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Organoide sind zu wertvollen Werkzeugen für die Modellierung von Krankheiten geworden. Die extrazelluläre Matrix (EZM) steuert das Zellschicksal während der Organoidgenerierung, und die Verwendung eines Systems, das dem nativen Gewebe ähnelt, kann die Modellgenauigkeit verbessern. Diese Studie vergleicht die Erzeugung von induzierten pluripotenten Stammzellen gewonnenen humanen Darmorganoiden in tierischer EZM und xenofreien Hydrogelen.
Die extrazelluläre Matrix (EZM) spielt eine entscheidende Rolle für das Verhalten und die Entwicklung von Zellen. Organoide, die aus humanen induzierten pluripotenten Stammzellen (hiPSCs) erzeugt werden, stehen im Fokus vieler Forschungsbereiche. Der Mangel an physiologischen Hinweisen in klassischen Zellkulturmaterialien behindert jedoch eine effiziente iPSC-Differenzierung. Die Einbeziehung von kommerziell erhältlicher EZM in die Stammzellkultur liefert physikalische und chemische Hinweise, die für die Zellerhaltung von Vorteil sind. Im Handel erhältliche Basalmembranprodukte tierischen Ursprungs bestehen aus EZM-Proteinen und Wachstumsfaktoren, die die Zellerhaltung unterstützen. Da die EZM gewebespezifische Eigenschaften besitzt, die das Zellschicksal modulieren können, werden xenofreie Matrizen verwendet, um die Translation in klinische Studien zu übertragen. Während kommerziell erhältliche Matrizen in der hiPSC- und Organoid-Arbeit weit verbreitet sind, wurde die Äquivalenz dieser Matrizen noch nicht untersucht. In dieser Arbeit wurde eine vergleichende Studie zur hiPSC-Erhaltung und zur Bildung von humanen Darmorganoiden (hIO) in vier verschiedenen Matrices durchgeführt: Matrigel (Matrix 1-AB), Geltrex (Matrix 2-AB), Cultrex (Matrix 3-AB) und VitroGel (Matrix 4-XF). Obwohl die Kolonien keine perfekt runde Form aufwiesen, kam es zu einer minimalen spontanen Differenzierung, wobei über 85% der Zellen den Stammzellmarker SSEA-4 exprimierten. Matrix 4-XF führte zur Bildung von runden 3D-Klumpen. Außerdem verbesserte die Erhöhung der Konzentration von Ergänzungs- und Wachstumsfaktoren in den Medien, die zur Herstellung der Matrix 4-XF-Hydrogellösung verwendet wurden, die hiPSC-Expression von SSEA-4 um das 1,3-fache. Die Differenzierung von Matrix-2-AB-erhaltenen hiPS-Zellen führte zu weniger Sphäroidfreisetzungen im Mittel-/Hinterdarmstadium im Vergleich zu den anderen tierischen Basalmembranen. Im Vergleich zu anderen führt die xenofreie Organoidmatrix (Matrix 4-O3) zu einem größeren und reiferen hIO, was darauf hindeutet, dass die physikalischen Eigenschaften von xenofreien Hydrogelen genutzt werden können, um die Organoidbildung zu optimieren. Insgesamt deuten die Ergebnisse darauf hin, dass Variationen in der Zusammensetzung verschiedener Matrices die Stadien der IO-Differenzierung beeinflussen. Diese Studie schärft das Bewusstsein für die Unterschiede in kommerziell verfügbaren Matrizen und bietet einen Leitfaden für die Matrixoptimierung während der iPSC- und IO-Arbeit.
Die extrazelluläre Matrix (EZM) ist ein dynamischer und multifunktionaler Bestandteil von Geweben, der eine zentrale Rolle bei der Regulierung des Zellverhaltens und der Zellentwicklung spielt. Als komplexes Netzwerk bietet es strukturelle Unterstützung, zellhaftende Liganden1 und die Speicherung von Wachstumsfaktoren und Zytokinen, die die Zellsignalübertragung regulieren. So dient die EZM bei der Wundheilung als Gerüst für wandernde Zellen und als Reservoir für Wachstumsfaktoren, die an der Gewebereparatur beteiligt sind2. In ähnlicher Weise kann eine Dysregulation in der EZM zu einer Zunahme des Schweregrads verschied....
1. hiPSC-Wartung
ACHTUNG: Alle Arbeiten werden in einer Biosicherheitswerkbank (BSC) nach aseptischen Standardtechniken durchgeführt. Muss die OSHA-Sicherheitsstandards für Labore einhalten, einschließlich der ordnungsgemäßen Verwendung von persönlicher Schutzausrüstung wie Laborkitteln, Handschuhen und Schutzbrillen.
