Isolement et culture de macrophages synoviaux primaires et de fibroblastes à partir de tissus arthritiques murins

Résumé

La présente étude fournit un protocole modifié pour isoler les macrophages synoviaux et les fibroblastes du tissu arthritique inflammatoire murin.

Résumé

La polyarthrite rhumatoïde est une maladie auto-immune qui entraîne une inflammation chronique des articulations. Les macrophages synoviaux et les fibroblastes synoviaux jouent un rôle central dans la pathogenèse de la polyarthrite rhumatoïde. Il est important de comprendre les fonctions des deux populations cellulaires pour révéler les mécanismes sous-jacents à la progression pathologique et à la rémission de l’arthrite inflammatoire. En général, les conditions expérimentales in vitro devraient imiter autant que possible l’environnement in vivo . Des cellules dérivées de tissus primaires ont été utilisées dans des expériences caractérisant les fibroblastes synoviaux dans l’arthrite. En revanche, dans les expériences portant sur les fonctions biologiques des macrophages dans l’arthrite inflammatoire, des lignées cellulaires, des macrophages dérivés de la moelle osseuse et des macrophages dérivés de monocytes sanguins ont été utilisés. Cependant, il n’est pas clair si ces macrophages reflètent réellement les fonctions des macrophages résidant dans les tissus. Pour obtenir des macrophages résidents, les protocoles précédents ont été modifiés pour isoler et développer à la fois les macrophages primaires et les fibroblastes du tissu synovial dans un modèle murin d’arthrite inflammatoire. Ces cellules synoviales primaires peuvent être utiles pour l’analyse in vitro de l’arthrite inflammatoire.

Introduction

La polyarthrite rhumatoïde (PR) est une maladie auto-immune caractérisée par une hyperplasie de la synoviale, entraînant une destruction articulaire ^1,2. Les macrophages et les fibroblastes résidant dans les tissus sont présents dans la synoviale saine pour maintenir l’homéostasie articulaire. Chez les patients atteints de PR, les fibroblastes synoviaux (SF) prolifèrent et les cellules immunitaires, y compris les monocytes, s’infiltrent dans la synoviale et le liquide articulaire, processus associés à l’inflammation ^1,3,4

Protocole

Les expériences impliquant des animaux ont été approuvées par le Comité de l’expérimentation animale de l’Université d’Ehime et ont été réalisées conformément aux directives de l’Université d’Ehime pour l’expérimentation animale (37A1-1 * 16).

1. Préparation des instruments, des réactifs et du milieu de culture

1. Préparer le milieu de culture comme suit: compléter le milieu aigle modifié (DMEM) de Dulbecco avec 10% de sérum bovin fœtal (FBS) et 1% de solution antibiotique-antimycotique (anti-anti-anti).
2. Préparer le milieu de digestion comme suit : compléter le milieu de culture avec 1 mg/mL de collagénase ....

Discussion

Cette méthode développée ici améliore les techniques précédentes pour isoler à la fois les SF de l’arthrite murine et les macrophages résidents d’un certain nombre d’organes ^7,11. La méthode modifiée peut isoler à la fois les macrophages et les fibroblastes de la synoviale inflammatoire avec une grande pureté, et elle est simple et reproductible. Étant donné que la méthode ne nécessite pas d’instruments complexes tels qu’un trieur de cel.......

matériels

Name	Company	Catalog Number	Comments
5.0 g/L Trypsin/5.3 mmol/L EDTA solution	nacalai tesque	35556-44	Diluted with HBSS
Antibiotic–antimycotic (anti/anti)	Gibco	15240-062
Butterfly needle	TERUMO	SV-23DLK	23G
Cell strainer	Falcon	352340	40 µm pore, Nylon
Cellmatrix Type I-C	Nitta gelatin	637-00773	Type I-C collagen
Centriguge tube 15	TPP	91014	15 mL tube
Centriguge tube 50	TPP	91050	50 mL tube
Collagenase from C. Histolyticum	Sigma	C5138	Type IV collagenase
Dulbecco’s Modified Eagle Medium GlutaMax (DMEM)	Gibco	10569-010
Fetal bovine serum (FBS)	SIGAM	173012	Heat inactivation was performed
Hanks' balanced salt solution (HBSS)	Wako	085-09355
Scissors	Bio Research Center	PRI28-1525A
Tissue culture dish 40	TPP	93040	For cell culture
Tissue culture dish 60	TPP	92006	For cell culture
Tweezers	KFI	1-9749-31	Fine-point
Tweezers	Bio Research Center	PRI28-1522	Serrated tip
ZEISS Stemi 305	ZEISS	STEMI305-EDU	Stereomicroscope