Method Article
Questo protocollo descrive la coltivazione in vitro del patogeno della sifilide Treponema pallidum subsp. pallidum in co-coltura con cellule di mammifero. Il metodo è scalabile; può essere utilizzato per produrre grandi quantità di T. pallidum e per generare colture clonali.
Per oltre un secolo, il Treponema pallidum subsp. pallidum, il batterio a forma di spirale che causa la sifilide, poteva essere propagato solo per inoculazione e raccolta degli organismi dai testicoli dei conigli. Nel 2018 abbiamo descritto un metodo per coltivare in modo continuativo T. pallidumin vitro. Questo sistema utilizza la co-coltura con cellule epiteliali di coniglio (cellule Sf1Ep) in un terreno di coltura tissutale contenente siero chiamato TpCM-2. Il tempo di raddoppio di T. pallidum in coltura è simile a quello stimato durante l'infezione naturale (circa 33-45 ore). L'organismo può essere coltivato in modo continuo con un tempo di passaggio standard di 1 settimana in un ambiente a basso contenuto di ossigeno (1,5%) a 34 °C. Questo articolo contiene i protocolli per la coltura di T. pallidum, i metodi per la crescita e il mantenimento delle cellule di coltura tissutale necessarie e la tecnica per generare ceppi isogenici limitando la diluizione. La capacità di coltivare T. pallidum in vitro fornisce nuove strade sperimentali per studiare e comprendere questo enigmatico organismo.
Il Treponema pallidum è una specie di batteri a forma di spirale (chiamati spirochete) che causa la sifilide e le infezioni correlate nell'uomo e in altri primati. La sifilide è una malattia grave con effetti a lungo termine su individui infetti e si stima che ogni anno si verifichino oltre 8 milioni di nuovi casi di sifilide in tutto ilmondo1. T. pallidum è stato suddiviso in tre sottospecie in base alle malattie che causano nell'uomo e a differenze genetiche minori: sottospecie pallidum (che causa la sifilide, malattia sessualmente trasmissibile), sottospecie pertenue (imbardata) e sottospecie endemicum (che causa bejel o sifilide endemica)2,3. T. pallidum subsp. pertenue causa anche infezioni in babbuini, scimpanzé e altri primati. Un organismo strettamente correlato chiamato Treponema paraluiscuniculi (chiamato anche Treponema paraluisleporidarum) provoca un'infezione nei conigli e nelle lepri 4,5. Tutti questi batteri sono strettamente correlati, con un'identità di sequenza del DNA superiore al 98% a livello del genoma 6,7,8. Ognuno di loro ha un singolo piccolo cromosoma circolare di circa 1,14 milioni di coppie di basi (Mb) di dimensioni. I membri di questo gruppo di T. pallidum si trovano solo in associazione con i loro ospiti mammiferi; In quanto tali, sono agenti patogeni obbligati che dipendono dalla loro specie ospite per la sopravvivenza e la crescita 9,10.
I tentativi di coltivare T. pallidum in vitro iniziarono poco dopo la sua identificazione da parte di Schaudinn e Hoffman nel 190511,12. Tuttavia, questi sforzi non sono riusciti a portare a una crescita costante e riproducibile dell'organismo. Di conseguenza, gli studi di ricerca su T. pallidum hanno richiesto la propagazione dell'organismo attraverso l'infezione sperimentale di animali da laboratorio, più comunemente il coniglio13,14. Nel 1981, Fieldsteel et al.15 introdussero un sistema di coltura tissutale che promuoveva la moltiplicazione dei ceppi di T. pallidum per un periodo fino a 2 settimane. Questo sistema ha coinvolto la co-coltura di T. pallidum con cellule epiteliali di coniglio Sf1Ep cottontail in un terreno di coltura tissutale modificato (T. pallidum Culture Medium 1, TpCM-1) basato sul Minimum Essential Medium (MEM) di Eagle e sul 20% di siero fetale bovino (FBS). Altre condizioni di coltura richieste erano l'incubazione a 34 °C in un'atmosfera contenente l'1,5% di O2 e il 5% di CO2 9,16. In questo sistema, T. pallidum si attacca alle cellule Sf1Ep e si moltiplica quando è in stretta associazione con la superficie cellulare dei mammiferi. Nonostante molti tentativi di sottocoltura e altre modifiche, il sistema di Fieldsteel et al. non è riuscito a promuovere una crescita continua in vitro.
