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Ici, un protocole pour doser les enzymes métabolisant les acides nucléiques est présenté, à l’aide d’exemples d’enzymes ligase, nucléase et polymérase. Le test utilise des oligonucléotides marqués par fluorescence et non marqués qui peuvent être combinés pour former des duplex imitant les dommages à l’ARN et/ou à l’ADN ou les intermédiaires de voie, permettant la caractérisation du comportement enzymatique.
La disponibilité d’une gamme d’oligonucléotides synthétiques modifiés auprès de fournisseurs commerciaux a permis la mise au point de tests sophistiqués pour caractériser diverses propriétés des enzymes métabolisantes des acides nucléiques qui peuvent être exécutés dans n’importe quel laboratoire de biologie moléculaire standard. L’utilisation d’étiquettes fluorescentes a rendu ces méthodes accessibles aux chercheurs disposant d’un équipement d’électrophorèse PAGE standard et d’un imageur fluorescent, sans utiliser de matières radioactives ni nécessiter un laboratoire conçu pour le stockage et la préparation de matières radioactives, c’est-à-dire un laboratoire chaud. L’ajout facultatif de modifications standard telles que la phosphorylation peut simplifier la configuration du test, tandis que l’incorporation spécifique de nucléotides modifiés qui imitent les dommages à l’ADN ou les intermédiaires peut être utilisée pour sonder des aspects spécifiques du comportement enzymatique. Ici, la conception et l’exécution de tests pour interroger plusieurs aspects du traitement de l’ADN par des enzymes à l’aide d’oligonucléotides synthétiques disponibles dans le commerce sont démontrées. Il s’agit notamment de la capacité des ligases à se joindre ou des nucléases à dégrader différentes structures hybrides d’ADN et d’ARN, de l’utilisation différentielle de cofacteurs par l’ADN ligase et de l’évaluation de la capacité de liaison à l’ADN des enzymes. Les facteurs à prendre en compte lors de la conception de substrats nucléotidiques synthétiques sont discutés, et un ensemble de base d’oligonucléotides pouvant être utilisés pour une gamme de dosages de ligase d’acide nucléique, de polymérase et d’enzymes nucléases est fourni.
Toutes les formes de vie ont besoin d’enzymes de traitement des acides nucléiques pour mener à bien les processus biologiques fondamentaux, notamment la réplication, la transcription et la réparation de l’ADN. Les principales fonctionnalités enzymatiques de ces voies sont les polymérases, qui génèrent des copies de molécules d’ARN/ADN, les ligases qui se joignent aux substrats polynucléotidiques, les nucléases qui les dégradent, et les hélicases et topoisomérases, qui font fondre les duplex d’acide nucléique ou modifient leur topologie 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10
1. Conception et achat d’oligonucléotides
REMARQUE : Concevez des oligonucléotides monobrin à assembler et à recuire dans les duplex souhaités. Un ou plusieurs des brins d’un duplex doivent porter une fraction fluorescente pour suivre le traitement des oligonucléotides par l’enzyme d’intérêt. Le tableau 1 présente un ensemble de base de séquences monocaténaires pouvant être assemblées pour une gamme d’activités.
Ligature par l’ADN ligase
L’activité enzymatique de l’ADN ligase entraînera une augmentation de la taille de l’oligonucléotide marqué par fluorescence lorsqu’elle est visualisée sur un gel d’urée PAGE. Dans le cas des substrats pour la ligature de l’ADN et de l’ARN énumérés dans le tableau 2, cela correspond à un doublement de la taille de 20 nt à 40 nt (figure 3A). L’activité enzymatique optimale peut être déterminée par .......
Étapes critiques du protocole
Conception et achat d’oligonucléotides : Lors de l’achat d’oligonucléotides pour la formation duplex, il est essentiel de prendre en compte la conception de séquences. Il est recommandé d’utiliser un outil d’analyse d’oligonucléotides pour prédire les propriétés de la séquence nucléotidique, telles que la teneur en GC, la température de fusion, la structure secondaire et le potentiel de dimérisation, avant d’en commander57
SEG et UR sont des employés d’ArcticZymes Technologies AS qui distribue la R2D ligase. AW, ER-S et RS n’ont pas d’intérêts concurrents.
AW est soutenu par une bourse de découverte Rutherford (20-UOW-004). RS est le récipiendaire d’une bourse d’études de la Nouvelle-Zélande après l’Antarctique. SG et UR remercient l’Institut de chimie de l’Université de Tromsø - l’Université norvégienne de l’Arctique pour son soutien technique.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
30% Acrylamide/Bis Solution (29:1) | BioRad | 1610156 | |
Adenosine triphosphate (ATP) | Many suppliers | ||
Ammonium persulfate (APS) | Many suppliers | ||
Benchtop centrifuge | Many suppliers | ||
Borate | Many suppliers | ||
Bromophenol blue | Many suppliers | ||
Dithiothreitol (DTT) | Many suppliers | ||
Electrophoresis system with circulating water bath | Many suppliers | ||
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Many suppliers | ||
Fluoresnence imager, e.g. iBright FL1000 | Thermo Fisher Scientific | A32752 | |
Formamide | Many suppliers | ||
Gel casting system | Many suppliers | ||
Heating block | Many suppliers | ||
Magnesium Chloride | Many suppliers | Other metal ions may be preferred depending on the protein studied | |
Microcentrifuge tubes (1.5 mL) | Many suppliers | ||
Micropipettes and tips | Many suppliers | 1 mL, 0.2 mL, 0.02 mL, 0.002 mL | |
Nicotinamide adenine dinucleotide (NAD+) | Many suppliers | ||
Oligonucleotides | Integrated DNA Technologies | NA | Thermo Fisher, Sigma-Aldrich, Genscript and others also supply these |
pasture pipette | Many suppliers | ||
PCR thermocycler | Many suppliers | ||
PCR tubes | Many suppliers | ||
RNAse away | ThermoFisher | 7002PK | Only needed when working with RNA oligos |
RNase AWAY | Merck | 83931-250ML | Surfactant for removal of RNAse contamination on surfaces |
RNAse-free water | New England Biolabs | B1500L | Only needed when working with RNA oligos |
Sodium Chloride | Many suppliers | ||
SUPERase IN RNase inhibitor | Thermo Fisher Scientific | AM2694 | Broad spectrum RNAse inhibitir (protein-based) |
SYBR Gold | Thermo Fisher Scientific | S11494 | This may be used to post-stain gels and visualise unlabelled oligonucleotides |
Tetramethylethylenediamine (TMED) | Many suppliers | ||
Tris, or tris(hydroxymethyl)aminomethane | Many suppliers | ||
Ultrapure water (Milli-Q) | Merck | ||
urea | Many suppliers | ||
Vortex | Many suppliers |
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