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* Ces auteurs ont contribué à parts égales
Nous décrivons ici des méthodes pour induire et analyser le remodelage dépendant de l’expérience olfactive des glomérules synaptiques du lobe antennaire dans le cerveau juvénile de la drosophile .
L’expérience sensorielle olfactive au début de la vie induit un remodelage synaptique spectaculaire des glomérules dans le cerveau juvénile de la drosophile , qui dépend de la dose par l’expérience, est limité dans le temps et ne peut être réversible que pendant une période critique courte et bien définie. La directionnalité du remodelage de la connectivité synaptique des circuits cérébraux est déterminée par l’odorant spécifique agissant sur la classe de récepteurs des neurones sensoriels olfactifs répondants. En général, chaque classe de neurones n’exprime qu’un seul récepteur odorant et innerve un seul glomérule synaptique olfactif. Dans le modèle génétique de la drosophile , l’ensemble des glomérules olfactifs a été cartographié avec précision par la réactivité aux odeurs et la production comportementale. L’odorisant au butyrate d’éthyle (EB) active les neurones récepteurs Or42a, innervant le glomérule VM7. Au cours de la période critique au début de la vie, l’expérience de l’EB entraîne l’élimination des synapses dose-dépendantes dans les neurones sensoriels olfactifs Or42a. Des périodes chronométrées d’exposition à l’odorant EB dosé permettent d’étudier l’élagage de la connectivité des circuits dépendant de l’expérience dans le cerveau juvénile. L’imagerie par microscopie confocale des glomérules synaptiques du lobe antennaire est réalisée à l’aide de marqueurs transgéniques pilotés par le récepteur Or42a qui permettent de quantifier le nombre de synapses et le volume d’innervation. La boîte à outils génétique sophistiquée de la drosophile permet la dissection systématique des mécanismes cellulaires et moléculaires qui interviennent dans le remodelage des circuits cérébraux.
Le remodelage des circuits cérébraux juvéniles au cours de la vie représente la dernière chance pour des changements de connectivité synaptique à grande échelle pour correspondre à l’environnement hautement variable et imprévisible dans lequel un animal naît. En tant que groupe d’animaux le plus abondant, les insectes partagent ce mécanisme fondamental de remodelage de la période critique conservé au cours de l’évolution1. Les périodes critiques s’ouvrent avec l’apparition de l’entrée sensorielle, présentent des changements de circuit réversibles pour optimiser la connectivité, puis se ferment lorsque les force....
1. Exposition aux substances odorantes
La figure 1 montre le flux de travail des méthodes d’exposition aux odorants pendant la période critique dépendante de l’expérience olfactive et d’imagerie cérébrale. Le protocole commence par l’appariement de l’âge des pupes sombres du pharate immédiatement avant l’éclosion (figure 1A). Les pupes sont placées dans des chambres odorantes pendant 4 heures, puis les adultes nouvellement fermés sont retourné.......
Le protocole d’exposition aux odeurs et d’imagerie cérébrale présenté ici peut être utilisé pour induire et quantifier de manière fiable l’élagage des glomérules synaptiques des neurones sensoriels olfactifs dépendant de l’expérience au cours d’une période critique au début de la vie. Des études antérieures utilisant ce paradigme de traitement pour explorer le remodelage du circuit olfactif ont commencé l’exposition aux odeurs le 2èmejour après l?.......
Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.
Nous remercions les autres membres du Broadie Lab pour leur précieuse contribution. Les figurines ont été créées à l’aide de BioRender.com. Ce travail a été soutenu par des subventions du National Institute of Health MH084989 et NS131557 à K.B.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
For Odor Exposure | |||
Drosophila vials | Genesee Scientific | 32-110 | |
Ethyl butyrate | Sigma Aldrich | E15701 | |
Microcentrifuge tubes | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
Mineral oil | Sigma Aldrich | M3516 | |
Odor chambers | Glasslock | ||
Paint brushes | Winsor & Newton | Series 233 | |
Parafilm | Thermofisher | S37440 | |
Wire mesh | Scienceware | 378460000 | |
Brain Dissection | |||
Ethanol, 190 proof | Decon Labs | 2801 | Diluted to 70% |
Forceps | Fine Science Tools | 11251-30 | Dumont #5 |
Paraformaldehyde | Electron Microscope Sciences | 157-8 | Diluted to 4% |
Petri dishes | Fisher Scientific | 08-757-100B | |
Phosphate-buffered saline | Thermo Fisher Scientific | 70011-044 | Diluted to 1x |
Sucrose | Fisher Scientific | BP220-1 | |
Sylgard | Electron Microscope Sciences | 24236-10 | |
Triton-X 100 | Fisher Scientific | BP151-100 | |
Brain Immunocytochemistry | |||
488 goat anti-chicken | Invitrogen | A11039 | |
546 goat anti-rat | Invitrogen | A11081 | |
Bovine serum albumin | Sigma Aldrich | A9647 | |
Chicken anti-GFP | Abcam | 13970 | |
Coverslips | Avantor | 48366-067 | 25 x 25 mm |
Double-sided tape | Scotch | 34-8724-5228-8 | |
Fluoromount-G | Electron Microscope Sciences | 17984-25 | |
Microscope slides | Fisher Scientific | 12-544-2 | 75 x 25 mm |
Nail polish | Sally Hansen | 109 | Xtreme Wear, Invisible |
Normal goat serum | Sigma Aldrich | G9023 | |
Rat anti-CadN | Developmental Studies Hybridoma Bank | AB_528121 | |
Confocal/Analysis | |||
Any computer/laptop | |||
Confocal microscope | Carl Zeiss | Zeiss 510 META | |
Fiji software | Fiji | Version 2.14.0/1.54f |
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