Bu cerrahi protokol, bu ameliyatların sonuçlarını iyileştirmek için fasyokutanöz fleplerde iskemik ön koşullandırma rejimini incelemek için güvenilir bir model sağlar. Bu protokolün öğrenilmesi kolay, tekrarlanabilir ve güvenilirdir. Diğer protokollerle temel fark, iskemik ön koşullandırmayı provoke etmek için femoral damarların kullanılması, küçük damarlara zarar vermekten kaçınmaktır.
Sonunda, flep hayatta kalma kabiliyetini artırmak ve flep kırılganlığının kritik dönemini azaltmak için serbest ve pediküllü flep rekonstrüksiyonu için iskemik bir ön koşullandırma protokolünün optimize edilmesine yol açabilir. Bu yöntem rekonstrüktif cerrahi alanına katkıda bulunabilir ve iskemi reperfüzyon yaralanmalarının incelenmesine kendini iyi bir şekilde ödünç verir. Başlamak için, uygun şekilde yatıştırılmış hayvanı sırtüstü pozisyonda yerleştirin.
Karnı kasık kıvrımının altından ksifoid işlem seviyesinin üstüne kadar tıraş edin. Tıraş edilen bölgeye bir epilasyon kremi sürün ve temizlemeden önce beş dakika bekleyin. Steril bir cilt kalemi ve bir cetvel kullanarak, önce hayvanın karnının orta çizgisini işaretleyin ve ardından kasık kırışıklığını işaretleyin.
Kesi yapmadan önce, altı santimetreye kadar dikey uzunluğa ve kasık kırışıklığından kraniyal olarak uzanan yaklaşık üç santimetrelik yatay bir genişliğe sahip oval veya dikdörtgen çizerek istenen flebin hayvanın vücudundaki konumunu belirtin. Şimdi kanat sınırlarına dik olarak beş veya altı eşit mesafeli işaret çizin. Daha sonra bir çift Ragnell makası kullanarak, kasık kırışıklığı üzerinde üç ila dört santimetrelik uzunlamasına bir kesi yapın.
Damarlara zarar vermemek için cildi yukarı doğru çektiğinizden emin olun. Fasyayı ayırmak ve kasık yağ yastığının altındaki damarlara erişmek için forsepsleri açıp kapatarak 4 kuyumcu mikrocerrahi forseps kullanarak femoral ve epigastrik damarları açığa çıkarın ve tanımlayın. Ragnell makası kullanarak flep insizyonunu başlatmak için kasık insizyonunu kullanın.
Cildin tam kalınlığını ve karın kası üzerindeki bağ dokusunu baltalamaya dikkat edin. Flebin ucu başlangıçta çevreleyen deriden serbest bırakıldığından, flep etrafındaki perforatör damarları ve dermal pleksus damarlarını koterize ederken, flebi kastan ayırmak için Ragnell makas uçlarını kullanarak distalden proksimal kısma kadar baltalayarak flep tedarikine devam edin. Flep tamamen toplandıktan sonra, damarları görselleştirmek için flebi yavaşça yukarı doğru kaldırarak yüzeysel inferior epigastrik arterin veya SIEA'nın her iki dalının tamamını flep ile kapsüllemeyi hedefleyin.
Daha sonra, yağ pedlerini kapağın hem medial hem de lateral taraflarındaki alt yönde ayırın. Bipolar koter, yüzeysel inferior epigastrik pediküle zarar vermeden insizyonun sınırına yakın yağ pedellerini dikkatlice koterize etmek için kullanın. Flep hasadının tamamlanmasından sonra femur damarı hazırlığına geçmeden önce, hayvana penis damarı yoluyla tek bir doz 17.5 uluslararası sodyum heparin enjekte edin.
Gemilerin daha iyi görülebilmesi için, hayvanı yalnız bir yıldızın kendi kendini tutan bir retraktörünün içine yerleştirin. Şimdi 40X büyütmeye sahip bir cerrahi mikroskop altında çalışarak, yüzeysel epigastrik damarların ortaya çıkmasına kadar femur damarlarını hem proksimal hem de distal olarak diskal olarak diseksiyon yapmak için birkaç 4 mikrocerrahi forseps kullanın. Distal femoral damarlarda, fasyayı temizleyin ve siniri arter ve damardan yavaşça serbest bırakın.