Nel 2018, il nostro laboratorio ha riferito che l'uso di un terreno modificato chiamato TpCM-2 (in cui la MEM di Eagle è stata sostituita con un terreno di coltura tissutale più complesso, CMRL 1066) ha fornito a T. pallidum i nutrienti necessari per consentire una coltura costante a lungo termine17. Ad oggi, questa modifica ha portato a una coltura costante e continua di almeno 5 ceppi di T. pallidum subsp. pallidum (Nichols, SS14, Mexico A, UW231B e UW249B) e un ceppo di T. pallidum subsp. endemicum (Bosnia A)18,19. Ad esempio, il ceppo Nichols è stato coltivato continuamente in vitro per oltre 6 anni. Finora, i tentativi di coltivare isolati di imbardata (T. pallidum subsp. pertenue) o T. paraluiscuniculi in vitro non hanno avuto successo18. Il sistema TpCM-2 richiede ancora la presenza di cellule Sf1Ep, basse concentrazioni di ossigeno e incubazione a 34 °C, rendendo il sistema più complesso rispetto alla maggior parte delle tecniche di coltura batterica. Tuttavia, questo sistema di coltura modificato di T. pallidum è stato utile per definire ulteriormente i requisiti di crescita del batterio18, determinare le concentrazioni inibitorie minime (MIC) di composti antimicrobici e peptidi 20,21,22,23,24,25, propagare nuovi ceppi da aspirati tissutali di pazienti26, isolare popolazioni clonali del 27, caratterizzando il sistema di variazione antigenica tprK 27,28, esaminando l'espressione genica29 ed eseguendo l'analisi mutazionale 30,31,32.
Qui descriviamo i metodi attuali per la coltivazione di T. pallidum in vitro. Ci auguriamo che queste informazioni contribuiscano a facilitare l'applicazione più diffusa di questa tecnica di coltura in vitro per migliorare la diagnosi, il trattamento e la prevenzione della sifilide e delle infezioni treponemici correlate.
NOTA: Tutte le fasi richiedono l'uso di una tecnica asettica e di materiali e reagenti sterili. Si raccomanda l'utilizzo di una cappa a flusso laminare per colture tissutali per ridurre sia a) l'esposizione del personale a materiale infettivo sia b) la possibilità di contaminazione microbica delle colture.
1. Determinazione degli stock cellulari di Sf1Ep
NOTA: Le cellule epiteliali di coniglio Sf1Ep cottontail possono essere acquistate come ceppi congelati dall'American Type Culture Collection (vedi Tabella dei materiali). La natura a crescita lenta e il basso tasso metabolico delle cellule Sf1Ep sembrano essere fondamentali per la loro capacità di sostenere la sopravvivenza e la crescita a lungo termine di T. pallidum33; Pertanto, la sostituzione con altre colture cellulari di mammifero non è raccomandata. Le cellule Sf1Ep non sono una linea cellulare immortalizzata e possono essere mantenute solo per 25-30 passaggi in coltura. Pertanto, è importante mantenere una scorta congelata di celle Sf1Ep a basso passaggio per un uso futuro. Linee di Sf1Ep immortalizzate si presentano occasionalmente durante la coltura a lungo termine di cellule Sf1Ep. (osservazioni inedite). Queste linee spesso crescono più velocemente e sono più facili da maneggiare; tuttavia, a volte, perdono la capacità di sostenere la crescita di T. pallidum . Le linee Sf1Ep immortalate possono essere utilizzate e poi sostituite quando le spirochete iniziano a crescere lentamente.
2. Cellule Sf1Ep passanti
NOTA: La crescita delle colture cellulari Sf1Ep viene monitorata con un microscopio invertito utilizzando ottiche a contrasto di fase. In genere, le cellule impiegano circa una settimana per raggiungere la confluenza. Quando le celle raggiungono la confluenza del ~90%, possono essere passate, utilizzate per la coltivazione di T. pallidum o per la preparazione di ceppi congelati. La vita della coltura può essere estesa a due settimane sostituendo metà del terreno di coltura dopo una settimana di coltura.