Nach diesem Protokoll wurden kommerziell erhältliche Basalmembranen und ein xenofreies Hydrogelsystem erfolgreich eingesetzt, um hiPSC-Zellen zu kultivieren und sie in hIO zu differenzieren. Das Hauptziel dieser Experimente war es, die Äquivalenz von Matrizen aus verschiedenen Quellen für die hiPSC- und hIO-Arbeit systematisch zu evaluieren. Der erste Abschnitt dieses Protokolls konzentrierte sich auf die Aufrechterhaltung und Charakterisierung einer gesunden iPSC-Kultur, die zu einer effizienten Generierung von Darmo.......
Die Auswahl der optimalen Mikroumgebung für die Arbeit mit Stammzellen und Organoiden ist ein entscheidender erster Schritt beim Einsatz dieser Plattformen für eine Vielzahl von Anwendungen. Unsere repräsentativen Ergebnisse zeigen, dass Matrix 4-XFO3 in Kombination mit einer höheren Konzentration an Wachstumsfaktoren zu größeren Organoiden führt, was darauf hindeutet, dass die physikalischen Eigenschaften von xenofreien Hydrogelen genutzt werden können, um die Organoidbildung mit diesen Systemen zu optimieren. E.......
Die Autoren würdigen frühere Schulungen und allgemeine Empfehlungen zum Beginn der hiPSC- und Organoid-Arbeit von Dr. Christina Pacak, Silveli Susuki-Hatano und Russell D'Souza. Sie danken Dr. Chelsey Simmons für ihre Anleitung bei der Verwendung von Hydrogelsystemen für die In-vitro-Zellkulturarbeit . Die Autoren danken auch Dr. Christine Rodriguez und Dr. Thomas Allison von STEMCELL Technologies für ihre Anleitung zur hiPS-Kultur. Die Autoren danken auch TheWell Bioscience für die Übernahme der Publikationskosten.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
24-Well Plate (Culture treated, sterile) | Falcon | 353504 | |
37 °C water bath | VWR | ||
96-well plate | Fisher Scientific | FB012931 | |
Advanced DMEM/F12 | Life Technologies | 12634 | |
Anti-adherence Rinsing Solutio | STEMCELL Technologies | 7010 | |
Biological safety cabinet (BSC) | Labconco | Logic | |
Brightfield Microscope | Echo Rebel | REB-01-E2 | |
BXS0116 | ATCC | ACS-1030 | |
Centrifuge with temperature control (4 °C capabilities) | ThermoScientific | 75002441 | |
Conical tubes, 15 mL, sterile | Thermo Fisher Scientific | 339650 | |
Conical tubes, 50 mL, sterile | Thermo Fisher Scientific | 339652 | |
Cultrex RGF BME, Type 2 | Bio-techne | 3533-005-02 | |
Cultrex Stem Cell Qualified RGF BME | Bio-techne | 3434-010-02 | |
D-PBS (Without Ca++ and Mg++) | Thermo Fisher Scientific | 14190144 | |
GeltrexLDEV-Free, hESC-Qualified Reduce Growth Factor | Gibco | A14133-02 | |
GlutaMAX Supplement | Thermo Fischer Scientific | 35050-061 | |
Guava Muse Cell Analyzer or another flow cytometry equipment (optional) | Luminex | 0500-3115 | |
HEPES buffer solution | Thermo Fischer Scientific | 15630-056 | |
Heralcell Vios Cell culture incubator (37 °C, 5% CO2) | Thermo Scientific | 51033775 | |
JMP Software | SAS Institute | JMP 16 | |
MATLAB | MathWorks, Inc | R2022b | |
Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix LDEV free | Corning | 356231 | |
Matrigel Matrix High Concentration (HC), Growth Factor Reduced (GFR) LDEV-free | Corning | 354263 | |
mTeSR Plus Medium | STEMCELL Technologies | 100-0276 | |
Nunclon Delta surface treated 24-well plate | Thermo Scientific | 144530 | |
PE Mouse Anti-human CD326 (EpCAM) | BD Pharmingen | 566841 | |
PE Mouse Anti-human CDX2 | BD Pharmingen | 563428 | |
PE Mouse Anti-human FOXA2 | BD Pharmingen | 561589 | |
PerCP-Cy 5.5 Mouse Anti-human SSEA4 | BD Pharmingen | 561565 | |
ReLeSR | STEMCELL | 5872 | |
SCTi003-A | STEMCELL Technologies | 200-0510 | |
Serological pipettes (10 mL) | Fisher Scientific | 13-678-11E | |
Serological pipettes (5 mL) | Fisher Scientific | 13-678-11D | |
STEMdiff Intestinal Organoid Growth Medium | STEMCELL Technologies | 5145 | |
STEMdiff Intestinal Organoid Kit | STEMCELL Technologies | 5140 | |
Vitrogel Hydrogel Matrix | TheWell Bioscience | VHM01 | |
VitroGel ORGANOID Discovery Kit | TheWell Bioscience | VHM04-K |
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