Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Method Article
В этой статье представлено пошаговое руководство по созданию первичной культуры стволовых клеток пульпы зубов с использованием метода культивирования эксплантов и характеристике этих клеток на основе рекомендаций ICSCRT. Клетки, выделенные по этому протоколу, можно рассматривать как мезенхимальные стволовые клетки для дальнейшего применения.
Пульпа зуба человека представляет собой многообещающий мультипотентный резервуар стволовых клеток с выдающимися регенеративными компетенциями, которые могут быть получены из удаленного зуба. Экто-мезенхимальное происхождение стволовых клеток пульпы зуба (DPSC), полученное из нервного гребня, обеспечивает высокую степень пластичности, которая обусловлена их многогранными преимуществами в восстановлении и регенерации тканей. Существуют различные практические способы сбора, поддержания и пролиферации взрослых стволовых клеток, которые исследуются для их использования в регенеративной медицине. В данной работе мы демонстрируем создание первичной культуры мезенхимальных стволовых клеток из зубной ткани методом культивирования экспланта. Выделенные клетки имели веретенообразную форму и прилегали к пластиковой поверхности культуральной пластины. Фенотипическая характеристика этих стволовых клеток показала положительную экспрессию рекомендованных Международным обществом клеточной терапии (ISCT) маркеров клеточной поверхности для МСК, таких как CD90, CD73 и CD105. Кроме того, незначительная экспрессия гемопоэтических (CD45) и эндотелиальных маркеров (CD34) и менее 2% экспрессии маркеров HLA-DR подтвердили гомогенность и чистоту культур DPSC. Далее мы проиллюстрировали их мультипотентность, основанную на дифференциации на адипогенные, остеогенные и хондрогенные линии. Мы также заставили эти клетки дифференцироваться в печеночные и нейроноподобные клетки путем добавления соответствующих стимулирующих сред. Этот оптимизированный протокол поможет в культивировании расширяемой популяции мезенхимальных стволовых клеток для использования в лаборатории или для доклинических исследований. Подобные протоколы могут быть включены в клинические установки для практики лечения на основе DPSC.
Взрослые стволовые клетки превратились в мощный терапевтический инструмент для клеточного лечения и терапии благодаря своей пластичности, паракринным механизмам и иммуномодулирующим свойствам 1,2,3. Обнадеживающие данные доклинических исследований на основе стволовых клеток вдохновили исследователей на работу по переводу «от скамьи к постели больного». Тип стволовых клеток, используемых для терапии стволовыми клетками, играет важную роль в достижении успешных результатов. В доклинических и клинических исследованиях наиболее широко известным источником мезенхимальных стволовых клеток (МСК) остается костный мозг 4,5. Тем не менее, основными недостатками использования стволовых клеток, полученных из костного мозга (BMSC), являются их редкая популяция, высокоинвазивные процедуры изоляции и их ограниченная способность к расширению. В связи с этим изучаются альтернативные источники МСК. В связи с этим зубные ткани, с их легкостью доступа, огромной пластичностью, высоким регенеративным потенциалом и высокой пролиферативной способностью, в настоящее время рассматриваются как богатый и потенциальный альтернативный источник стволовых клеток 6,7,8,9,10.
Стволовые клетки пульпы зуба (DPSC) были первым типом стоматологических стволовых клеток, которые были выделены и охарактеризованы Gronthos в 2000году11. DPSC привлекли внимание к приложениям тканевой инженерии из-за их высокой скорости пролиферации, значительного потенциала дифференцировки, легкости доступа с легким культивированием и, что наиболее важно, их возможности быть полученными из выброшенного зуба без каких-либо этическихпроблем. DPSC обходят ограничения, связанные с другими источниками стволовых клеток, такими как BMSC и стволовые клетки, полученные из жировой ткани (ADSC), в плане их изоляции и недостаточной способности к самообновлению. DPSC человека могут быть получены из молочных зубов человека, постоянных зубов, зубов мудрости, отслоившихся молочных зубов (SHED) и апикальных сосочков. Более того, DPSC также могут быть выделены из лишних зубов, которые обычно отбрасываются14. DPSC экспрессируют маркеры, связанные с нервным гребнем, и обладают потенциалом для дифференцировки в нейронные клетки как in vitro , так и in vivo15. В дополнение к своему нейрогенному потенциалу, DPSC могут дифференцироваться в другие клеточные линии, такие как остеогенные, хондрогенные, адипогенные, печеночные и миогенные приопределенных условиях дифференцировки. Таким образом, эти мультипотентные клетки обладают большим потенциалом для клеточной терапии и могут быть использованы для регенерации различных тканей. Исследования также сообщили о потенциальной роли DPSC в реконструкции роговицы16, восстановлении инфаркта миокарда17 и их потенциальной терапевтической роли при таких заболеваниях, как ишемия конечностей18, болезнь Альцгеймера 19, болезнь Паркинсона 20 и старение21. Таким образом, стволовые клетки, полученные из зубной ткани, могут быть использованы не только для регенерации зубов, но и для восстановления и регенерации нестоматологических органов, таких как глаза16, сердце17, печень22, кости23 и т. д.