8-0 kullanarak naylon sütür, mikrocerrahi iğne tutucuyu atardamar ve ven altından atlatarak, dikişi sıkıştırarak ve epigastrik damarların ortaya çıkmasından hemen sonra bu damarları bağlayarak distal femur damarlarını bağlayarak pedikül orijininden sonra bir milimetre mesafe bırakarak distal femur damarlarını bağlar. Proksimal femoral damarlarda, bağ dokusunu temizlemek için aynı işlemi tekrarlayın. Bununla birlikte, etkili kelepçelemeye izin vermek için arter ve damarı birbirinden ayırın.
Aralıklı iskemiyi indüklemek için, her proksimal femoral arter ve ven üzerine ayrı ayrı mikrocerrahi kelepçeler yerleştirin. İskemik yaralanmalar tamamlandığında, flebi ameliyat öncesi çizilen izleri kaplayan orijinal konumuna getirin. Kasık kırışıklığında medial olarak, flebin etrafında 3-0 naylon ile çalışan bir sütür kullanarak flebi dikin ve lateral olarak kasık kırışıklığında biter.
Flebe kan akışını doğrulamak için, önceki enjeksiyon için açıklanan aynı tekniği ve araçları kullanarak penis damarına 0.25 mililitre% 10 steril floresein sodyum enjekte edin. Üç dakika sonra, perfüze edilen alanlara karşılık gelen floresan alanları ortaya çıkarmak için 366 nanometrede uzun dalga UV lambası parlatın. Kapatma ve doğrulamadan sonra, otomatik mutilasyonu önlemek ve aynı bölgeye sıvı bandaj püskürtmek için dikişler boyunca ezilmiş metronidazol yayın.
İskemik ön koşullandırma periyodunun sonunda flebi epigastrik kan kaynağından çıkarmak için, flebin inferior sınırı boyunca yağ yastığına inferior koterize edin. Postoperatif sıfır veya POD0 gününde yapılan acil intravenöz floresein anjiyografide flebin tek başına SIEA ile tam vaskülarizasyonu görüldü. Tüm flep kürek de dahil olmak üzere doku iyi perfüze edildi.
POD5 ve POD10 üzerindeki negatif kontrolün anjiyografisi, flep küreğinin tam canlılığını gösterdi. Beslenme kaplarında herhangi bir ligasyon yapılmayan bu gruptaki tüm hayvanlar sağlıklı kalmıştır. Pozitif kontrol grubu için, ligasyondan hemen sonra yeşil floresan yokluğu, flebin perfüzyonunu göstermedi ve neovaskülarizasyonun olmadığını kanıtladı.
Bu, POD10'da deri küreğinin% 85'inde gözlenen nekroz ile doğrulandı. İlginç bir şekilde, distal uç canlı ve neovaskülarize edildi. POD10 üzerinde flep yüzeyi canlılığının istatistiksel analizi, negatif kontrol grubu tarafından %99.5 hayatta kalabilirlik gösterirken, pozitif kontrol grubu %11.25 hayatta kalma kabiliyeti göstermiştir.
İskemik ön koşullandırmayı incelemeyi amaçlayan örnek bir deney grubu, belirli iskemik ön koşullandırma protokolünün bu modelde verimsiz olduğunu gösteren% 13.67 hayatta kalma kabiliyeti göstermiştir. İki ana adım, mikroskop altında flep hasadı ve damar diseksiyonudur. En önemli tavsiye, kaliteli mikro cihazlara sahip olmaktır.
Bir sonraki amaç, erken akış bozulmasını takiben en iyi flep hayatta kalma kabiliyetini sağlayan rejimi seçmek için iskemi sürelerini ve ritimlerini değiştirerek farklı iskemik ön koşullandırma protokollerini denemektir. Bu teknik, iskemi füzyon yaralanmaları için iyi bir model oluşturarak modern rekonstrüktif cerrahi ve rekonstrüktif transplantasyona uygulanan iskemik ön koşullandırmada yeni bulgulara yol açabilir.