3. Coltivazione di T. pallidum
ATTENZIONE: Tutte le sottospecie e i ceppi di T. pallidum sono patogeni per l'uomo e sono classificati come patogeni di livello di biosicurezza 2 (BSL-2)34. Sono necessarie misure appropriate per proteggere il personale; questi includono l'uso di guanti e altri dispositivi di protezione individuale (DPI), nonché la disinfezione di superfici, materiali e liquidi potenzialmente esposti a T. pallidum. T. pallidum è facilmente inattivato dall'esposizione al 70% di etanolo o disinfettanti disponibili in commercio. Si raccomanda l'uso costante di cappe a flusso laminare per la manipolazione di campioni contenenti T. pallidum .
NOTA: T. pallidum è un organismo microaerofilo che può essere ucciso con poche ore di esposizione ai livelli atmosferici di ossigeno 9,16,35. Pertanto, si raccomanda di limitare la manipolazione di T. pallidum nell'aria, se possibile, a meno di un'ora. Inoltre, il mezzo TpCM-2 dovrebbe essere pre-bilanciato in 1,5% O2, 5% CO2, bilanciato N2 e l'agitazione vigorosa (ad esempio, l'uso di un vortice) dovrebbe essere limitata. Poiché la coltura di T. pallidum viene tipicamente eseguita in assenza di antibiotici, è necessaria un'attenzione particolare per evitare la contaminazione con batteri o funghi. La procedura Sf1Ep-TpCM-2 per la coltura di T. pallidum è riassunta nella Figura 1 e prevede più fasi, tra cui la semina dei vasi di coltura con cellule Sf1Ep, la preparazione del terreno TpCM-2 e l'inoculazione delle colture con T. pallidum. Il siero fetale bovino inattivato termicamente (FBS) è un componente critico del mezzo e la sua efficacia varia tra i diversi fornitori e lotti19. È necessario un prescreening dell'efficacia dei lotti FBS.
4. Raccolta e passaggio delle colture di T. pallidum
NOTA: Poiché la maggior parte di T. pallidum in coltura è attaccata alla superficie delle cellule Sf1Ep, è necessario dissociare i treponemi dalle cellule dei mammiferi per recuperarli e ottenere un conteggio accurato degli organismi. Tale "raccolta" e il passaggio a colture fresche avviene in genere il 7° giorno di coltura. La procedura qui descritta è per piastre a 6 pozzetti; La quantità di soluzione di tripsina-EDTA utilizzata viene regolata verso l'alto o verso il basso a seconda delle dimensioni del formato di coltura 17,19,27.
5. Congelamento e conservazione delle colture di T. pallidum
NOTA: T. pallidum può essere conservato a tempo indeterminato a una temperatura pari o inferiore a -70 °C, con una vitalità al momento dello scongelamento tipicamente del 50%-90%.
6. Generazione di cloni isogenici di T. pallidum
NOTA: Questa procedura è descritta in dettaglio in uno studio precedente27.
Utilizzando le condizioni descritte, T. pallidum mantiene tipicamente >90% di motilità e si moltiplica logaritmicamente con un tempo di raddoppio da 33 ore a 45 ore per circa 7 giorni prima di entrare nella fase stazionaria (Figura 3). Nel corso di 1 settimana, le spirochete subiscono circa 4-5 raddoppi (Figura 4). ). Inoltre, diversi ceppi di T. pallidum possono crescere a ritmi diversi. I ceppi del gruppo SS14 di T. pallidum tendono ad avere tempi di raddoppio più lenti rispetto a quelli del gruppo di Nichols17.
L'alimentazione delle colture può prolungare il tempo di coltura di diversi giorni, ma lo strato cellulare Sf1Ep spesso fallisce dopo una settimana di coltura. Inoltre, i treponemici raggiungono un limite superiore di organismi di circa 5 x 107/mL. Le colture trasferite a intervalli di 7 giorni in genere continuano la moltiplicazione logaritmica con una fase di ritardo minima o nulla. Gli organismi in fase stazionaria spesso diventano difficili da trasmettere.
La maggior parte dei T. pallidum sono attaccati alle cellule Sf1Ep. Tuttavia, nel surnatante rimane una quantità sufficiente di T. pallidum che i campioni di terreno possono essere rimossi periodicamente per verificarne la vitalità e la moltiplicazione. Se è necessaria un'attenta quantificazione, il volume del terreno rimosso deve essere misurato, il numero di T. pallidum quantificato e il numero totale di organismi rimossi deve essere aggiunto ai conteggi finali al momento del raccolto.
