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Neste Artigo

  • Resumo
  • Resumo
  • Introdução
  • Protocolo
  • Resultados Representativos
  • Discussão
  • Divulgações
  • Agradecimentos
  • Materiais
  • Referências
  • Reimpressões e Permissões

Resumo

Este manuscrito detalha um protocolo de inoculação otimizado que utiliza bainhas de folhas de milho destacadas para estudos citológicos, fisiológicos e moleculares reprodutíveis de interações do milho com fitopatógenos fúngicos. As bainhas foliares facilitam a observação em tempo real das interações celulares entre a planta viva e o fungo em tecidos não fixos.

Resumo

Otimizamos um protocolo para inocular bainhas foliares de milho com fungos hemibiotróficos e necrotróficos foliares patogênicos. O método é modificado a partir de um originalmente aplicado em bainhas de folhas de arroz e permite a observação microscópica direta do crescimento e desenvolvimento de fungos em células vivas de plantas. Bainhas foliares coletadas de plântulas de milho com dois colares de folhas completamente emergidos são inoculadas com gotas de 20 μL de suspensões de esporos fúngicos de 5 x 105 esporos/mL e incubadas em câmaras de umidade a 23 °C sob luz fluorescente contínua. Após 24-72 h, o excesso de tecido é removido com uma lâmina de barbear para deixar uma única camada de células epidérmicas, uma amostra opticamente clara que pode ser fotografada diretamente sem a necessidade de fixação química ou clareamento. Células de plantas e fungos permanecem vivas durante todo o experimento e as interações podem ser visualizadas em tempo real. As bainhas podem ser coradas ou submetidas à plasmólise para estudar a citologia do desenvolvimento e a viabilidade das células do hospedeiro e do patógeno durante a infecção e colonização. Cepas fúngicas transformadas para expressar proteínas fluorescentes podem ser inoculadas ou co-inoculadas nas bainhas para maior resolução e para facilitar a avaliação de interações competitivas ou sinérgicas. Cepas fúngicas expressando proteínas de fusão fluorescente podem ser usadas para rastrear e quantificar a produção e o direcionamento dessas proteínas individuais em planta. Tecidos da bainha inoculados podem ser extraídos para caracterizar ácidos nucléicos, proteínas ou metabólitos. O uso destes ensaios de bainha tem avançado muito os estudos detalhados dos mecanismos de patogenicidade fúngica em milho e também de efetores de proteínas fúngicas e metabólitos secundários que contribuem para a patogenicidade.

Introdução

Análises espaciais e temporais em nível celular são críticas para o entendimento da fisiologia e citologia das interações fúngico-planta. Tecidos foliares quimicamentefixados1,2,3 ou clareados4, bem como membranas artificiais5, têm sido utilizados no passado para investigar a citologia do desenvolvimento de patógenos foliares e interações planta-fungos. No entanto, a investigação de eventos infecciosos em tecidos vivos do hospedeiro em tempo real, sem fixação ou clareamento, é um desafio devido a questões técnicas relacionadas à....

Protocolo

Observação : o fluxo de trabalho para o método é mostrado na Figura 1.

figure-protocol-197
Figura 1: Etapas do protocolo de inoculação otimizado utilizando bainhas de folhas de milho destacadas. O preparo da suspensão de esporos, a inoculação da bainha foliar e o preparo da amostra para microscopia de células vivas são destacados nas caixas verde (A), roxa (B) e laranja (C

Resultados Representativos

Os exemplos a seguir descrevem resultados representativos após o uso do método de inoculação em bainha de milho. Esses exemplos demonstram a facilidade, a velocidade e a precisão com que a observação e a comparação das interações milho-fungo podem ser realizadas em tempo real com este ensaio otimizado. A imagem de células vivas também permite a extração de informações quantitativas, fornecendo uma ferramenta útil para estudos moleculares, citológicos e fisiológicos comparativos. Mais detalhes podem se.......

Discussão

O método otimizado de inoculação de bainha foliar aqui descrito é modificado de um protocolo original que foi desenvolvido e aplicado em bainhas foliares de arroz 6,8,36. Permite observações diretas e detalhadas do crescimento e desenvolvimento de fungos em células vegetais vivas com microscopia de campo amplo ou confocal. O protocolo é adequado para caracterização, comparação e quantificação de uma variedade de fe.......

