Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
При интеграции с головной пластиной и оптической конструкцией, совместимой как с однофотонными, так и с двухфотонными микроскопами, микропризменная линза представляет собой значительное преимущество при измерении нейронных реакций в вертикальной колонке в различных условиях, включая хорошо контролируемые эксперименты в состояниях, зафиксированных головой, или естественные поведенческие задачи у свободно движущихся животных.
С развитием многофотонной микроскопии и молекулярных технологий флуоресцентная визуализация быстро развивается и становится мощным подходом к изучению структуры, функций и пластичности живых тканей мозга. По сравнению с традиционной электрофизиологией, флуоресцентная микроскопия может фиксировать нейронную активность, а также морфологию клеток, что позволяет проводить долгосрочные записи идентифицированных популяций нейронов с одноклеточным или субклеточным разрешением. Тем не менее, визуализация с высоким разрешением, как правило, требует стабильной установки с фиксированной головой, которая ограничивает движения животного, а подготовка плоской поверхности из прозрачного стекла позволяет визуализировать нейроны в одной или нескольких горизонтальных плоскостях, но ограничена в изучении вертикальных процессов, протекающих на разных глубинах. Здесь мы опишем процедуру, сочетающую фиксацию головной пластины и микропризму, которая дает многослойную и мультимодальную визуализацию. Этот хирургический препарат не только дает доступ ко всему столбу зрительной коры головного мозга мыши, но и позволяет получать двухфотонную визуализацию в фиксированном положении головы и однофотонную визуализацию в свободно движущейся парадигме. Используя этот подход, можно отбирать идентифицированные популяции клеток в различных слоях коры, регистрировать их реакцию в свободно движущихся состояниях и отслеживать долгосрочные изменения в течение нескольких месяцев. Таким образом, этот метод обеспечивает всесторонний анализ микросхем, позволяя напрямую сравнивать нейронную активность, вызванную хорошо контролируемыми стимулами, и в рамках естественной поведенческой парадигмы.
Появление in vivo двухфотонной флуоресцентной визуализации 1,2, сочетающей в себе новые технологии оптических систем и генетически модифицированных индикаторов флуоресценции, стало мощным методом в нейробиологии для исследования сложной структуры, функций и пластичности живого мозга 3,4. В частности, этот метод визуализации дает беспрецедентное преимущество перед традиционной электрофизиологией, фиксируя как морфологию, так и динамическую активность нейронов, тем самым облегчая долгосрочное отслеживание идентифицированных нейронов
Все эксперименты проводились в соответствии с Законом Великобритании о животных (научные процедуры) 1986 года на основании персональных и проектных лицензий, одобренных и выданных Министерством внутренних дел Великобритании после соответствующей этической экспертизы. Взрослые трансгенные линии CaMKII-TTA; GCaMP6S-TRE21 были выведены, а их потомство использовано в эксперименте. Для безопасности экспериментаторов и поддержания стерильных условий все процедуры проводились в асептических условиях и с использованием полных средств индивидуальной защиты.
1. Предоперационная подготовка
Показан метод проведения хронической многослойной in vivo кальциевой визуализации одной и той же популяции нейронов в течение нескольких недель с использованием как одно-, так и двухфотонной модальностей визуализации в свободно движущихся и фиксированных на голове условиях. Здесь ?.......
Здесь мы показали способность наблюдать и напрямую сравнивать нейроны в условиях фиксированной головы и свободно движущихся в одних и тех же нейронных популяциях. Несмотря на то, что мы продемонстрировали применение в зрительной коре, этот протокол может быть адаптирован к множеству ?.......
Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих финансовых интересов или конфликта интересов.