In studi precedenti, l'efficienza di clonazione (numero di colture positive per organismo inoculato) era del 12,5% per 2 T. pallidum inoculati per pozzetto e del 6,7% per 0,5 T. pallidum inoculati perpozzetto 27. Pertanto, è probabile che qualsiasi pozzo positivo rappresenti la crescita di un singolo organismo in uno di questi inoculi. Tuttavia, la clonalità delle popolazioni risultanti deve essere verificata esaminando la coltura per l'omogeneità in siti eterogenei nella coltura madre. Il modo più definitivo per dimostrare che la coltura è isogenica è attraverso il sequenziamento dell'intero genoma27.
Figura 1: Diagramma di flusso della procedura di coltivazione in vitro di T. pallidumin . Questa figura è stata ristampata con il permesso di Edmondson e Norris (2021)19. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2: Diagramma del sistema per equilibrare i reagenti di coltura di T. pallidum in un ambiente a basso contenuto di ossigeno. Uno sfiato del barattolo di birra è collegato tramite un giunto a T a una fonte di vuoto (come un aspirapolvere domestico) e a bombole di gas contenenti miscele di gas personalizzate (5% CO2, azoto bilanciato e 1,5% O2, 5% CO2, azoto bilanciato). Un vacuometro in linea misura il vuoto aspirato nel barattolo. Il vuoto viene aspirato nel barattolo a circa -58 kPa. Il barattolo evacuato viene quindi riempito lentamente con le miscele di gas. Il barattolo Brewer viene riempito tre volte con il 5% di CO2, l'azoto bilanciato prima di un'evacuazione finale e riempito con il 95% di N2, il 5% di CO2, l'1,5% di O2. Le colture o i terreni vengono quindi rimossi dal barattolo e trasferiti rapidamente nell'incubatore a basso contenuto di ossigeno. In alternativa, il tubo tra il vaso Brewer e il primo giunto a T può essere bloccato saldamente, il tubo scollegato dal giunto a T e l'intero vaso Brewer può essere trasferito in un incubatore a 34 °C. Questa figura è stata ristampata con il permesso di Edmondson e Norris (2021)19. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3: Curve di crescita di T. pallidum coltivate con cellule Sf1Ep con terreno TpCM-2. Colture parallele triplicate sono state seminate con T. pallidum. Le repliche sono state raccolte in ogni momento; i risultati rappresentano la media + SEM per queste culture. (A) Sono mostrate le variazioni di T. pallidum per coltura e (B) la percentuale di motilità. Questa figura è stata adattata con il permesso di Edmondson et al.18. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 4: Esempio di passaggio di coltura in vitro di T. pallidum, ceppo di Nichols. Le colture parallele di triplicato sono state seminate con T. pallidum e passate settimanalmente utilizzando una diluizione 1:20. Il grafico a dente di sega mostra il numero di T. pallidum per coltura e il numero trasferito a nuove colture in ogni momento. I risultati rappresentano la media ± SEM per tre repliche biologiche. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Tabella 1: Volume medio e rapporti di semina per recipienti di coltura. Clicca qui per scaricare questa tabella.
Tabella 2: Terreni per la coltivazione di T. pallidum . Tutti i mezzi devono essere sterilizzati con filtro dopo la preparazione. Il terreno Sf1Ep può essere conservato a 4 °C per un massimo di due mesi. TpCM-2 viene in genere prodotto un giorno prima dell'uso. Il mezzo di dissociazione deve essere aliquotato e congelato. Clicca qui per scaricare questa tabella.
