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A espectroscopia de ressonância magnética nuclear (RMN) pode caracterizar a dinâmica estrutural da proteína de maneira específica do resíduo. Fornecemos um protocolo prático para registrar experimentos de relaxamento de RMN 15N R1 e R2 e {1H}-15N heteronuclear Overhauser effect (hetNOE), sensíveis à escala de tempo de picossegundos a nanossegundos.
A espectroscopia de ressonância magnética nuclear (RMN) permite estudar proteínas em solução e sob temperaturas fisiológicas. Freqüentemente, os grupos amida da estrutura da proteína ou os grupos metil nas cadeias laterais são usados como repórteres da dinâmica estrutural em proteínas. Um estudo de dinâmica estrutural da estrutura proteica de proteínas globulares em amostras marcadas com 15N e totalmente protonadas geralmente funciona bem para proteínas com peso molecular de até 50 kDa. Quando a deuteração de cadeia lateral em combinação com espectroscopia otimizada de relaxamento transversal (TROSY) é aplicada, esse limite pode ser estendido até 200 kDa para proteínas globulares e até 1 MDa quando o foco está nas cadeias laterais. Quando proteínas intrinsecamente desordenadas (IDPs) ou proteínas com regiões intrinsecamente desordenadas (IDRs) são investigadas, essas limitações de peso não se aplicam, mas podem ir muito além. A razão é que os IDPs ou IDRs, caracterizados por alta flexibilidade interna, são frequentemente desacoplados dinamicamente. Vários métodos de RMN oferecem insights de resolução atômica sobre a dinâmica estrutural das proteínas em uma ampla gama de escalas de tempo, de picossegundos a horas. As medições de relaxamento padrão de 15N apresentam uma visão geral da flexibilidade interna de uma proteína e caracterizam a dinâmica da estrutura da proteína experimentada na escala de tempo rápida de pico a nanossegundo. Este artigo apresenta um protocolo prático para configurar e registrar experimentos de RMN 15NR1, R2 e efeito Overhauser heteronuclear (hetNOE). Mostramos dados exemplares e explicamos como interpretá-los de forma simples qualitativa antes de qualquer análise mais sofisticada.
A função de uma proteína é determinada não apenas por sua estrutura tridimensional, mas também por sua dinâmica estrutural, englobando sua flexibilidade interna e transições estruturais entre diferentes conformações que a proteína adotará. A espectroscopia de ressonância magnética nuclear (RMN) pode investigar a dinâmica estrutural de proteínas em solução 1,2,3. Desenvolvimentos recentes na RMN de estado sólido detectada por prótons também permitem a caracterização da dinâmica de proteínas em um estado menos solúvel, como, por exemplo, uma me....
1. Preparação da amostra de RMN
NOTA: A marcação isotópica das proteínas é realizada para experimentos de RMN de dimensão superior e RMN avançada. Quando a expressão de proteínas em E. coli e a purificação de proteínas foram estabelecidas usando meios ricos (por exemplo, Luria-Bertani [LB] ou meio triptona de extrato de levedura 2x [2YT]) com um rendimento de vários miligramas por litro, a preparação de uma amostra de RMN marcada isotopicamente é geralmente relativamente simples.
A seguir, são apresentados alguns dados exemplares de relaxamento de RMN registrados na proteína SNARE vesicular Synaptobrevin-2 (1-96), freqüentemente chamada de VAMP2 (vesícula-associada à proteína 2). Para registrar os dados de RMN, usamos uma amostra de 171 μM 15N Synaptobrevin-2 (1-96) (apelidada de Syb-2 a seguir) em tampão MES de 50 mM (pH 6,0) contendo 150 mM de NaCl, 0,1 mM de TCEP e 1 mM de EDTA. Todos os dados experimentais foram registrados a 278,15 K usand.......
Este protocolo descreveu a configuração de experimentos de relaxamento de RMN 15N por Lakomek et al.69 e Stief et al.70. Nós nos concentramos nas sequências de pulso de RMN usando um esquema de detecção HSQC aprimorado por sensibilidade. Os experimentos 15N R1 e R1ρ são implementados conforme descrito em detalhes por Stief et al.70, e o experimento hetNOE é descrito por Lakomek et
Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes conhecidos ou relacionamentos pessoais que possam ter influenciado o trabalho relatado neste artigo.
Agradecemos a Melinda Jaspert e Kevin Bochinsky pelas discussões úteis. N.L. agradece à Fundação Alemã de Ciência pelo financiamento através do Programa Heisenberg (número de concessão DFG 433700474). Este trabalho é ainda apoiado pelo projeto "Determinantes virológicos e imunológicos da patogênese do COVID-19 - lições para se preparar para futuras pandemias (KA1-Co-02 "COVIPA"), uma doação da Iniciativa e Fundo de Rede da Associação Helmholtz. Reconhecemos o generoso acesso ao Centro de RMN Biomolecular Jülich-Düsseldorf, administrado em conjunto pelo Forschungszentrum Jülich e pela Universidade Heinrich Heine de Düsseldorf (HHU).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Bruker 600 MHz AVANCE III HD spectrometer | Bruker | https://www.bruker.com/en/products-and-solutions/mr/nmr/avance-nmr-spectrometer.html | NMR experiments conducted |
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