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Os organoides tornaram-se ferramentas valiosas para a modelagem de doenças. A matriz extracelular (MEC) orienta o destino da célula durante a geração de organoides, e o uso de um sistema que se assemelha ao tecido nativo pode melhorar a precisão do modelo. Este estudo compara a geração de organoides intestinais humanos derivados de células-tronco pluripotentes induzidas em ECM derivada de animais e hidrogéis livres de xeno.
A matriz extracelular (MEC) desempenha um papel crítico no comportamento e desenvolvimento celular. Organoides gerados a partir de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos (hiPSCs) estão no centro das atenções de muitas áreas de pesquisa. No entanto, a falta de pistas fisiológicas em materiais clássicos de cultura de células dificulta a diferenciação eficiente de iPSC. A incorporação da ECM disponível comercialmente na cultura de células-tronco fornece pistas físicas e químicas benéficas para a manutenção celular. Os produtos de membrana basal comercialmente disponíveis de origem animal são compostos de proteínas ECM e fatores de crescimento que suportam a manutenção celular. Como a ECM possui propriedades específicas do tecido que podem modular o destino celular, matrizes livres de xeno são usadas para transmitir a tradução para estudos clínicos. Embora as matrizes comercialmente disponíveis sejam amplamente utilizadas no trabalho com hiPSC e organoides, a equivalência dessas matrizes ainda não foi avaliada. Aqui, foi realizado um estudo comparativo da manutenção de hiPSC e geração de organoides intestinais humanos (hIO) em quatro matrizes diferentes: Matrigel (Matrix 1-AB), Geltrex (Matrix 2-AB), Cultrex (Matrix 3-AB) e VitroGel (Matrix 4-XF). Embora as colônias não tivessem uma forma perfeitamente redonda, houve uma diferenciação espontânea mínima, com mais de 85% das células expressando o marcador de células-tronco SSEA-4. A Matrix 4-XF levou à formação de aglomerados redondos 3D. Além disso, o aumento da concentração de suplemento e fatores de crescimento no meio usado para fazer a solução de hidrogel Matrix 4-XF melhorou a expressão de hiPSC de SSEA-4 em 1,3 vezes. A diferenciação do hiPSC mantido pela Matrix 2-AB levou a menos liberações de esferóides durante o estágio médio / intestino grosso em comparação com as outras membranas basais derivadas de animais. Em comparação com outras, a matriz organoide livre de xeno (Matriz 4-O3) leva a uma IO maior e mais madura, sugerindo que as propriedades físicas dos hidrogéis livres de xeno podem ser aproveitadas para otimizar a geração de organoides. Em conjunto, os resultados sugerem que variações na composição de diferentes matrizes afetam os estágios de diferenciação de IO. Este estudo aumenta a conscientização sobre as diferenças nas matrizes disponíveis comercialmente e fornece um guia para a otimização da matriz durante o trabalho de iPSC e IO.
A matriz extracelular (MEC) é um componente dinâmico e multifuncional dos tecidos que desempenha um papel central na regulação do comportamento e desenvolvimento celular. Como uma rede complexa, fornece suporte estrutural, ligantes adesivos celulares1 e armazenamento de fatores de crescimento e citocinas que regulam a sinalização celular. Por exemplo, durante a cicatrização de feridas, a MEC serve como um andaime para células migratórias e como um reservatório de fatores de crescimento envolvidos no reparo tecidual2. Da mesma forma, a desregulação na MEC pode levar a um aumento na gravidade de várias doenças, como fibros....
1. manutenção hiPSC
CUIDADO: Todo o trabalho é feito em um Gabinete de Biossegurança (BSC) seguindo técnicas assépticas padrão. Deve seguir os padrões de segurança da OSHA para laboratórios, incluindo o uso adequado de equipamentos de proteção individual, como jalecos, luvas e óculos de proteção.
Seguindo este protocolo, membranas basais disponíveis comercialmente e um sistema de hidrogel livre de xeno foram utilizados com sucesso para cultivar células hiPSC e diferenciá-las em hIO. O principal objetivo desses experimentos foi avaliar sistematicamente a equivalência de matrizes de várias fontes para o trabalho de hiPSC e hIO. A primeira seção deste protocolo enfocou a manutenção e caracterização de uma cultura de iPSC saudável que produz uma geração eficiente de organoides intestinais. O processo de.......