Il sistema Sf1Ep-TpCM-2 è la prima procedura disponibile che promuove la coltura continua in vitro di T. pallidum. Il sistema è complesso a causa delle estreme esigenze di crescita di questo organismo: 1) complesse esigenze nutrizionali a causa delle limitate capacità biosintetiche; 2) un fabbisogno poco compreso di piccole quantità di ossigeno, nonostante l'elevata sensibilità alle specie reattive dell'ossigeno 9,10,16,36; e 3) l'attuale necessità della presenza di cellule Sf1Ep. Sebbene si sia tentati di "prendere scorciatoie" sulla procedura, si raccomanda di seguire attentamente i passaggi fino a quando non si ottiene una cultura di successo a lungo termine prima di provare le modifiche. Man mano che si accumulano ulteriori informazioni sui requisiti metabolici di T. pallidum, può essere possibile sviluppare condizioni assiniche che non richiedono la presenza di cellule Sf1Ep. Tuttavia, il tasso di crescita in vitro rimarrà probabilmente lento (con un tempo di raddoppio minimo compreso tra 33 e 46 ore, a seconda del ceppo)17,18, dato che T. pallidum si moltiplica a un tempo di raddoppio stimato tra 30 e 33 ore anche durante l'infezione da mammifero37,38. Come per qualsiasi coltura batterica, si raccomanda di mantenere bassi stock di passaggio e di condurre esperimenti con colture di T. pallidum che si trovano a meno di 10 passaggi da questi stock per evitare la "deriva genetica" e i cambiamenti fenotipici associati dovuti a mutazioni.
Le cellule Sf1Ep apparentemente forniscono nutrienti essenziali o attività enzimatiche ai treponemi. Tuttavia, consumano anche sostanze nutritive (come glucosio e ossigeno) e possono produrre condizioni tossiche come un pH basso 9,16,39. Pertanto, esiste un equilibrio tra l'avere un numero sufficiente di cellule Sf1Ep per supportare la moltiplicazione di T. pallidum e la prevenzione della crescita eccessiva e della tossicità delle cellule di mammifero. Un numero elevato di cellule Sf1Ep tende a crescere più velocemente e, a volte, perde la capacità di sostenere la moltiplicazione di T. pallidum. Pertanto, il numero di passaggi di Sf1Ep dovrebbe essere monitorato e le scorte cellulari dovrebbero essere sostituite periodicamente con preparati congelati a basso passaggio. La presenza di cellule Sf1Ep complica anche lo studio delle proprietà di T. pallidum come il contenuto di DNA, RNA e proteine e le attività enzimatiche. La rimozione delle celle di coniglio è possibile in una certa misura utilizzando la centrifugazione ripetuta a bassa velocità (100 x g per 5 minuti) o più efficacemente utilizzando i gradienti di Percoll o Hypaque40,41. Tuttavia, i metodi di centrifugazione in gradiente sono generalmente efficaci solo con un numero elevato di T. pallidum. I metodi alternativi per la propagazione di T. pallidum sono limitati all'infezione di animali da laboratorio come i conigli13,14. Questo approccio ha considerazioni etiche ed è diventato sempre più costoso; tuttavia, il modello di coniglio è molto utile per studiare la patogenesi di T. pallidum e le risposte immunitarie dell'ospite. Inoltre, ci sono probabilmente alcune differenze nell'espressione genica, nella crescita o nel comportamento di T. pallidum durante la coltura in vitro e l'infezione del coniglio27.
Al momento della stesura di questo rapporto, il sistema Sf1Ep-TpCM-2 è stato stabilito in almeno 6 gruppi di ricerca negli Stati Uniti e in Europa e ha portato a 16 pubblicazioni con argomenti che vanno dalla biologia di base e dalla genetica di T. pallidum alla suscettibilità antimicrobica. Il valore della coltura in vitro nello studio di questo enigmatico patogeno aumenterà probabilmente con l'ampliamento dell'uso e i miglioramenti futuri.
Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.
