led to a marked increase in its use in daily clinical practice. However, the mechanisms underlying these metabolic effects have been poorly studied as a result of a lack of animal models. In this article, we present a reliable and reproducible model of SADI-S in mice, with a special focus on perioperative management. The description and use of this new rodent model will be helpful for the scientific community to better understand the molecular, metabolic, and structural changes induced by the SADI-S and to better define the surgical indications for clinical practice.

Single-anastomosis duodeno-ileal bypass (SADI-S) is an emerging bariatric procedure with important metabolic effects. In this article, we present a reliable and reproducible model of SADI-S in mice.

생쥐의 단일 문합 십이지장-회장 우회술(Single-Anastomosis Duodeno-Ileal Bypass with Sleeve Gastrectomy Model in Mice)

Obesity is a major health issue worldwide. As a response, bariatric surgeries have emerged to treat obesity and its related comorbidities (e.g., diabetes ...

Murine Vertical Sleeve Gastrectomy: A Surgical Procedure to Downsize Stomach in Experimental Mouse Models

Source: Garibay, D., Cummings, B. P. <a href="https://www.jove.com/video/56534" target="_blank">A Murine Model of Vertical Sleeve Gastrectomy.</a> J. Vis. Exp. (2017)
In this video, a vertical sleeve gastrectomy procedure is performed on an experimental mouse model. This procedure helps remove a significant portion of the stomach along its greater curvature.

쥐 수직 소매 위 절제술: 실험용 마우스 모델에서 위를 축소하는 수술 절차

Source: Garibay, D., Cummings, B. P. A Murine Model of Vertical Sleeve Gastrectomy. J. Vis. Exp. (2017)
In this video, a vertical sleeve gastrectomy ...