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Il protocollo presenta un nuovo strumento per semplificare l'imaging intravitale utilizzando la microscopia confocale invertita.
Comprendere i comportamenti cellulari normali e aberranti in vivo è necessario per sviluppare interventi clinici per contrastare l'inizio e la progressione della malattia. È quindi fondamentale ottimizzare gli approcci di imaging che facilitano l'osservazione della dinamica cellulare in situ, dove la struttura e la composizione del tessuto rimangono imperturbate. L'epidermide è la barriera più esterna del corpo, nonché la fonte dei tumori umani più diffusi, vale a dire i carcinomi cutanei cutanei. L'accessibilità del tessuto cutaneo rappresenta un'opportunità unica per monitorare i comportamenti delle cellule epiteliali e dermiche in animali intatti utilizzando la microscopia intravitale non invasiva. Tuttavia, questo sofisticato approccio di imaging è stato realizzato principalmente utilizzando microscopi multifotoni verticali, che rappresentano una barriera significativa per l'ingresso per la maggior parte dei ricercatori. Questo studio presenta un inserto per microscopio stampato in 3D progettato su misura adatto per l'uso con microscopi confocali invertiti, semplificando l'imaging intravitale a lungo termine della pelle dell'orecchio in topi transgenici vivi. Riteniamo che questa invenzione versatile, che può essere personalizzata per adattarsi alla marca e al modello di microscopio invertito scelto e adattata per visualizzare sistemi di organi aggiuntivi, si rivelerà preziosa per la più ampia comunità di ricerca scientifica migliorando significativamente l'accessibilità della microscopia intravitale. Questo progresso tecnologico è fondamentale per rafforzare la nostra comprensione delle dinamiche delle cellule vive in contesti normali e patologici.
La microscopia intravitale è un potente strumento che consente il monitoraggio dei comportamenti delle cellule nei loro ambienti imperturbati in vivo. Questo metodo unico ha fornito informazioni chiave sul funzionamento interno di complessi sistemi di organi dei mammiferi, tra cui il polmone1, il cervello2, il fegato3, la ghiandola mammaria4, l'intestino5 e la pelle6. Inoltre, questo approccio ha rivelato alterazioni comportamentali cellulari durante lo sviluppo del tumore7, la guarigione delle....
Questa ricerca è stata eseguita in conformità con le linee guida per la cura e l'uso degli animali della Emory University e dell'Atlanta Veterans Affairs Medical Center ed è stata approvata dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC).
1. Installazione dell'inserto per imaging dal vivo sul tavolino del microscopio invertito
Il corretto assemblaggio dell'inserto di imaging dal vivo su un microscopio confocale invertito e l'orientamento appropriato di un topo transgenico in cima all'inserto sono convalidati acquisendo pile z di tessuto dell'orecchio vivo marcato con fluorescenza in un corso di tempo ≥1 ora con evidenza minima di deriva negli assi x, y e z. Le immagini devono essere acquisite a intervalli coerenti (il tempo di intervallo dipenderà dalla domanda biologica, dalla forza del segnale di fluorescenza, ecc.) in modo che la dinamic.......
In questo studio, presentiamo un nuovo strumento che facilita l'imaging intravitale stabile e a lungo termine di epiteli cutanei di topo intatti su microscopi confocali invertiti. Questa invenzione è realizzata in PLA, che è il materiale stampabile in 3D più comune ed economico; tutti i costi di stampa 3D interni per questo inserto ammontano a < $ 5. I due pezzi separati dell'inserto (Figura 1, File supplementare 1 e File supplementare 2) possono essere f.......
Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.
Ringraziamo Valentina Greco per i topi K14-mCherry-H2B. Siamo grati alla Emory University Physics Department Machine Shop per aver generato i dischi coprioggetti in vetro. Questo lavoro è stato finanziato dal Career Development Award #IK2 BX005370 dal Dipartimento degli Affari dei Veterani degli Stati Uniti BLRD Service a LS, NIH Awards RF1-AG079269 e R56-AG072473 a MJMR e I3 Emory SOM / GT Computational and Data Analysis Award a MJMR.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
3D Printer | Qudi Tech | i-Fast | 3D prints using PLA material |
40x 1.25NA silicone objective lens | Nikon | ||
AxR Laser Scanning Confocal Microscope | Nikon | ||
Cotton Tipped Swab | VWR | 76337-046 | Cream/ointment application |
Doxycycline hyclate | Sigma-Aldrich | D9891 | Induces GFP labeling of fibroblast nuclei in Pdgfra-rtTA; pTRE-H2B-GFP mice |
Flathead Screwdriver (2.5 mm) | Affiix insert to microscope stage | ||
Flathead Screws x 4 (#6-32) | Nikon | Screw insert into microscope stage | |
Glass Bottom Culture Dish | chemglass Life Sciences | CLS-1811-002 | Modified by removing walls of dish for use as coverslip disk compatible with live insert; 35 mm wide disk contains 20 mm wide glass coverslip; dish walls were removed by machine shop |
Heat Plate controller | Physitemp | TCAT-2LV | Animal Temperature Controller - Low Voltage; anal prob attachment for mouse body temperature monitoring |
Hex Wrench (1.5 mm) | For M3 setscrew adjustments | ||
Hex Wrench (2.5 mm) | Adjust tension on metal ear clip | ||
Intravital Imaging Insert | |||
Isoflurane | Med-Vet International | HPA030782-100uL | Mouse anesthesia |
Labeling Tape (or Scotch Tape) | VWR | 10127-458 | Alternative to metal ear clip to immobilize ear to coverslip |
Metal fastener | used as ear clip | ||
Mouse: C57BL/6-Pdgfraem1(rtTA)Xsun/J | The Jackson Laboratory | RRID: IMSR_JAX:034459 | Fibrroblast-specific promoter driving doxycycline-inducible rtTA expression |
Mouse: K14-H2BPAmCherry | Courtesy of Dr. Valentina Greco at Yale University | Labels epidermal epithelial cell nuclei with mCherry; referred to in text as "K14-H2B-mCherry" | |
Mouse: pTRE-H2B-GFP: STOCK Tg(tetO-HIST1H2BJ/GFP)47Efu/J | The Jackson Laboratory | RRID: IMSR_JAX:005104 | Labels fibroblast nuclei with GFP when combined with Pdgfra-rtTA and induced with doxycycline |
Multipurpose Sealing Wrap | Glad | Enhance mouse warmth | |
Optixcare | VWR | MSPP-078932779 | Eye lubricant |
Set screws x 3 (M3; 6 mm) | Thorlabs | SS3M6 | Attachment for heatplate module |
Silicone Immersion Oil | Applied to 40x silicone objective | ||
Small Animal Heating Plate | Physitemp | HP-4M | Provides heat to animal |
Somnoflow Low-Flow Electronic Vaporizer | Kent Scientific | SF-01 | Mouse anesthesia |
Vacuum Grease | Flinn Scientific | AP1095 | Seals coverslip disk to insert |
Veet | hair removal | ||
Water circulating heat pad | Stryker Medical | TP700 | for mouse revival post-imaging |
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