Questo lavoro è stato sostenuto dalla sovvenzione R01 AI141958 dal National Institutes of Health/NIAID degli Stati Uniti. I finanziatori non hanno avuto alcun ruolo nella progettazione dello studio, nella raccolta e nell'analisi dei dati, nella decisione di pubblicare o nella preparazione del manoscritto.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.5 M EDTA, pH 8.0 | Sigma | E8008 | |
10x Earle’s Balanced Salts, w/o Mg2+, Ca2+ | Gibco | 14155063 | |
15 and 50 mL conical sterile disposable centrifuge tubes | N/A | N/A | |
2 mL cryogenic vials | Corning | 430659 | |
6-well cell culture plates for T. pallidum cultivation | Falcon | 353046 | The plates must have low evaporation lids. |
70% ethanol | N/A | N/A | |
75 cm2 tissue culture flasks with vented caps | Corning | 43061U | |
93.5% nitrogen, 5% CO2, and 1.5% oxygen for pre-equilibrating medium and cultures | N/A | N/A | |
95% nitrogen and 5% CO2 for pre-equilibrating medium and cultures | N/A | N/A | |
96-well low evaporation clear, flat-bottom tissue culture-treated microplates | Corning Falcon | 353072 | |
Adjustable multi-channel pipette with 200 ul capacity | N/A | N/A | Optional, but very helpful for cloning |
Cell culture grade water | Sigma | W3500 | |
CMRL 1066 without L-Glutamine or Phenol Red | US Biological | C5900-03A | |
CO2 for tri-gas and tissue culture incubators | N/A | N/A | |
Cryogenic liquid nitrogen cell culture storage tank | N/A | N/A | |
D-glucose | Sigma-Aldrich | G6152 | |
Disposable filter units, 0.2 µm , > 100 mL capacity | N/A | N/A | |
Disposable pipets: 25 mL, 10 mL, 5 mL, aspirating | N/A | N/A | |
DL-Dithiothreitol | Sigma-Aldrich | D9779 | |
D-Mannitol | Sigma-Aldrich | M1902 | |
DMSO (sterile cell culture grade ) | Sigma-Aldrich | D2650 | |
Eagle’s MEM | Sigma-Aldrich | M4655 | |
Fetal bovine serum, heat inactivated | Sigma-Aldrich | F4135 | We highly recommend this product. Must pre-screen for T. pallidum culture compatibility if using a different brand or catalog number. |
Freezer with capability of maintaining -70 °C or -80 °C | N/A | N/A | For storage of T. pallidum; liquid nitrogen storage may be used instead |
Freezing medium (Sf1Ep medium + 10% [v/v] DMSO) | N/A | N/A | |
Gas cylinders with appropriate fittings | N/A | N/A | |
GasPak 150 vented anaerobic jar (Brewer Jar) | Fisher Scientific | 11-816 | |
Glycerol | N/A | N/A | |
Helber counting chambers with Thoma rulings | Hawksley Medical and Laboratory Equipment | For quantitating T. pallidum | |
Hemocytometer | N/A | N/A | For Sf1Ep cell quantitation |
Incubator tank switch | NuAire | NU-1550 TankGuard Automatic CO2 Incubator Tank Switch | Optional, but very helpful in maintaining appropriate O2 conditions. |
Inverted microscope with phase contrast optics | N/A | N/A | For viewing Sf1Ep cell cultures |
L-Glutamine | Sigma-Aldrich | G7513 | |
L-Histidine | Sigma-Aldrich | H6034 | |
MEM Non-Essential Amino Acids | Gibco | 11140-050 | |
Microscope with darkfield condensor | N/A | N/A | The microscope should have a 40x objective and 15x eyepieces. |
MOPS | Sigma-Aldrich | M3183 | |
Multi-channel adapter for aspirator | Integra | 155520 | Optional, but useful for cloning |
NaHCO3 (7.5%) | Sigma-Aldrich | S8761 | |
Nitrogen for tri-gas incubator | N/A | N/A | |
Resazurin | Sigma-Aldrich | R7017 | |
Sf1Ep (NBL-11) cells | American Type Culture Collection | CCL-68 | |
Sodium pyruvate | Sigma-Aldrich | S8636 | |
Sterile PBS (without calcium chloride and magnesium chloride) | Sigma-Aldrich | D8537 | |
Sterile reagent reservoirs, 50 or 100 mL size | N/A | N/A | |
T. pallidum sample, frozen or fresh | from a rabbit infection or in vitro culture | ||
Tissue culture incubator maintained at 37 °C, 5% CO2 | N/A | N/A | |
Tri-gas tissue culture incubator maintained at 34 °C, 5% CO2, 1.5% O2 | Thermofisher | Heracell™ VIOS 160i Tri-Gas CO2 Incubator | Optional; anaerobic jars may be used instead (see Ref. 17) |
Trypsin-EDTA solution | Sigma-Aldrich | T4049 | |
Vacuum source (e.g. house vacuum), vacuum tubing, vacuum gauge, and connectors | N/A | N/A | |
Water, suitable for cell culture, filter-sterilized, purified | Sigma-Aldrich | W3500 | Recommended for medium preparation; decreases culture variability |
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