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* Questi autori hanno contribuito in egual misura
Descriviamo qui i metodi per indurre e analizzare il rimodellamento olfattivo dipendente dall'esperienza dei glomeruli sinaptici del lobo antennale nel cervello giovanile di Drosophila .
L'esperienza sensoriale olfattiva precoce induce un drammatico rimodellamento dei glomeruli sinaptici nel cervello giovanile di Drosophila , che è esperienzialmente dose-dipendente, temporalmente limitato e transitoriamente reversibile solo in un breve periodo critico ben definito. La direzionalità del rimodellamento della connettività sinaptica del circuito cerebrale è determinata dall'odorante specifico che agisce sulla classe di recettori rispondenti dei neuroni sensoriali olfattivi. In generale, ogni classe di neuroni esprime un solo recettore olfattivo e innerva un singolo glomerulo sinaptico olfattivo. Nel modello genetico di Drosophila , l'intera gamma di glomeruli olfattivi è stata mappata con precisione dalla risposta agli odori e dall'output comportamentale. L'odorizzante etilbutirrato (EB) attiva i neuroni del recettore Or42a che innervano il glomerulo VM7. Durante il primo periodo critico della vita, l'esperienza dell'EB guida l'eliminazione delle sinapsi dose-dipendenti nei neuroni sensoriali olfattivi Or42a. Periodi temporizzati di esposizione all'odorizzante EB dosato consentono di studiare la potatura della connettività circuitale dipendente dall'esperienza nel cervello giovanile. L'imaging al microscopio confocale dei glomeruli sinaptici del lobo antennale viene eseguito con marcatori transgenici guidati dal recettore Or42a che forniscono la quantificazione del numero di sinapsi e del volume di innervazione. Il sofisticato kit di strumenti genetici per la Drosophila consente la dissezione sistematica dei meccanismi cellulari e molecolari che mediano il rimodellamento dei circuiti cerebrali.
Il rimodellamento dei circuiti cerebrali giovanili durante i primi anni di vita rappresenta l'ultima possibilità per cambiamenti di connettività sinaptica su larga scala per adattarsi all'ambiente altamente variabile e imprevedibile in cui un animale nasce. Essendo il gruppo di animali più abbondante, gli insetti condividono questo meccanismo di rimodellamento del periodo critico fondamentalee conservato dal punto di vista evolutivo 1. I periodi critici si aprono con l'inizio dell'input sensoriale, mostrano cambiamenti reversibili del circuito per ottimizzare la connettività e poi si chiudono quando le forze di....
1. Esposizione agli odori
La Figura 1 mostra il flusso di lavoro per l'esposizione agli odori del periodo critico dipendente dall'esperienza olfattiva e i metodi di imaging cerebrale. Il protocollo inizia con l'abbinamento per età delle pupe scure del farato immediatamente prima dell'eclosion (Figura 1A). Le pupe vengono poste in camere odorizzanti per 4 ore, quindi gli adulti appena chiusi vengono capovolti in fiale fresche nel controllo del veicolo o .......
Il protocollo di esposizione agli odori e di imaging cerebrale qui presentato può essere utilizzato per indurre e quantificare in modo affidabile la potatura dei glomeruli sinaptici dei neuroni sensoriali olfattivi dipendenti dall'esperienza durante un periodo critico precoce della vita. Studi precedenti che utilizzavano questo paradigma di trattamento per esplorare il rimodellamento del circuito olfattivo hanno iniziato l'esposizione agli odori il 2° giorno dopo l'eclosion<.......
Gli autori dichiarano di non avere interessi concorrenti.
Ringraziamo gli altri membri del Broadie Lab per il loro prezioso contributo. Le figure sono state create utilizzando BioRender.com. Questo lavoro è stato sostenuto dalle sovvenzioni del National Institute of Health MH084989 e NS131557 a K.B.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
For Odor Exposure | |||
Drosophila vials | Genesee Scientific | 32-110 | |
Ethyl butyrate | Sigma Aldrich | E15701 | |
Microcentrifuge tubes | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
Mineral oil | Sigma Aldrich | M3516 | |
Odor chambers | Glasslock | ||
Paint brushes | Winsor & Newton | Series 233 | |
Parafilm | Thermofisher | S37440 | |
Wire mesh | Scienceware | 378460000 | |
Brain Dissection | |||
Ethanol, 190 proof | Decon Labs | 2801 | Diluted to 70% |
Forceps | Fine Science Tools | 11251-30 | Dumont #5 |
Paraformaldehyde | Electron Microscope Sciences | 157-8 | Diluted to 4% |
Petri dishes | Fisher Scientific | 08-757-100B | |
Phosphate-buffered saline | Thermo Fisher Scientific | 70011-044 | Diluted to 1x |
Sucrose | Fisher Scientific | BP220-1 | |
Sylgard | Electron Microscope Sciences | 24236-10 | |
Triton-X 100 | Fisher Scientific | BP151-100 | |
Brain Immunocytochemistry | |||
488 goat anti-chicken | Invitrogen | A11039 | |
546 goat anti-rat | Invitrogen | A11081 | |
Bovine serum albumin | Sigma Aldrich | A9647 | |
Chicken anti-GFP | Abcam | 13970 | |
Coverslips | Avantor | 48366-067 | 25 x 25 mm |
Double-sided tape | Scotch | 34-8724-5228-8 | |
Fluoromount-G | Electron Microscope Sciences | 17984-25 | |
Microscope slides | Fisher Scientific | 12-544-2 | 75 x 25 mm |
Nail polish | Sally Hansen | 109 | Xtreme Wear, Invisible |
Normal goat serum | Sigma Aldrich | G9023 | |
Rat anti-CadN | Developmental Studies Hybridoma Bank | AB_528121 | |
Confocal/Analysis | |||
Any computer/laptop | |||
Confocal microscope | Carl Zeiss | Zeiss 510 META | |
Fiji software | Fiji | Version 2.14.0/1.54f |
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