Selecionar o microambiente ideal para o trabalho com células-tronco e organoides é um passo inicial fundamental ao usar essas plataformas para uma ampla gama de aplicações. Nossos resultados representativos mostram que a Matriz 4-XFO3, em combinação com uma maior concentração de fatores de crescimento, leva a organoides maiores, sugerindo que as propriedades físicas dos hidrogéis livres de xeno podem ser aproveitadas para otimizar a geração de organoides usando esses sistemas. Foi demonstrado anteriormente qu.......
Os autores reconhecem o treinamento anterior e as recomendações gerais sobre o início do trabalho com hiPSC e organoides dos Drs. Christina Pacak, Silveli Susuki-Hatano e Russell D'Souza. Eles agradecem à Dra. Chelsey Simmons por sua orientação no uso de sistemas de hidrogel para trabalhos de cultura de células in vitro . Além disso, os autores gostariam de agradecer aos Drs. Christine Rodriguez e Thomas Allison, da STEMCELL Technologies, por sua orientação sobre a cultura hiPSC. Os autores também agradecem à TheWell Bioscience por cobrir os custos de publicação.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
24-Well Plate (Culture treated, sterile) | Falcon | 353504 | |
37 °C water bath | VWR | ||
96-well plate | Fisher Scientific | FB012931 | |
Advanced DMEM/F12 | Life Technologies | 12634 | |
Anti-adherence Rinsing Solutio | STEMCELL Technologies | 7010 | |
Biological safety cabinet (BSC) | Labconco | Logic | |
Brightfield Microscope | Echo Rebel | REB-01-E2 | |
BXS0116 | ATCC | ACS-1030 | |
Centrifuge with temperature control (4 °C capabilities) | ThermoScientific | 75002441 | |
Conical tubes, 15 mL, sterile | Thermo Fisher Scientific | 339650 | |
Conical tubes, 50 mL, sterile | Thermo Fisher Scientific | 339652 | |
Cultrex RGF BME, Type 2 | Bio-techne | 3533-005-02 | |
Cultrex Stem Cell Qualified RGF BME | Bio-techne | 3434-010-02 | |
D-PBS (Without Ca++ and Mg++) | Thermo Fisher Scientific | 14190144 | |
GeltrexLDEV-Free, hESC-Qualified Reduce Growth Factor | Gibco | A14133-02 | |
GlutaMAX Supplement | Thermo Fischer Scientific | 35050-061 | |
Guava Muse Cell Analyzer or another flow cytometry equipment (optional) | Luminex | 0500-3115 | |
HEPES buffer solution | Thermo Fischer Scientific | 15630-056 | |
Heralcell Vios Cell culture incubator (37 °C, 5% CO2) | Thermo Scientific | 51033775 | |
JMP Software | SAS Institute | JMP 16 | |
MATLAB | MathWorks, Inc | R2022b | |
Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix LDEV free | Corning | 356231 | |
Matrigel Matrix High Concentration (HC), Growth Factor Reduced (GFR) LDEV-free | Corning | 354263 | |
mTeSR Plus Medium | STEMCELL Technologies | 100-0276 | |
Nunclon Delta surface treated 24-well plate | Thermo Scientific | 144530 | |
PE Mouse Anti-human CD326 (EpCAM) | BD Pharmingen | 566841 | |
PE Mouse Anti-human CDX2 | BD Pharmingen | 563428 | |
PE Mouse Anti-human FOXA2 | BD Pharmingen | 561589 | |
PerCP-Cy 5.5 Mouse Anti-human SSEA4 | BD Pharmingen | 561565 | |
ReLeSR | STEMCELL | 5872 | |
SCTi003-A | STEMCELL Technologies | 200-0510 | |
Serological pipettes (10 mL) | Fisher Scientific | 13-678-11E | |
Serological pipettes (5 mL) | Fisher Scientific | 13-678-11D | |
STEMdiff Intestinal Organoid Growth Medium | STEMCELL Technologies | 5145 | |
STEMdiff Intestinal Organoid Kit | STEMCELL Technologies | 5140 | |
Vitrogel Hydrogel Matrix | TheWell Bioscience | VHM01 | |
VitroGel ORGANOID Discovery Kit | TheWell Bioscience | VHM04-K |
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