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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Repräsentative Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

In diesem Artikel beschreiben wir Methoden zur Charakterisierung der Fähigkeit eines Enzyms, seine Funktion beizubehalten, wenn es bei 37 °C in menschlichem Serum inkubiert wird, eine pharmakologische Eigenschaft, die als Serumstabilität bezeichnet wird. Diese Fähigkeit kann ein Schlüsselfaktor bei der Vorhersage des pharmakokinetischen Profils eines Enzyms und seiner Eignung für den therapeutischen Einsatz sein.

Zusammenfassung

Das Konzept der Enzymstabilität wird in der Regel verwendet, um sich auf die Thermostabilität eines Enzyms zu beziehen - seine Fähigkeit, Struktur und Aktivität bei steigender Temperatur beizubehalten. Für ein therapeutisches Enzym können auch andere Stabilitätsmaße entscheidend sein, insbesondere seine Fähigkeit, die Funktion im menschlichen Serum bei 37 °C beizubehalten, was wir als Serumstabilität bezeichnen. In dieser Arbeit beschreiben wir einen in vitro Assay zur Beurteilung der Serumstabilität des Wildtyp-Enzyms Homo sapiens Adenosin-Deaminase I (HsADA1) unter Verwendung eines absorptionsbasierten Mikroplattenverfahrens. Insbesondere beschreibt dieses Manuskript die Herstellung von Puffern und Reagenzien, ein Verfahren zur Anordnung der Koinkubation von HsADA1 im Serum, ein Verfahren zur Analyse der Testproben unter Verwendung eines Mikroplatten-Readers und eine begleitende Analyse zur Bestimmung des Anteils der Aktivität, den ein HsADA1-Enzym im Serum als Funktion der Zeit beibehält. Wir diskutieren ferner Überlegungen zur Anpassung dieses Protokolls an andere Enzyme, indem wir ein Beispiel eines Homo sapiens-Kynureninase-Enzyms verwenden, um die Anpassung des Protokolls an andere Enzyme zu unterstützen, bei denen die Serumstabilität von Interesse ist.

Einleitung

Die folgende Methode ermöglicht es einem Anwender, die Fähigkeit eines Enzyms, seine Aktivität aufrechtzuerhalten, quantitativ zu beurteilen, wenn es Bedingungen ausgesetzt wird, die dem entsprechen, was es nach einer intravenösen Injektion vorfinden wird. Die In-vitro-Methode ahmt solche in vivo-Bedingungen nach und besteht aus der Inkubation des Enzyms in gepooltem Humanserum bei 37 °C und zeitlichen Analysen der Beibehaltung der Enzymaktivität. Wir bezeichnen die Fähigkeit eines Enzyms, die Aktivität unter diesen Bedingungen aufrechtzuerhalten, als seine Serumstabilität, und die Analysemethode für die Enzymaktivit....

Protokoll

1. Inkubation im Serum

  1. Bereiten Sie eine 10-fache Brühe HsADA1 in 1x PBS pH 7,4 (1x PBS) in einer Endkonzentration von 10 μM vor. Tauen Sie ein 15-ml-Aliquot des gepoolten Humanserums auf und erwärmen Sie es auf 37 °C. Erwärmen Sie ein 50 mL aliquot von 1x PBS auf 37 °C.
  2. Bereiten Sie die Enzym-Serum-Inkubationsgemische vor, indem Sie 100 μl des 10x HsADA1-Stammes zu 900 μl gepooltem Humanserum in einem Mikrozentrifugenröhrchen mit geringer Bindung hinzufügen, das als Enzym + Serum-Mischung bezeichnet wird. Geben Sie in einem separaten Mikrozentrifugenröhrchen mit geringer Bindung 100 μl des 10x Hs....

Repräsentative Ergebnisse

Die Abbildungen zeigen die Ergebnisse des Assay-Laufs, der mit Wildtyp-HsADA1 durchgeführt wurde. Abbildung 3A,B zeigt die Absorptionsabfallkurven bei 260 nm der Proben, die aus den 1x PBS/Serum-Enzym-Gemischen für Wildtyp HsADA1 nach Zugabe von Adenosin stammen. Diese abnehmende Absorption in Abhängigkeit von den Zeitdaten ist das, was der Benutzer nach erfolgreichem Abschluss des Mikroplatten-basierten Assays erwarten kann und ähnelt d.......

Diskussion

Dieses Protokoll verwendet die Absorptionsänderung, wenn das Substrat in das Produkt umgewandelt wird, um die Aktivität eines Enzyms zu messen. Daher müssen das Substrat und das Produkt unterschiedliche spektrale Profile aufweisen. Dies ist der Fall bei Adenosin und Inosin, die beide unterschiedliche spektrale Profile und Extinktionskoeffizienten zwischen 260-265 nmaufweisen 6,8,12,13.

Offenlegungen

JB und MRJ sind Erfinder von Patenten oder Patentanmeldungen im Zusammenhang mit Adenosin-Deaminase- und/oder Kynureninase-Enzymen. Alle anderen Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von den National Institutes of Health [1DP2CA280622-01] unterstützt und von Biolocity finanziert. Wir danken Dr. Maria Jennings und Andrea Fox für die Bereitstellung der HsADA1- und HsKYNase-Expressionsvektoren.

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Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
Adenosine Sigma AldrichA9251-25G25 g
BioTek Synergy HT Microplate Reader
Eppendorf LoBind Microcentrifuge Tubes: Protein Fisher Scientific 13-698-7952 mL
GlycerolFisher Scientific G33-44 L
HsKYNase66-W102H-T333NIn-house
Human Serum, PooledMP Biomedicals92931149100 mL
Hydroxy-kynurenineCayman Chemicals27778
Inosine TCII003725 g
PBS, 1x  pH 7.4+/- 0.1Corning21-040-CM
Pyridoxal 5-phosphate monohydrate, 99% Thermo Scientifc2281700101 g
UV-STAR MICROPLATE, 96 WELL, COC, F-BOTTOMGreiner Bio 655801
Wildtype Human Adenosine Deaminase 1In-house

Referenzen

  1. Valero, J., et al. A serum-stable RNA aptamer specific for SARS-COV-2 neutralizes viral entry. Proc Natl Acad Sci U S A. 118 (50), e2112942118 (2021).
  2. Iannuzo, N., et al.

Nachdrucke und Genehmigungen

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