Существуют два конкретных метода выделения популяции МСК из пульповой ткани - ферментативное расщепление и эксплантная культура24,25. Сообщалось об успешном создании первичных культур без существенной разницы в количестве и свойствах DPSC с помощью обоих этих методов26. В данном исследовании мы сосредоточились на выделении DPSC методом экспланта27, поскольку этот метод позволяет получить DPSC без контаминации гемопоэтических и эндотелиальных клеток, по сравнению с ферментативным расщеплением, которое может привести к контаминации фибробластов28.
Все процедуры, описанные в исследовании, были одобрены Комитетом по этике института (IEC# 9195/PG-12 ITRG/2571-72) PGIMER, Чандигарх. Все эксперименты, связанные с клеточными культурами, должны проводиться в шкафу биологической безопасности класса II (BSC) в соответствии с асептическим методом. Пульпа зуба была получена из здоровых зубов трех пациентов (F/14, M/14 и M/20), перенесших удаление третьего моляра по ортодонтическим причинам. Перед сбором образца было получено письменное информированное согласие от пациента/опекуна в соответствии с руководящими принципами, предоставленными комитетом по этике PGIMER, Чандигарх.
1. Создание первичной культуры стволовых клеток пульпы зуба (DPSC) из зубной ткани человека
ПРИМЕЧАНИЕ: Не следует использовать любые кариозные зубы.
2. Удаление пульповой ткани из зуба и клеточной культуры DPSC (время: 60-120 мин)
ПРИМЕЧАНИЕ: Все этапы после транспортировки зубов были выполнены в лаборатории клеточных и тканевых культур внутри шкафа биобезопасности уровня 2.
3. Расширение DPSC
4. Идентификация фенотипических маркеров стволовых клеток (время: 90 - 120 мин)
ПРИМЕЧАНИЕ: Для определения характеристик клеток, полученных из пульповой ткани, используйте клетки между третьим и пятым пассажем.
5. Дифференциация DPSC на несколько линий
ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте 75%-80% конфлюентных культур DPSC на третьем-пятом пассажах для оценки мультипотентности. Контрольную группу клеток, содержащую α-MEM, следует использовать для всех описанных ниже типов дифференцировки.
6. Адипогенная дифференциация DPSC, окрашивание масляным красным O и количественное определение
ПРИМЕЧАНИЕ: Начальные этапы посева такие же, как и выше (т.е. стадия остеогенной дифференцировки 5.1).
7. Хондрогенная дифференциация DPSC, окрашивание альцианским синим цветом и количественное определение
Примечание: Хондрогенная дифференцировка была индуцирована в монослойной культуре DPSC. Начальные этапы посева такие же, как и выше (т.е. этап остеогенной дифференцировки 5.1).
8. Дифференциация DPSC в сторону печеноподобной линии и характеристика
9. Нейронная дифференцировка DPSC в сторону нейроноподобной линии и характеризация
В этой статье мы описываем, как исследователи могут создать чистую культуру DPSC с помощью методаэкспланта 6,7,8,9,10 и побудить их к нескольким линиям, чтобы установить чистоту культуры для последующего применения.
Стволовые клетки связывают надежды на излечение многих болезней благодаря своей пластичности, прочности, иммуномодулирующим свойствам, паракринным механизмам и эффективности самонаведения. Ткань пульпы зуба считается самым мощным и ценным источником стволовых клеток, обладающих вы...
