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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Dans cet article, nous détaillons des méthodes pour caractériser la capacité d’une enzyme à conserver sa fonction lorsqu’elle est incubée à 37 °C dans le sérum humain, une propriété pharmacologique appelée stabilité sérique. Cette capacité peut être un facteur clé dans la prédiction du profil pharmacocinétique d’une enzyme et de son aptitude à un usage thérapeutique.

Résumé

Le concept de stabilité enzymatique est généralement utilisé pour faire référence à la thermostabilité d’une enzyme, c’est-à-dire à sa capacité à conserver sa structure et son activité lorsque la température augmente. Pour une enzyme thérapeutique, d’autres mesures de stabilité peuvent également être critiques, en particulier sa capacité à conserver sa fonction dans le sérum humain à 37 °C, ce que nous appelons la stabilité sérique. Ici, nous décrivons un test in vitro pour évaluer la stabilité sérique de l’enzyme sauvage Homo sapiens adénosine désaminase I (HsADA1) à l’aide d’une procédure de microplaque basée sur l’absorbance. Plus précisément, ce manuscrit décrit la préparation de tampons et de réactifs, une méthode d’organisation de la coïncubation de HsADA1 dans le sérum, une méthode d’analyse des échantillons de test à l’aide d’un lecteur de microplaques et une analyse d’accompagnement pour déterminer la fraction d’activité qu’une enzyme HsADA1 conserve dans le sérum en fonction du temps. Nous discutons plus en détail des considérations visant à adapter ce protocole à d’autres enzymes, en utilisant l’exemple d’une enzyme kynurénase Homo sapiens , afin d’aider à l’adaptation du protocole à d’autres enzymes où la stabilité sérique est intéressante.

Introduction

La méthode suivante permet à un utilisateur d’évaluer quantitativement la capacité d’une enzyme à conserver son activité lorsqu’elle est exposée à des conditions qui imitent ce qu’elle rencontrera après une injection intraveineuse. La méthode in vitro imite de telles conditions in vivo et consiste en l’incubation de l’enzyme dans du sérum humain groupé à 37 °C et des analyses chronologiques de la rétention de l’activité enzymatique. Nous nous référons à la capacité d’une enzyme à conserver son activité dans ces conditions comme sa stabilité sérique, et la méthode d’analyse de l’activité enzymatique tire parti des dif....

Protocole

1. Incubation sérique

  1. Préparez une quantité 10x de HsADA1 dans 1x PBS pH 7,4 (1x PBS) à une concentration finale de 10 μM. Décongelez une aliquote de 15 mL de sérum humain mélangé et préchauffez-la à 37 °C. Préchauffer une aliquote de 50 mL de 1x PBS à 37 °C.
  2. Préparez les mélanges d’incubation enzyme-sérum en ajoutant 100 μL de la matrice 10x HsADA1 à 900 μL de sérum humain mélangé dans un tube de microcentrifugation à faible liaison, appelé mélange enzyme + sérum. Dans un tube de microcentrifugation séparé à faible liaison, ajoutez 100 μL de la matrice 10x HsADA1 à 900 μL de 1x PBS pour comparais....

Résultats Représentatifs

Les figures montrent les résultats de l’analyse lorsqu’elle a été menée avec HsADA1 de type sauvage. Les figures 3A et B illustrent les courbes de baisse de l’absorbance à 260 nm des échantillons provenant des mélanges 1x PBS/sérum et enzymes pour HsADA1 de type sauvage après ajout d’adénosine. Cette absorbance décroissante en fonction des données temporelles est ce à quoi l’utilisateur peut s’attendre une fois le te.......

Discussion

Ce protocole utilise le changement d’absorbance lorsque le substrat est converti en produit pour évaluer l’activité d’une enzyme. En tant que tels, le substrat et le produit doivent avoir des profils spectraux distincts. C’est le cas de l’adénosine et de l’inosine ayant toutes deux des profils spectraux distincts et des coefficients d’extinction compris entre 260 et 265 nm 6,8,12,13........

Déclarations de divulgation

JB et MRJ sont des inventeurs de brevets ou de demandes de brevets liés aux enzymes adénosine désaminase et/ou kynurénase. Tous les autres auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par les National Institutes of Health [1DP2CA280622-01] et financé par Biolocity. Nous remercions la Dre Maria Jennings et Andrea Fox d’avoir fourni les vecteurs d’expression HsADA1 et HsKYNase.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
Adenosine Sigma AldrichA9251-25G25 g
BioTek Synergy HT Microplate Reader
Eppendorf LoBind Microcentrifuge Tubes: Protein Fisher Scientific 13-698-7952 mL
GlycerolFisher Scientific G33-44 L
HsKYNase66-W102H-T333NIn-house
Human Serum, PooledMP Biomedicals92931149100 mL
Hydroxy-kynurenineCayman Chemicals27778
Inosine TCII003725 g
PBS, 1x  pH 7.4+/- 0.1Corning21-040-CM
Pyridoxal 5-phosphate monohydrate, 99% Thermo Scientifc2281700101 g
UV-STAR MICROPLATE, 96 WELL, COC, F-BOTTOMGreiner Bio 655801
Wildtype Human Adenosine Deaminase 1In-house

Références

  1. Valero, J., et al. A serum-stable RNA aptamer specific for SARS-COV-2 neutralizes viral entry. Proc Natl Acad Sci U S A. 118 (50), e2112942118 (2021).
  2. Iannuzo, N., et al.

Réimpressions et Autorisations

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