Мы благодарим г-жу Чару Редди и профессора Маттео Карандини (Cortex Lab) за их консультации по хирургическому протоколу и обмену трансгенной линией мышей. Мы благодарим д-ра Норберта Хогрефе (Inscopix) за его руководство и помощь в разработке операции. Мы благодарим г-жу Андреа Алдеа (Sun Lab) за помощь в организации хирургического вмешательства и обработке данных. Эта работа была поддержана благотворительной организацией Moorfields Eye Charity.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.9% Sodium Chloride solution for infusion (Vetivex 11) 250ml | Dechra | 20091607 | Saline for hydration and drug reconsitution |
18004-1 Trephine 1.8mm diameter bur | FST | 18004-18 | Drill bit |
1ml syringe | Terumo | MDSS01SE | 1ml syringe |
23G x 5/8 inch 6% LUER needle | Terumo | NN-2316R | 23G needle |
71000 Automated stereotaxic apparatus w/ built-in software | RWD | - | RWD |
Absorbable Haemostatic Gelatin Sponge (10x10x10mm) | Surgispon | SSP-101010 | gel-foam |
Alcohol pads 70% isopropyl alcohol | Braun | 9160612 | Alcohol pads |
Aluminium foil | Any retailer | - | Foil to cover eyes during surgery |
Articifical Cerebrospinal Fluid | Tocris Bioscience a Bio-Techne Brand | 3525/25ML | ACSF |
Automated microinjection pump | WPI | 8091 | |
Betadine solution (10% iodinated Povidone) 500ml | Videne/Ecolab | 3030440 | Betadine |
Bruker Ultime 2Pplus (customised) | Bruker | - | Two-photon imaging system |
Cardiff Aldasorber | Vet-Tech | AN006 | Anaesthesia absorber |
CFI S Plan Fluor ELWD ADM 20XC | Nikon | MRH48230 | 20x objective lens |
Compact Anaesthesia system - single gas - isoflurane K/F, with oxygen concentrator model: ZY-5AC and scavenging unit | Vet-Tech | AN001 | Compact anaesthesia system |
Contec Prochlor | Aston Pharma | AP2111L1 | Disinfectant (hypochlorous acid) |
Dexamethasone Sodium Phosphate Injection, USP, 4mg/ml, NDC: 0641-6145-25 | Hikma | Covetrus:70789 | Dexamethasone |
Dissecting Knife, cutting edge 4mm, thickness 0.5mm, stainless steel | Fine Science Tools | 10055-12 | Knife for incisino of cortex |
Dual-Sided, Non-Puncture Mouse & Neonatal Rat Ear Bars | Stoelting | 51649 | Ear bar |
Dummy microscope | Inscopix | Dummy microscope | To help with implantation |
Ethanol (100%) | VWR | 40-1712-25 | Used to make 70% ethanol |
Fisherbrand Nitrile Indigo Disposable Gloves PPE Cat III | FischerScientific | 17182182 | Gloves |
Homeothermic Monitor 50-7222-F | Harvard Apparatus | 50-7222-F | Homeothermic monitoring system/heating pad |
Image processing software | ImageJ | - | Image processing software |
Inscopix Data Processing Software (IDPS) | Inscopix | - | One-photon calcium imaging processing software |
Insight Duals-232, S/N 2043 | InSight | Insight Spectra X3 | Two-photon imaging laser |
IsoFlo 250ml 100% w/w inhalation | Zoetis | WM 42058/4195 | Isoflurane |
Kwik-Sil Low Toxicity Silicone Adhesive | World Precision Intruments (WPI) | KWIK-SIL | Silicone adhesive |
MICROMOT mains adapter NG 2/S, w/ Drill unit 60/E | PROXXON | NO 28 515 | Handheld drill |
nVoke Integrated Imaging and Optogenetics System package | Inscopix | - | One-photon Imaging system and software |
ProView Implant Kit | Inscopix | ProView Implant Kit | Dummy microscope, stereotaxic arm and attachment |
ProView Prism Probe | Inscopix | 1050-002203 | Microprism lens |
Rimadyl (50mg/ml) | Zoetis | VM 42058/4123 | Carprofen |
Stereotaxis Microscope on Articulated arm with table clamp | WPI | PZMTIII-AAC | Microscope |
Super-Bond Universal kit, SUN Medical | Prestige-Dental | K058E | Adhesive cement |
Two-photon calcium image software | Suite2P | - | Two-photon calcium imaging processing software |
Vapouriser | Vet-Tech | - | Isoflurane vapouriser |
Xailin Lubricating Eye Ointment 5g | Xailin-Night | MLG/28/1551 | Ophthalmic ointment |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены