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Aqui está descrito um método que pode ser usado para obter imagens de cinco ou mais parâmetros fluorescentes por microscopia imunofluorescente. Um pipeline de análise para extrair células únicas dessas imagens e conduzir análises de células únicas por meio de estratégias de gating semelhantes à citometria de fluxo é delineado, o que pode identificar subconjuntos de células em seções de tecido.
O uso da histologia para investigar a diversidade de células imunes em seções de tecido, como as derivadas do sistema nervoso central (SNC), é criticamente limitado pelo número de parâmetros fluorescentes que podem ser visualizados de uma só vez. A maioria dos subconjuntos de células imunes foi definida usando citometria de fluxo usando combinações complexas de marcadores de proteínas, muitas vezes exigindo quatro ou mais parâmetros para serem identificados de forma conclusiva, o que está além das capacidades da maioria dos microscópios convencionais. Como a citometria de fluxo dissocia os tecidos e perde informações espaciais, há necessidade de técnicas que possam reter informações espaciais enquanto interrogam os papéis de tipos de células complexas. Essas questões são abordadas aqui criando um método para expandir o número de parâmetros fluorescentes que podem ser visualizados coletando os sinais de fluoróforos espectralmente sobrepostos e usando a separação espectral para separar os sinais de cada fluoróforo individual. Essas imagens são então processadas usando um pipeline de análise para obter imagens histológicas de alto parâmetro e extrair células únicas dessas imagens para que as propriedades fluorescentes exclusivas de cada célula possam ser analisadas em um nível de célula única. Usando estratégias de gating semelhantes à citometria de fluxo, as células podem ser perfiladas em subconjuntos e mapeadas de volta para as seções de histologia para não apenas quantificar sua abundância, mas também estabelecer como elas interagem com o ambiente do tecido. No geral, a simplicidade e o potencial do uso da citometria de histofluxo para estudar populações imunes complexas em seções de histologia são demonstradas.
A inflamação impulsionada por células do sistema imunológico e células gliais pode contribuir para distúrbios crônicos do SNC, onde cada população pode promover a atividade da outra 1,2,3. Compreender como o sistema imunológico interage com esses elementos do SNC para promover a inflamação do SNC é atualmente um grande tópico de interesse e tem sido muito facilitado por técnicas de alto parâmetro, como o sequenciamento de RNA de célula única. Por meio do sequenciamento de RNA de célula única, descobrimos que há uma extensa comunicação ocorrendo entre as células gliais e o sis....
Este protocolo não cobre a secção de tecidos para histologia; consulte Jain et al.18 ou19 para obter descrições de como seccionar tecidos para histologia. Este protocolo pode ser usado com qualquer tecido seccionado em lâminas de vidro. Este artigo utiliza linfonodos inguinais isolados de um animal imunizado, conforme descrito anteriormente18. O procedimento e o cronograma para este protocolo estão resumidos na Figura 1. Os detalhes dos reagentes e dos equipamentos utilizados neste estudo estão listados na Tabela de Materiais.
Figura 1: Fluxo de trabalho de citometria de histofluxo. As seções de tecido são coradas com corantes espectralmente sobrepostos (etapa 1). As imagens são coletadas em lasers de excitação individuais emparelhados com filtros passa-banda sintonizáveis para minimizar o sangramento espectral entre os fluoróforos (etapa 2). O sangramento espectr.......
Descreve-se aqui o uso da citometria de histofluxo, técnica validada anteriormente18. Está demonstrado que, ao corar seções de tecido com corantes espectralmente sobrepostos, esse sangramento através dos canais pode ser removido usando compensação espectral, resultando em um número maior de parâmetros fluorescentes sendo claramente resolvidos do que normalmente seria possível através de métodos convencionais. Como as imagens histológicas de alto parâmetro são difíceis de analisar u.......
Os autores não têm conflitos de interesse financeiros.
Agradecemos à Plataforma de Microscopia Avançada do Hotchkiss Brain Institute pela infraestrutura e experiência em imagens. A RWJ foi apoiada por financiamento de bolsas de pós-doutorado do programa Eyes High da Universidade de Calgary e por uma bolsa educacional irrestrita da Sociedade de Esclerose Múltipla do Canadá e da Roche Canadá. A VWY recebeu apoio salarial do programa Canada Research Chair Tier 1. Este trabalho foi apoiado por fundos operacionais do Canadian Institutes of Health Research Grant 1049959, da Multiple Sclerosis Society of Canada Grant 3236 e do Departamento de Defesa dos EUA do Programa de Pesquisa de Esclerose Múltipla Dirigido pelo Congresso. <....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
100% Ethanol | Sigma | 676829-1L | |
4% PFA | Electron Microscopy Sciences | 157-4 | |
Anaconda | N/A | N/A | https://www.anaconda.com/download |
Bovine Serum Albumin | Sigma | A4503-50G | |
Cold fish stain gelatin | Sigma | G7765 | |
Collating multichannel data from Imaris.ipynb script | N/A | N/A | https://github.com/elliottcalgary/Histoflow-Cytometry-Analysis- |
Convert FlowJo output to txt file for Cell selection in Imaris.ipynb script | N/A | N/A | https://github.com/elliottcalgary/Histoflow-Cytometry-Analysis- |
Donkey anti-rat Alexa Fluor 647 | JacksonImmunoResearch | 712-605-153 | 1:300 concentration |
Donkey anti-rat DyLight 405 | Jackson ImmunoResearch | 712-475-153 | 1:200 concentration |
Donkey Serum | JacksonImmunoResearch | 017-000-001 | |
F(ab')2-Goat anti-Mouse IgG PerCP-eFluor 710 | Thermofisher | 46-4010-82 | 1:25 concentration |
FIJI | N/A | N/A | https://imagej.net/software/fiji/ |
FlowJo | FlowJo LLC | Software 4 | |
Fluorescence spectraviewer | https://www.thermofisher.com/order/fluorescence-spectraviewer/#!/ | ||
Fluoromount-G | Southern Biotech | 0100-01 | |
Fresh frozen human tonsil sections | amsbio | HF-707 | |
Glass coverslip | VWR | 48393 106 | |
Goat anti-human IgA Alexa Fluor 488 | JacksonImmunoResearch | 109-546-011 | 1:400 concentration |
Goat anti-human IgG Cy3 | JacksonImmunoResearch | 709-166-098 | 1:400 concentration |
Goat anti-human IgM Dylight 405 | JacksonImmunoResearch | 109-476-129 | 1:300 concentration |
Goat anti-rabbit A546 | Thermo Fisher Scientific | A-11035 | 1:250 concentration |
Goat anti-rabbit IgG PE-Alexa Fluor 610 | Thermofisher | A-20981 | 1:250 concentration |
Horse Serum | Sigma | H1138 | |
Ilastik | N/A | N/A | https://www.ilastik.org/ |
Ilastik FIJI plugin | N/A | N/A | https://www.ilastik.org/documentation/fiji_export/plugin |
Imaris File Converter | Oxford Instruments | Software 2 | |
Imaris with cell module | Oxford Instruments | Software 3 | |
kimwipe | Kimtech | 34155 | |
LasX Life Science software | Leica | Software 1 | |
Mouse anti-human CD20 | VWR | CA95024-322 | 1:40 concentration |
Mouse anti-human CD38 APC-R700 | BD Biosciences | 564980 | 1:20 concentration |
Normal Goat Serum | JacksonImmunoResearch | 005-000-001 | |
Normal Mouse Serum | JacksonImmunoResearch | 015-000-001 | |
Normal Rabbit Serum | JacksonImmunoResearch | 011-000-001 | |
Normal Rat Serum | JacksonImmunoResearch | 012-000-120 | |
Nuclear Yellow | Abcam | ab138903 | Dissolve in DMSO at a concentration of 2 mg/ml and store at 4°C in the dark |
PAP pen | Cedarlane | MU22 | |
PBS | Gibco | 10010-023 | |
Rabbit anti-human Ki67 | Abcam | ab15580 | 1:500 concentration |
Rabbit anti-mouse Iba1 | Wako | 019-19741 | 1:500 concentration |
Rat anti-human Blimp1 | Thermofisher | 14-5963-82 | 1:40 concentration |
Rat anti-mouse B220 Alexa Fluor 647 | BioLegend | 103226 | 1:250 concentration |
Rat anti-mouse CD138 | Biolegend | 142502 | 1:200 concentration |
Rat anti-mouse CD3 PE-eFluor 610 | Thermo Fisher Scientific | 61-0032-82 | 1:40 concentration |
Rat anti-mouse CD4 Alexa Fluor 488 | BioLegend | 100529 | 1:200 concentration |
Rat anti-mouse CD45 allophycocyanin-R700 | BD Biosciences | 565478 | 1:50 concentration |
Rat anti-mouse IgD PerCP-eFluor 710 | Thermo Fisher Scientific | 46-5993-82 | 1:50 concentration |
SP8 Confocal microscope | Leica | ||
Triton X-100 | Sigma | X100-500ml | |
Trueblack | Biotium | 23007 | |
Tween-20 | Sigma | P7949-500ml | |
Ultracomp ebeads | Thermofisher | 01-2222-42 |
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