Divulgações

Os autores declaram não ter interesses financeiros concorrentes e nada a divulgar.

Agradecimentos

Os autores agradecem ao USDA-NIFA por seu apoio financeiro (números de concessão 2018-67013-28489 e 2020-70410-32901). Quaisquer opiniões, achados, conclusões ou recomendações expressas neste manuscrito são exclusivamente dos autores e não refletem necessariamente as opiniões do Departamento de Agricultura dos EUA. Agradecemos à aluna visitante do Ciência sem Fronteiras, Mayara da Silva, pelas imagens que aparecem na Figura 6A e na Figura 7D. Também agradecemos ao Departamento de Fitopatologia da Universidade de Kentucky por fornecer acesso aos microscópios confocais Olympus.

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Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Axiocam monochrome microscope cameraZEISS426560-9010-000Compatible with the Axioplan 2 microscope; provides low read noise and high speed for live cell imaging
Axioplan 2 epifluorescence microscopeZEISSN/AAllows live viewing and image/video capture of biological samples 
Benchtop centrifuge 24 X 1.5/2 mLThermo Fisher Scientific75002431Sorvall Legend Micro 17; max speed: 13,300 rpm (17,000 x g)
Falcon bacteriological Petri dish with lidFisher Scientific08-757-105Polystyrene material; hydrophobic surface
Filter paper Fisher Scientific09-920-115Whatman grade 1 for Petri plate moist chambers
FV 3000 laser scanning confocal microscopeOlympusN/AFor visualization of fungal transformants' 
Germination paperAnchor Paper Co.SD7615L76# heavy weight for plastic box moist chambers
Glass Petri dishesVWR International75845-542Type 1 class A, 33 expansion borosilicate glass;
complete set (cover + bottom), for Petri plate moist chambers
Glass wool Ohio Valley Specialty Chemical 3350For glass-wool filter units
Hemocytometer/Neubauer counting chamber and cover glassVWR International15170-1720.1 mm chamber depth; comes with two 0.4 mm cover glasses
Microscope coverslipsFisher Scientific12-553-457 Borosilicate glass; 100/Pk.; 22 mm length, 22 mm width
Maize cultivar Golden Jubilee seedsWest Coast Seeds Ltd., Delta, BC, CanadaCN361Matures in 95-105 days; seed type: F1
Microcentrifuge tubes USA Scientific  1415-25001.5 mL capacity
Microscope slides Fisher Scientific12-550-123 Superfrost white tab slide; 76 mm length, 25 mm width
Oatmeal Agar (OA)VWR International255210Difco Oatmeal Agar, BD; 500 g
Nail polishRevlon43671Clear nail polish for sealing microscope slides; color 771 Clear
Non-skirted 96-well PCR plateUSA Sientific1402-9500100 uL plate volume
Pestle for microcentrifuge tubesUSA Scientific 1415-5390Conical tip; polypropylene material
PlanApo 60X/1,00 WLSM water objective Olympus1-UB933Compatible with the Olympus FV 3000 confocal microscope
Potato Dextrose Agar (PDA)VWR International90000-758Difco Potato Dextrose Media, BD; 500 g
Pro-Mix BXPremium Horticulture Supply Co.N/APremium general-purpose growing medium formulated to provide
a balance of water retention and proper drainage
SC10 cone-tainers Greenhouse Megastore CN-SS-SC-10B1.5 inch diameter, 8.25 inch depth, and a volume of 164 mL
SC10 cone-tainers trayGreenhouse Megastore CN-SS-SCTR9824 inch length x 12 inch width x 6.75 inch height; holds up to 98 of SC10 cone-tainers
Single edge razor bladeThermo Fisher Scientific17-989-145AccuTec blade; steel material; 38 mm length blade
Storage containers/boxes with latch closureTarget002-02-0405Clear view storage boxes for rmoist chamber;
outside dimensions: 23 5/8 inch x 16 3/8 inch x 6 1/2 inch; 32 qt. capacity

Referências

  1. Cheng, Y., Yao, J., Zhang, H., Huang, L., Kang, Z. Cytological and molecular analysis of nonhost resistance in rice to wheat powdery mildew and leaf rust pathogens. Protoplasma. 252 (4), 1167-1179 (2015).
  2. Hickey, E. L., Coffey, M. D.

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