Авторы заявляют об отсутствии финансового или нефинансового конфликта интересов.
Мы выражаем признательность за финансовую поддержку AK со стороны Департамента исследований в области здравоохранения (DHR), ICMR, правительства Индии (грант DHR-NRI # R.12015/01/2022-HR). SR получил финансирование от ICMR, правительство Индии (грант # 2020-7593/SCR-BMS), а PS получил стипендию от CSIR, правительство Индии. Мы также благодарны г-же Сандхье Тохи и г-же Бхупиндер Каур за помощь в проточной цитометрии, а также центральному яду сложных приборов (CSIC) и PGIMER, Чандигарх, за предоставленную инфраструктурную поддержку.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
6 well cell culture plate | Costar | 3516 | For cell culture |
Alcian blue stain | EZstain chondrocyte staining kit, HiMedia | CCK029 | |
alizarin red S stain | Sigma-Aldrich | TMS-008 | Osteogenic stain |
Antibiotic cocktail | Himedia | A002-5X50ML | To prevent culture contamination |
Ascorbic Acid | Himedia | TC094-25G | Chondrogenic induction |
B27 supplement | Gibco | 17504044 | For neural induction |
bFGF ( basic Fibroblast Growth Factor) | Gibco | PHG0024 | For neural induction |
CD 105 | BD-Pharmingen | 560839 | |
CD 35 | Biolegend | 343604 | |
CD 45 | Biolegend | 304006 | |
CD 73 | Biolegend | 344016 | |
CD 90 | Biolegend | 328107 | Characterization |
cetyl pyridinium chloride (CPC) | Sigma-Aldrich | 1104006 | For Alizarin Red extraction |
Dexamethasone 21-phosphate disodium | Sigma-Aldrich | D1159-100MG | |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline | Himedia | TS1006-5L | For washing purpose |
EGF (Epidermal Growth Factor) | Gibco | PHG0311 | For hepatic and neural induction |
EVOS LED microscope | Invitrogen | For fluorescence imaging | |
EZ stain Chondrocyte staining kit | Himedia | CCK029-1KT | Chondro stain Kit |
FACS Canto flow cytometer | BD Biosciences | For cell characterization | |
Fetal Bovine Serum | Gibco | 16000044 | For primary culture |
Fetal Bovine Serum | Sigma-Aldrich | F2442 | For cell culture |
G5 supplement | Gibco | 17503012 | For neural induction |
HGF( Hepatocyte Growth Factor) | Sigma-Aldrich | H1404 | For hepatic Induction |
HLA-DR | Biolegend | 307605 | |
Human TGF-β3 | Peprotech | #100-36E-10U | |
Insulin-Transferrin-Selenous acid premix | Sigma-Aldrich | I3146 | For hepatic Induction |
ITS premix | Corning | 354350 | |
LDL Uptake Assay kit | Abcam | ab133127 | For hepatic characterization |
Low glucose DMEM | Gibco | 11885-084 | For hepatic induction |
MAP2 antibody | Sigma-Aldrich | M4403 | For neural characterization |
N2 supplement | Gibco | 17502048 | For neural induction |
Neural Basal Media | Gibco | 21103049 | For neural induction |
NFM antibody | Sigma-Aldrich | N4142 | For neural characterization |
Nikon Elipse TS100 microscope | Nikon | For fluorescence imaging | |
Oil Red O | Sigma-Aldrich | 01391-250Ml | Adipogenic stain |
Oncostatin M | R&D Systems | 295-OM-010/CF | For hepatic Induction |
Petridish | Tarson | 460090-90MM | For tissue cutting |
Potassium phosphate monobasic | Sigma-Aldrich | 15655-100G | Osteogenic induction |
Propan-2-ol | Thermo Fisher | Q13827 | For Oil Red O extraction |
Sodium pyruvate solution | Sigma life sciences | S8636-100ML | |
Trypsin-EDTA | Sigma-Aldrich | T4049 | For cell passaging |
Whatman filter paper | merck | WHA1001325 | filter paper |
α- Minimum Essential Media (α-MEM) | Sigma-Aldrich | M0643-10X 1L | Media for primary culture |
β-glycerophosphate disodium salt hydrate | Sigma-Aldrich | G9422-50G |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены